AS11L011 蘇木素伊紅(HE)染色試劑盒
- 公司名稱 和元李記(上海)生物技術(shù)有限公司
- 品牌 Life-iLab/李記生物
- 型號 AS11L011
- 產(chǎn)地
- 廠商性質(zhì) 生產(chǎn)廠家
- 更新時間 2025/6/11 20:40:16
- 訪問次數(shù) 73
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胎牛血清,轉(zhuǎn)染試劑(高效),,凍存液(普通),,cck-8,1640培養(yǎng)基,,PBS液體,,凋亡試劑盒,熒光素鉀鹽,,蛋白Mark,,發(fā)光液(超敏),快速封閉
供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 貨號 | AS11L011 |
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應(yīng)用領(lǐng)域 | 綜合 |
蘇木素伊紅(HE)染色試劑盒蘇木素-伊紅染液綜合了多種經(jīng)典的方法配制而成,。該溶液無汞,,可用于免疫組化復(fù)染和H&E染色。
訂購信息
貨號 | 規(guī)格 | |
蘇木素伊紅(HE) 染色試劑盒蘇木素-伊紅染液 | AS11L011 | 200mL |
產(chǎn)品組分
組分 | 規(guī)格 |
A. 蘇木素染液 | 100mL |
B. 伊紅染液 | 100mL |
常溫運輸,。常溫室溫運輸,。室溫保存,有效期12個月,。
使用方法
1.試劑準(zhǔn)備
酸酒精:在100mL 70%乙醇中加入1mL 鹽酸,室溫保存,。注:冰凍切片后,,各種步驟(干燥,乙醇或甲醇固定,,熱固定,,使用帶電的或有粘性的蓋片)保證組織切片在染色過程中不脫落。
注:注意:冰凍切片后,,各種步驟(干燥,,乙醇或甲醇固定,,熱固定,使用帶電的或有粘性的蓋片)保證組織切片在染色過程中不脫落,。
2.95%乙醇:在HE染色開始前,,組織切片需要固定并水化。將切片置于95%乙醇中約2min,,開始水化并固定組織,。
注:注意:跳過使用95%乙醇對組織進(jìn)行水化和固定,并不影響形態(tài)學(xué)上的細(xì)節(jié),。
3.水化:進(jìn)一步對組織切片進(jìn)行水化3-~5min,,并沖掉前一步殘留的乙醇。
注:注意:與第一步相似,,跳過水化對于組織染色的質(zhì)量非常小,。
4.蘇木素:水化后,組織切片用蘇木素染色1-~3min,,可根據(jù)染色結(jié)果和要求調(diào)整染色時間,。蘇木素是一種基本染料,可以對細(xì)胞的酸性成分進(jìn)行染色,,包括核酸,、粘多糖、酸性糖蛋白,,將他們?nèi)境伤{(lán)色或藍(lán)紫色,。注:沒有蘇木素,伊紅會將組織染成亮粉紅色,;顯而易見的是缺乏細(xì)胞核,。組織結(jié)構(gòu)很難區(qū)分,細(xì)胞內(nèi)成分幾乎都不存在,,難以辨別,。針對上述問題,可以使用蘇木素進(jìn)行復(fù)染,。
(1) 染色較弱是由于:自身溶解或者固定不好,;過度脫鈣;染色時間不足,;過度脫色(酸與醇的比例過高或者酸乙醇脫色時間過長),;蘇木素的作用較弱(蘇木素氧化過度(過老)或水稀釋過度);漂洗溶液的污染,;切片過?。灰掖嫉娜コ蛘呷旧八钠床怀浞帧?/span>
(2) 染色過度是由于:組織切片干燥,;蘇木素濃度過高,;染色時間過長;載玻片粘合劑過多,;脫色過弱或時間不足,;切片過厚;熱暴露的時間過長,。
5.水洗:蘇木素染色后,,用水洗組織是非常重要的。這一步以及隨后的水洗,,可將多余的染料,,媒染劑等去除。適當(dāng)?shù)钠纯梢匀コ砻娼饘俟鉂?,金屬光澤可阻止蘇木素的染色,。注:跳過此步,將產(chǎn)生不好的結(jié)果,,例如沉淀的形成,,染液的稀釋,表面金屬光澤的存在,。
6.酸酒精:酸酒精分色劑3-5s,。在蘇木素染色方法中,組織切片有意過度染色,,酸酒精將去除多余的染料以及玻片上的背景染色,。
注:若省略此步驟,切片將呈暗紫色,,嗜酸性結(jié)構(gòu)(如膠原)不會顯現(xiàn)出明亮的粉紅色,,導(dǎo)致組織結(jié)構(gòu)之間難以區(qū)分,從而影響對切片的準(zhǔn)確判斷,。另外,,分色過度可能是由于:酸濃度過高;脫色時間過長等,。分色不足是由于:酸濃度過低,;脫色時間不足;在切片上有多余的蛋白或者明膠等,。
7.水洗:水洗30s,,終止酸酒精反應(yīng),進(jìn)一步阻止酸酒精從組織切片上將大量蘇木素去除,。注:如果切片沒有經(jīng)過漂洗,酸酒精可以過度脫色。如果不去除脫色劑,,酸酒精將持續(xù)從組織切片上去除蘇木素,。
8.自來水沖洗或用藍(lán)化液藍(lán)化:自來水沖洗3-5min,可起到發(fā)藍(lán)處理,,將紫紅色的蘇木素轉(zhuǎn)變?yōu)樗{(lán)紫色,。通常,發(fā)藍(lán)試劑是pH依賴性的,,由堿性溶液構(gòu)成,。因此,如果自來水作為發(fā)藍(lán)試劑,,pH值的每天監(jiān)控是非常重要的,,因為自來水的pH值可能每天都會波動?;蛴盟{(lán)化液藍(lán)化,,30s-1min;流動的自來水沖洗5min,;注:跳過發(fā)藍(lán)試劑步驟,,將會導(dǎo)致蘇木素染液的顏色發(fā)生微妙的變化,難以區(qū)分,。代替深藍(lán)色,,細(xì)胞核將呈現(xiàn)紫色,有時甚至是紅色,。細(xì)胞核不可過度藍(lán)染,。如果組織染色過藍(lán),一般是在組織切片上蘇木素過多所致,。
9.水洗:為伊紅復(fù)染做準(zhǔn)備,,通過水洗30sec,將多余的發(fā)藍(lán)試劑去除,。因為在堿性環(huán)境下,,伊紅無法染色,水洗去除發(fā)藍(lán)試劑將允許伊紅保持其酸性pH值,,使伊紅得以均勻復(fù)染,。注:發(fā)藍(lán)試劑之后,如果沒有水洗,,組織切片無法正確使用伊紅染色,。因此,酸性結(jié)構(gòu)將被染為蒼白色并且不均勻,,進(jìn)而導(dǎo)致錯誤的判斷,。
10.伊紅:為了正確區(qū)分胞內(nèi)結(jié)構(gòu),,伊紅是出色的蘇木素復(fù)染劑。伊紅復(fù)染30-60s,,可根據(jù)染色結(jié)果和要求調(diào)整染色時間,。伊紅是酸性染料,可染細(xì)胞質(zhì),,尤其是線粒體,、分泌顆粒和膠原。它可以區(qū)分細(xì)胞內(nèi)不同的細(xì)胞器以及不同的結(jié)締組織,。注:使用伊紅復(fù)染組織切片的失敗,,將導(dǎo)致組織切片的低分化。
(1) 染色較弱是由于:組織切片過??;染色時間不足;隨后95%酒精分化過度,。
(2) 染色過度是由于:染液濃度較高(可能是由于過度蒸發(fā)),;組織切片過厚;染色時間過長,;隨后95%酒精分化不足,。
(3) 伊紅染色未分化(一種顏色)是由于:固定不徹的底;過度染色(染色時間過長或染液濃度過高),。
11.95%乙醇:95%乙醇處理2s-1min,,根據(jù)染色結(jié)果和要求調(diào)整;伊紅分化將產(chǎn)生不同的粉色,。注:如果95%乙醇被稀釋(例如,,從前一步染色中攜帶了伊紅),分化的效果較差,。
12.100%乙醇:通過100%乙醇使組織切片脫色,。100%乙醇處理1min;再用新的100%乙醇處理1min,。注:這一步很難引起注意,,若無95%乙醇,難以區(qū)分酸性結(jié)構(gòu),,組織切片成為粉色,。若無100%乙醇脫水,組織切片不能脫水,,導(dǎo)致在蓋片下形成水珠,。這些水珠可與下一步的二甲苯結(jié)合而形成白色混濁物,這將影響組織切片的質(zhì)量,。
13.二甲苯:二甲苯處理5min,。在充分脫水后,,二甲苯可將組織切片上的酒精去除。去除酒精后,,在載玻片上加蓋玻片時,,二甲苯也可作為包埋劑確保可溶解,。由于有潛在的毒性,二甲苯替代品,,例如檸檬烯,、環(huán)烷烴也可使用。替代品可提供相同的組織染色質(zhì)量,,并且他們使用更安全,,操作更簡單。注:當(dāng)跳過此步驟時,,不使用二甲苯透明,,酒精將會保存于組織切片上,導(dǎo)致伊紅從切片上流出,。
14.封片:中性樹膠封片,,自然風(fēng)干或烤干,顯微鏡觀察,。
染色結(jié)果:細(xì)胞核染為藍(lán)色,;細(xì)胞質(zhì)染為紅色。
注意事項
1. 本產(chǎn)品僅限于科學(xué)實驗研究使用,,不得用于臨床診斷,、治療等領(lǐng)域。
2. 為了您的安全和健康,,請穿實驗服并戴一次性手套操作,。
3. 試劑應(yīng)保存于陰涼、干燥,、通風(fēng)良好的環(huán)境中,。
4. 第一次使用本試劑盒時建議先取1-2個樣品做預(yù)實驗。
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