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  • DNA實(shí)驗(yàn)技術(shù):原位雜交實(shí)驗(yàn)要求及步驟2

    三,、操作步驟(一)取材、冰凍切片:將動(dòng)物以3%戊巴比妥鈉麻醉,打開(kāi)胸腔,,暴露心臟,刺破右心耳,,將針尖刺入左心室用生理鹽水灌注(灌注量約為動(dòng)物體重的2倍),,再注入等量的4%多聚甲醛。(見(jiàn)圖2-7),。取材,,置于4%多聚甲醛中后固定4hr。以0.1MPBS浸泡沖洗4-5次(換液:1次/hr),。將組織塊入30%蔗糖/0.1MPBS液(4℃),,1-2天后冰凍切片,將切片裱貼于原位雜交玻片上,,切片厚度為15-20μm,。(二)探針制備與檢測(cè)(定量):1.隨機(jī)引物制備cDNA核酸探針以DIGDNA標(biāo)記檢測(cè)試劑盒
  • DNA實(shí)驗(yàn)技術(shù):原位雜交實(shí)驗(yàn)要求及步驟1

    原位雜交組織(或細(xì)胞)化學(xué)(InsituHybridizationHistochemistry,ISHH)簡(jiǎn)稱(chēng)原位雜交(InSituHybridization),,屬于固相分子雜交的范疇,,它是用標(biāo)記的DNA或RNA為探針,在原位檢測(cè)組織細(xì)胞內(nèi)特定核酸序列的方法,。根據(jù)所用探針和靶核酸的不同,,原位雜交可分為DNA-DNA雜交,DNA-RNA雜交和RNA-RNA雜交三類(lèi),。根據(jù)探針的標(biāo)記物是否直接被檢測(cè),,原位雜交又可分為直接法和間接法兩類(lèi)。直接法主要用放射性同位素,、熒光及某些酶標(biāo)記的探針與靶核酸進(jìn)行雜交,,
  • DNA實(shí)驗(yàn)技術(shù):限制性?xún)?nèi)切酶消化DNA實(shí)驗(yàn)

    標(biāo)簽:限制性?xún)?nèi)切酶消化DNA影響限制性?xún)?nèi)切酶反應(yīng)的因素很多。DNA制品中的污染均能抑制酶切活性,。這種抑制可通過(guò)增加酶作用單位數(shù),、增大反應(yīng)體枳以稀釋可能的抑制劑或延長(zhǎng)反應(yīng)時(shí)間來(lái)加以克服。實(shí)驗(yàn)方法單酶單DNA樣品消化消化多個(gè)DNA部分消化實(shí)驗(yàn)方法原理進(jìn)行限制酶切割反應(yīng)只需簡(jiǎn)單地將酶和DNA樣品放在合適的反應(yīng)緩沖液溫育,,其中DNA和酶的量,、緩沖液的離子強(qiáng)度、溫育溫度和時(shí)間都依具體的反應(yīng)而改變,。實(shí)驗(yàn)材料DNA試劑,、試劑盒TE酶切緩沖液EDTA儀器,、耗材電泳儀實(shí)驗(yàn)步驟1.混合下列溶液于一個(gè)無(wú)菌的微量離心管
  • DNA實(shí)驗(yàn)技術(shù):DNA斑點(diǎn)和狹線(xiàn)印跡實(shí)驗(yàn)

    斑點(diǎn)和狹線(xiàn)印跡是一種將混合的未經(jīng)分離的面定于硝酸纖維素膜或尼龍膜上進(jìn)行雜交分析的簡(jiǎn)單技術(shù)。用來(lái)檢測(cè)被印跡的1DNA制品中靶序列的相對(duì)豐度,。實(shí)驗(yàn)方法多樣抽濾法實(shí)驗(yàn)材料DNA試劑,、試劑盒SSCNaClNaOHTris·Cl儀器、耗材紫外透射儀電泳儀多樣抽濾加樣器實(shí)驗(yàn)步驟1.裁一張與多樣過(guò)濾加樣器一樣大小的尼龍膜,,將膜置于6×SSC的表面讓其自然浸沒(méi),。放置10min。2.裁一張與多樣過(guò)濾加樣器一樣大小的Whatman3MM濾紙,,用6×SSC浸濕,。3.將Whatman3MM濾紙置于多樣抽濾加樣器上,將膜
  • DNA實(shí)驗(yàn)技術(shù):重組質(zhì)粒的連接,、轉(zhuǎn)化及篩選

    *節(jié)概述質(zhì)粒具有穩(wěn)定可靠和操作簡(jiǎn)便的優(yōu)點(diǎn)。如果要克隆較小的DNA片段(<10kb)且結(jié)構(gòu)簡(jiǎn)單,質(zhì)粒要比其它任何載體都要好,。在質(zhì)粒載體上進(jìn)行克隆,從原理上說(shuō)是很簡(jiǎn)單的,,先用限制性?xún)?nèi)切酶切割質(zhì)粒DNA和目的DNA片段,然后體外使兩者相連接,再用所得到重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化細(xì)菌,即可完成,。但在實(shí)際工作中,如何區(qū)分插入有外源DNA的重組質(zhì)粒和無(wú)插入而自身環(huán)化的載體分子是較為困難的,。通過(guò)調(diào)整連接反應(yīng)中外源DNA片段和載體DNA的濃度比例,可以將載體的自身環(huán)化限制在一定程度之下,也可以進(jìn)一步采取一些特殊的克隆策略,如
  • DNA實(shí)驗(yàn)技術(shù):DNA的酶切實(shí)驗(yàn)

    采用粘末端連接必須對(duì)目的DNA分子和載體分子進(jìn)行酶切以獲得相應(yīng)的粘末端進(jìn)行連接,。酶切可以是單酶切也可以是雙酶切,。單酶切操作比較簡(jiǎn)單,但雙酶切如果兩種酶所用緩沖液成分不同(主要是鹽離子濃度不同)或反應(yīng)溫度不同,,這時(shí)可以采用如下措施解決:1)先用一種酶切,,然后乙醇沉淀回收DNA分子后再用另外一種酶切;2)先進(jìn)行低鹽要求的酶酶切,,然后添加鹽離子濃度到高鹽的酶反應(yīng)要求,,加入第二種酶進(jìn)行酶切;3)使用通用緩沖液進(jìn)行雙酶切,。具體要根據(jù)酶的反應(yīng)要求進(jìn)行,,盡量避免星號(hào)活力。一材料,、試劑和儀器:1材料:質(zhì)粒DNA
  • DNA實(shí)驗(yàn)技術(shù):亞硫酸氫鹽修飾后測(cè)序法檢測(cè)甲基化

    甲基化檢測(cè)方法(亞硫酸氫鹽修飾后測(cè)序法)甲基化是目前的研究熱點(diǎn),,就我所做的一點(diǎn)工作并其中一點(diǎn)心得,與大家分享,。希望能夠?qū)Υ蠹矣兴鶐椭?部分基因組DNA的提取,。這一步?jīng)]有懸念,*可以購(gòu)買(mǎi)供細(xì)胞或組織使用的DNA提取試劑盒,,如果實(shí)驗(yàn)室條件成熟,,自己配試劑提取*可以,。DNA比較穩(wěn)定,只要在操作中不要使用暴力,,提出的基因組DNA應(yīng)該是完整的,。此步重點(diǎn)在于DNA的純度,即減少或避免RNA,、蛋白的污染很重要,。因此在提取過(guò)程中需使用蛋白酶K及RNA酶以去除兩者。使用兩者的細(xì)節(jié):1:蛋白酶K可以使用滅菌雙蒸水
  • DNA專(zhuān)題:從動(dòng)物肝臟中提取DNA

    一,、原理:在濃氯化鈉(1―2mol/L)溶液中,,脫氧核糖核蛋白的溶解度很大,核糖核蛋白的溶解度很小,,在稀氯化鈉(0.14mol/L)溶液中,,脫氧核糖核蛋白的溶解度很小,核糖核蛋白的溶解度很大,。因此,,可利用不同濃度的氯化鈉溶液,將脫氧核糖核蛋白和核糖核蛋白從樣品中分別抽提出來(lái),。將抽提得的核蛋白用SDS(十二烷基硫酸鈉)處理,,DNA或(RNA)即與蛋白質(zhì)分開(kāi),可用氯仿―異戊醇將蛋白質(zhì)沉淀除去,,而DNA則溶解于溶液中,。向溶液中加入適量乙醇,DNA即析出,。為了防止DNA或(RNA)酶解,,提取時(shí)加入EDT
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