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細胞技術專題:腫瘤細胞侵襲試驗(Tumour Invasion Assay)

2014-2-18  閱讀(1247)

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,、 原理

Matrigel 是從小鼠EHS肉瘤中提取的基質成分,,含有LN,、IV型膠原、接觸蛋白和肝素硫酸多糖,,鋪在無聚乙烯吡硌烷酮的聚碳酸酯濾膜上,,能在DMEM培養(yǎng)基中重建形成膜結構,這種膜結構與天然基質膜結構極為相似,。

濾膜孔徑一般為8um,,而且膜孔都被Matrigel覆蓋,細胞不能自由穿過,,必須分泌水解酶,,并通過變形運動才能穿過這種鋪有Martrigel的濾膜,,這與體內情況較為相似。

鋪有Martrigel的濾膜放在以Blind Well腔或MICS腔上下室之間,,鋪有Martrigel面朝向上室,,在下室中加有趨化劑,如一定濃度的LN,、FN或小鼠3T3條件培養(yǎng)液或人睪丸上皮成纖維細胞培養(yǎng)液,,上室加入重懸的瘤細胞,具有侵襲能力的細胞在趨化劑誘導下開始穿膜運動,。細胞穿膜所用的時間與Martrigel的用量有關,,選擇25ugMartrigell鋪膜,16小時后觀察結果較為合適,。穿過濾膜的細胞多數(shù)粘附在濾膜下表面,,可用棉簽將上表面的細胞拭去,然后用乙醇固定濾膜,,PE染色,,在光鏡下觀察統(tǒng)計穿過Martrigel的細胞數(shù)。另外用Transwell小室也可進行重建基質膜侵襲分析,,這一方法是在Transwell小室吊籃式上腔的濾膜上鋪上30ugMartrigel,,加入細胞72h后觀察結果。值得注意的是,,細胞在TransWll腔中培養(yǎng)72小時后,,有相當數(shù)量穿過濾膜的細胞不再粘附在濾膜下表面,而是脫落進人下腔溶液中.因此統(tǒng)計穿過基質膜的細胞數(shù)目時應把這部分細胞考慮在內,。腫瘤細胞穿過重建基質膜的能力與它的體內侵襲轉移能力表現(xiàn)出較好的相關性,可以用重建基質膜模型初篩抗侵襲藥物,。

在上述分析中,,如果不在膜上鋪Martrigel而直接將8um孔徑濾膜安放在侵襲腔室上下腔室之間,細胞通過變形運動穿過濾膜,,用這種模型對分析細胞運動能力和藥物對細胞運動能力的影響,。另外,在下室中加有LN或FN或在濾膜下表面鋪上LN或FN,,可分析藥物對腫瘤細胞的趨化性或趨固性的影響,。

材料

1,、Matrigel 基質膠(威格拉斯生物技術(北京)有限公司),,10mg/ml,5ml,,分裝成0.5ml/只10個EP管中,;用時加入0.5ml的DMEM,;

Matrivgel在冰上維持液態(tài),室溫時可迅速凝結成膠,。使用前應從-20℃轉移至4℃待其自然溶化(如放置),,避免反復凍融。使用時需接觸Matrivgel的試管,、移液吸頭等均應預冷于4℃,;注意無菌操作;

2,、24-transwell (Coster),;

3、結晶紫染料溶液:結晶紫用甲醇配成0.5%的母液,,使用濃度為0.1%,,用PBS按1:4稀釋后即為染色液;

4,、33%醋酸,;

實驗步驟

1,、溶液配制:

(1)溶DMEM 500ml,;

NE---A液(1μg/μl,1mg/ml)

母液0.1ml(5mg)+ ddH2O up to 5 ml ,;過濾消毒,,-20℃保存。

NE-DMEM(-6M)

NE---A液(1μg/μl,,1mg/ml) 20.5μl

DMEM UP TO 100 ml

過濾消毒,,4℃保存

(2)NE+CGRP-DMEM(-6M,100ng)

NE---A液(1μg/μl,,1mg/ml) 20.5μl

CGRP-儲存液 50 μl

DMEM UP TO 100 ml

過濾消毒,,4℃保存

(3)NE+IFN-DMEM(-6M,,50ng)

NE---A液(1μg/μl,,1mg/ml) 20.5μl

IFN-γ(25ng/μl) 25 μl

DMEM UP TO 100 ml

過濾消毒,4℃保存

(4)低血清DMEM培養(yǎng)基(上室)

(5)20%FBS-DMEM培養(yǎng)基(下室)

2 ,、 準備

(1)溶膠,,4℃(Thaw Matrigel at 4℃ overnight.)

(2)室溫下基質膠易成凝膠,,所以,,步驟2和3種使用試管和槍頭要在試驗前-20C預冷,。(Matrigel tends to form gel very quickly at room temerature, therefore, pipets and tips using in steps 2 and 3 have to be chilled at prior to experiements.)

3包被基底膜(冰上操作)

(1)用無血清的冷細胞培養(yǎng)基DMEM稀釋Matrigel膠(10mg/ml to 5 mg/ml)) (Dilute Matrigel (10mg/ml to 5 mg/ml) in serum free-cold cell culture media (RPMI1640, EMEM, DMEM, etc).)

(2)取100ul稀釋膠加到24-well transwell上室中 (Put 100 ul of the diluted matrigel into upper chamber of 24-well transwell)

(3)37℃孵育transwell至少4-5h (Incubate the transwell at 37C at least 4 to 5 h for gelling.)

4 ,、 水化基底膜

用無血清培養(yǎng)基輕洗凝膠 (Gently wash gelled matrigel with warmed serum free-culture media.)

5 ,、 準備細胞懸液和小室

(1)消化法從細胞培養(yǎng)瓶中獲取細胞; (Harvest cells from tissue culture flasks by Trypsin/EDTA,;)

(2)用培養(yǎng)基洗3遍(Wash the cells 3 times with culture media (RPMI1640, EMEM, DMEM etc) containing 1 % FBS.)

(3)重懸細胞,,5×105 cells/ml,1% FBS (Resuspend the cells in media containing 1% FBS at a density of 5×105 cells/ml.)

(4)上室加200 ul細胞懸液 (Put 200 ul of the cell suspension onto the matrigel.)

(5)下室中加入600 ul細胞培養(yǎng)基,,含有5 ug/ml fibronectin作為黏連亞族 (lower chamber of the transwell is filled with 600 ul of culture media containing, as an adhesive subtrate.)

6 ,、 孵育,37℃,,20 to 24 h (Incubate at 37C for 20 to 24 h.

7 ,、 染色和計數(shù)

(1)棉簽擦去上室上面的非侵襲細胞(Scrape off noninvaded cells on the top of the transwell with a cotton swab)

(2)移去transwells,倒置,,風干(Remove transwells from 24-well plates and stained with Diff-Quick solution.)

(3)24孔板中加入500µl含0.1%結晶紫,,將小室置于其中,使膜浸沒在培養(yǎng)基中,,37℃ 30min后取出,,PBS清洗。

(4)直徑上取4個視野,,照相,,計數(shù)。

(5)24孔板中加入500µl 33%醋酸,,將小室置于其中,,浸膜,振蕩10min,,充分溶解,。取出小室,24孔板于酶標儀上570nm測OD值,,間接反應細胞數(shù)。

小技巧:照相前一定要晾干,,照相時將小室正置于載玻片上,,在倒置顯微鏡下觀察、照相,。經濟,、實用、方便,。

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