蘇木素染色液

產(chǎn)品描述

蘇木素染色液綜合了多種經(jīng)典的方法配制而成。該溶液無(wú)汞,，可用于免疫組化復(fù)染和H＆E染色,。

訂購(gòu)信息

運(yùn)輸與保存

常溫運(yùn)輸。常溫避光保存,，有效期12個(gè)月,。

使用方法

1.          試劑準(zhǔn)備

酸酒精：在100mL 70%乙醇中加入1mL鹽酸，室溫保存,。注：冰凍切片后,，各種步驟（干燥，乙醇或甲醇固定,，熱固定,，使用帶電的或有粘性的蓋片）保證組織切片在染色過(guò)程中不脫落。

2.       95%乙醇：在HE染色開(kāi)始前,，組織切片需要固定并水化,。將切片置于95%乙醇中約2min，開(kāi)始水化并固定組織,。注：跳過(guò)使用95%乙醇對(duì)組織進(jìn)行水化和固定,，并不影響形態(tài)學(xué)上的細(xì)節(jié)。

3.         水化：進(jìn)一步對(duì)組織切片進(jìn)行水化3-5min,，并沖掉前一步殘留的乙醇,。

4.        蘇木素：水化后，組織切片用蘇木素染色1-3min,，可根據(jù)染色結(jié)果和要求調(diào)整染色時(shí)間,。蘇木素是一種基本染料，可以對(duì)細(xì)胞的酸性成分進(jìn)行染色,，包括核酸,、粘多糖,、酸性糖蛋白，將他們?nèi)境伤{(lán)色或藍(lán)紫色,。注：沒(méi)有蘇木素,，伊紅會(huì)將組織染成亮粉紅色；顯而易見(jiàn)的是缺乏細(xì)胞核,。組織結(jié)構(gòu)很難區(qū)分,，細(xì)胞內(nèi)成分幾乎都不存在，難以辨別,。針對(duì)上述問(wèn)題,，可以使用蘇木素進(jìn)行復(fù)染。

(1)       染色較弱是由于：自身溶解或者固定不好,；過(guò)度脫鈣,；染色時(shí)間不足；過(guò)度脫色（酸與醇的比例過(guò)高或者酸乙醇脫色時(shí)間過(guò)長(zhǎng)）,；蘇木素的作用較弱（蘇木素氧化過(guò)度（過(guò)老）或水稀釋過(guò)度）,；漂洗溶液的污染；切片過(guò)??；乙醇的去除或者染色前水的漂洗不充分。

(2)       染色過(guò)度是由于：組織切片干燥,；蘇木素濃度過(guò)高,；染色時(shí)間過(guò)長(zhǎng)；載玻片粘合劑過(guò)多,；脫色過(guò)弱或時(shí)間不足,；切片過(guò)厚；熱暴露的時(shí)間過(guò)長(zhǎng),。

5.        水洗：蘇木素染色后,，用水洗組織是非常重要的。這一步以及隨后的水洗,，可將多余的染料,，媒染劑等去除。適當(dāng)?shù)钠纯梢匀コ砻娼饘俟鉂?，金屬光澤可阻止蘇木素的染色,。注：跳過(guò)此步，將產(chǎn)生不好的結(jié)果,，例如沉淀的形成,，染液的稀釋，表面金屬光澤的存在,。

6.        酸酒精：酸酒精分色劑3-5s,。在蘇木素染色方法中，組織切片有意過(guò)度染色,，酸酒精將去除多余的染料以及玻片上的背景染色,。

注：若省略此步驟，切片將呈暗紫色,，嗜酸性結(jié)構(gòu)（如膠原）不會(huì)顯現(xiàn)出明亮的粉紅色,，導(dǎo)致組織結(jié)構(gòu)之間難以區(qū)分，從而影響對(duì)切片的準(zhǔn)確判斷,。另外,，分色過(guò)度可能是由于：酸濃度過(guò)高；脫色時(shí)間過(guò)長(zhǎng)等,。分色不足是由于：酸濃度過(guò)低,；脫色時(shí)間不足；在切片上有多余的蛋白或者明膠等,。

7.       水洗：水洗30s,，終止酸酒精反應(yīng)，進(jìn)一步阻止酸酒精從組織切片上將大量蘇木素去除,。注：如果切片沒(méi)有經(jīng)過(guò)漂洗,，酸酒精可以過(guò)度脫色。如果不去除脫色劑,，酸酒精將持續(xù)從組織切片上去除蘇木素,。

8.       自來(lái)水沖洗或用藍(lán)化液藍(lán)化：自來(lái)水沖洗3-5min，可起到發(fā)藍(lán)處理,，將紫紅色的蘇木素轉(zhuǎn)變?yōu)樗{(lán)紫色,。通常，發(fā)藍(lán)試劑是pH依賴性的,，由堿性溶液構(gòu)成,。因此，如果自來(lái)水作為發(fā)藍(lán)試劑,，pH值的每天監(jiān)控是非常重要的,，因?yàn)樽詠?lái)水的pH值可能每天都會(huì)波動(dòng)?；蛴盟{(lán)化液藍(lán)化,，30s-1min；流動(dòng)的自來(lái)水沖洗5min,；注：跳過(guò)發(fā)藍(lán)試劑步驟,，將會(huì)導(dǎo)致蘇木素染液的顏色發(fā)生微妙的變化，難以區(qū)分,。代替深藍(lán)色,，細(xì)胞核將呈現(xiàn)紫色,，有時(shí)甚至是紅色。細(xì)胞核不可過(guò)度藍(lán)染,。如果組織染色過(guò)藍(lán),，一般是在組織切片上蘇木素過(guò)多所致。

9.       水洗：為伊紅復(fù)染做準(zhǔn)備,，通過(guò)水洗30sec,，將多余的發(fā)藍(lán)試劑去除。因?yàn)樵趬A性環(huán)境下,，伊紅無(wú)法染色,，水洗去除發(fā)藍(lán)試劑將允許伊紅保持其酸性pH值，使伊紅得以均勻復(fù)染,。注：發(fā)藍(lán)試劑之后,，如果沒(méi)有水洗，組織切片無(wú)法正確使用伊紅染色,。因此,，酸性結(jié)構(gòu)將被染為蒼白色并且不均勻，進(jìn)而導(dǎo)致錯(cuò)誤的判斷,。

10.     伊紅：為了正確區(qū)分胞內(nèi)結(jié)構(gòu),，伊紅是出色的蘇木素復(fù)染劑。伊紅復(fù)染30-60s,，可根據(jù)染色結(jié)果和要求調(diào)整染色時(shí)間,。伊紅是酸性染料，可染細(xì)胞質(zhì),，尤其是線粒體,、分泌顆粒和膠原。它可以區(qū)分細(xì)胞內(nèi)不同的細(xì)胞器以及不同的結(jié)締組織,。注：使用伊紅復(fù)染組織切片的失敗,，將導(dǎo)致組織切片的低分化。

(1)       染色較弱是由于：組織切片過(guò)??；染色時(shí)間不足；隨后95%酒精分化過(guò)度,。

(2)       染色過(guò)度是由于：染液濃度較高（可能是由于過(guò)度蒸發(fā)）,；組織切片過(guò)厚；染色時(shí)間過(guò)長(zhǎng),；隨后95%酒精分化不足,。

(3)       伊紅染色未分化（一種顏色）是由于：固定不徹的底；過(guò)度染色（染色時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或染液濃度過(guò)高）,。

11.     95%乙醇：95%乙醇處理2s-1min,，根據(jù)染色結(jié)果和要求調(diào)整,；伊紅分化將產(chǎn)生不同的粉色。注：如果95%乙醇被稀釋（例如,，從前一步染色中攜帶了伊紅）,，分化的效果較差。

12.    100%乙醇：通過(guò)100%乙醇使組織切片脫色,。100%乙醇處理1min；再用新的100%乙醇處理1min,。注：這一步很難引起注意,，若無(wú)95%乙醇，難以區(qū)分酸性結(jié)構(gòu),，組織切片成為粉色,。若無(wú)100%乙醇脫水，組織切片不能脫水,，導(dǎo)致在蓋片下形成水珠,。這些水珠可與下一步的二甲苯結(jié)合而形成白色混濁物，這將影響組織切片的質(zhì)量,。

13.      二甲苯：二甲苯處理5min,。在充分脫水后，二甲苯可將組織切片上的酒精去除,。去除酒精后,，在載玻片上加蓋玻片時(shí)，二甲苯也可作為包埋劑確?？扇芙?。由于有潛在的毒性，二甲苯替代品,，例如檸檬烯,、環(huán)烷烴也可使用。替代品可提供相同的組織染色質(zhì)量,，并且他們使用更安全,，操作更簡(jiǎn)單。注：當(dāng)跳過(guò)此步驟時(shí),，不使用二甲苯透明,，酒精將會(huì)保存于組織切片上，導(dǎo)致伊紅從切片上流出,。

14.     封片：中性樹(shù)膠封片,，自然風(fēng)干或烤干，顯微鏡觀察,。

染色結(jié)果：細(xì)胞核染為藍(lán)色,；細(xì)胞質(zhì)染為紅色,。

注意事項(xiàng)

1．       本產(chǎn)品僅限于科學(xué)實(shí)驗(yàn)研究使用，不得用于臨床診斷,、治療等領(lǐng)域,。

2．       為了您的安全和健康，請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作,。

3．       試劑應(yīng)保存于陰涼,、干燥、通風(fēng)良好的環(huán)境中,。

4．       本產(chǎn)品可與伊紅染色液（貨號(hào)：AS11L031）配合使用,。

5．       第一次使用本產(chǎn)品時(shí)建議先取1-2個(gè)樣品做預(yù)實(shí)驗(yàn)。

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