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甲基化檢測方法(亞硫酸氫鹽修飾后測序法)
甲基化是目前的研究熱點,,就我所做的一點工作并其中一點心得,與大家分享,。希望能夠?qū)Υ蠹矣兴鶐椭?br />
*部分 基因組DNA的提取。
這一步?jīng)]有懸念,,*可以購買供細胞或組織使用的DNA提取試劑盒,,如果實驗室條件成熟,自己配試劑提取*可以,。DNA比較穩(wěn)定,,只要在操作中不要使用暴力,,提出的基因組DNA應(yīng)該是完整的,。
此步重點在于DNA的純度,即減少或避免RNA,、蛋白的污染很重要,。因此在提取過程中需使用蛋白酶K及RNA酶以去除兩者。
使用兩者的細節(jié):
1:蛋白酶K可以使用滅菌雙蒸水配制成20mg/ml;
2:RNA酶必須要配制成不含DNA酶的RNA酶,,即在購買市售RNA酶后進行再處理,,配制成10mg/ml。否則可能的后果是不僅沒有RNA,,連DNA也被消化了,。兩者均于-20度保存。
驗證提取DNA的純度的方法有二:
1:紫外分光光度計計算OD比值,;
2:1%-1.5%的瓊脂糖凝膠電泳,。
我傾向于第二種方法,這種方法*可以明確所提基因組DNA的純度,,并根據(jù)Marker的上樣量估計其濃度,,以用于下一步的修飾。
第二部分 亞硫酸氫鈉修飾基因組DNA
如不特別指出,,所用雙蒸水(DDW)均經(jīng)高壓蒸汽滅菌,。
1:將約2ugDNA于1.5mlEP管中使用DDW稀釋至50ul;
2:加5.5ul新鮮配制的3M NaOH,;
3: 42℃水浴30min,;
水浴期間配制:
4:10mM對苯二酚(氫醌),加30ul至上述水浴后混合液中,;(溶液變成淡黃色)
5: 3.6M亞硫酸氫鈉(Sigma,,S9000),配制方法:1.88g亞硫酸氫鈉使用DDW稀釋,,并以3M NaOH滴定溶液至PH 5.0,,zui終體積為5ml。這么大濃度的亞硫酸氫鈉很難溶,,但加入NaOH后會慢慢溶解,,需要有耐心。PH一定要準確為5.0,。加520ul至上述水浴后溶液中,。
6:EP管外裹以鋁箔紙,避光,,輕柔顛倒混勻溶液,。
7:加200 ul 石蠟油,防止水分蒸發(fā),,限制氧化,。
8:50℃避光水浴16h。
一般此步在4pm開始做,,熟練的話不到5pm即可完成,,水浴16h正好至次日8am以后收,時間上很合適。
這一步細節(jié):
1:基因組DNA的量不需十分,,寧多勿少,,因為在以后純化回收步驟中會有丟失,且此方法修飾zui多可至4ug,。
2:所有試劑均須新鮮配制,,所以配液的技術(shù)要過關(guān),既要快,,又要,。
3:亞硫酸氫鈉溶液呈強酸性,一定用堿將PH調(diào)制5.0,,否則PH不合適會影響后續(xù)純化吸收,。
4:水浴達16小時,雖可以短至8小時,,但后者修飾會有不*,。