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葡萄糖在小鼠克隆胚胎發(fā)育中的作用

2015-8-5  閱讀(1306)

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實(shí)驗(yàn)步驟


1. 克隆胚胎制備和胚胎培養(yǎng)

卵母細(xì)胞在含有5.5mM葡萄糖的CZB培養(yǎng)液中培養(yǎng)。用含有5.5mM葡萄糖和2.5ug/ml 細(xì)胞松弛素B的HEPES-CZB液(HCZB)作為工作液,,卵母細(xì)胞在此液中被去掉紡錘體-染色體復(fù)合體,;用卵丘細(xì)胞作為核供體,。用注射針反復(fù)吸入,、吹出卵丘細(xì)胞,,以除去其細(xì)胞膜和大部分細(xì)胞質(zhì),然后用注射針將裸卵的核注入去除紡錘體-染色體復(fù)合體的卵母細(xì)胞中,。

孤雌胚胎所用的卵母細(xì)胞與用于制備核移植胚胎的卵母細(xì)胞來(lái)源相同,。

孤雌胚胎和核移植胚胎用不含Ca2 、卻含10mM Sr2 和細(xì)胞松弛素B的CZB培養(yǎng)液進(jìn)行激活,。所有步驟中都不使用二甲基亞砜,,以避免其對(duì)克隆胚胎造成的不受控制的影響。單細(xì)胞正常受精胚胎是通過超排的(B6D2)F1雌鼠和(B6D2)F1雄鼠交配獲得的,。

所有胚胎用Whitten 培養(yǎng)液(MW)培養(yǎng)。之所以選擇此培養(yǎng)液是因?yàn)槔?B6D2)F1小鼠卵母細(xì)胞制備的受精胚胎,、孤雌胚胎和核移植胚胎在此種培養(yǎng)液中更利于它們除了二細(xì)胞期之外的胚胎發(fā)育,。對(duì)正常胚胎發(fā)育有更好的促進(jìn)作用的其他培養(yǎng)液,對(duì)克隆胚胎卻有阻滯作用,,所以不被采用,。

2. 分析葡萄糖代謝

胚胎在WM中過培養(yǎng),到單細(xì)胞后期或二細(xì)胞中期時(shí)用來(lái)進(jìn)行葡萄糖代謝分析。我們利用[1-14C]葡萄糖,、[6-14C]葡萄糖,、[5-3H]葡萄糖,來(lái)分析葡萄糖代謝情況,。使用[1-14C]葡萄糖時(shí),,14 CO2 經(jīng)過戊糖磷酸途徑或三羧酸循環(huán)釋放。使用[6-14C]葡萄糖時(shí),,14 CO2僅通過三羧酸循環(huán)釋放,。使用[5-3H]葡萄糖時(shí),3 H2O 僅通過糖酵解途徑釋放,。14CO2和3H2O用一種裝置收集然后通過一種方法進(jìn)行量化,。通過比較三種不同位置同位素標(biāo)記的葡萄糖的代謝率,可以確定不同途徑的代謝率,。為了準(zhǔn)備用于測(cè)量代謝的培養(yǎng)液,,我們?cè)谡婵諚l件下冷凍適量的[1-14C]葡萄糖、[6-14C]葡萄糖,、[5-3H]葡萄糖,,然后用不含葡萄糖的HCZB進(jìn)行溶解。用冷的非放射性葡萄糖將溶液中葡萄糖的含量增加至4mM,。

根據(jù)放射性物質(zhì)的放射性強(qiáng)弱,,將5-20枚胚胎放到1ml注射器的空心活塞中。注射針管中放有600ul 0.1M 的NaOH,,用來(lái)捕獲胚胎釋放出的14 CO2 和3 H2O ,。將裝有胚胎的活塞推入注射器,蓋上針帽,。此簡(jiǎn)易裝置與Eppendorf懸滴系統(tǒng)相比,,兩者在敏感度和檢測(cè)準(zhǔn)確度上并沒有差異,但是我們發(fā)現(xiàn)前者在將檢測(cè)物質(zhì)放入注射器時(shí),,不會(huì)發(fā)生很大的傾斜,,并且放入物質(zhì)能夠很快的有效聚集在一起。經(jīng)過37°C,、3h的孵育后,,小心的將NaOH捕獲液轉(zhuǎn)移到發(fā)光瓶中,1h后,,確定代謝物種輻射量的多少,。每次試驗(yàn),都要有四個(gè)空白對(duì)照(不放胚胎),,但含有5ul HCZB,,在同樣的條件下進(jìn)行孵育,用以說(shuō)明葡萄糖降解的原因,也用于進(jìn)行下一步的計(jì)算,。

計(jì)算出葡萄糖降解的效率,,并用每枚胚胎每小時(shí)降解多少皮摩爾表示出來(lái)。每次試驗(yàn)至少重復(fù)三次,,每次試驗(yàn)所用胚胎數(shù)為3-6枚,。

3. 酶和代謝分析

用冷凍干燥法處理胚胎,然后用來(lái)進(jìn)行酶和代謝分析,。每枚胚胎在油下進(jìn)行萃取,,并用來(lái)進(jìn)行酶循環(huán)分析。計(jì)算每個(gè)胚胎中各自的ATP含量,。相似的,,計(jì)算每個(gè)胚胎內(nèi)部的糖原水平。腺苷酸酶和糖原合酶的分析在前邊已經(jīng)介紹了,。所有代謝的計(jì)算,,都用每千克濕重含有多少mmole物質(zhì)表示(每枚胚胎重160ng或160pl)。每次試驗(yàn)至少重復(fù)三次,,每種胚胎zui后分析數(shù)量必須達(dá)到10-20枚,。

4. 線粒體拷貝數(shù)量

利用熒光定量PCR,檢測(cè)線粒體DNA(mtDNA)與核DNA(nDNA)的比率,,從而間接測(cè)定mtDNA的含量,。所用的mtDNA引物:5-CAGGATGAGCCTCAAACTCC-3(上引物)和5-GGTCAGGCTGGCAGAAGTAA-3(下引物) 。所用的nDNA引物(18S核糖體RNA):5-TCGAGGCCCTGTAATTGGAA-3(上引物)和5-CCCTCCAATGGATCCTCGTT-3(下引物),。每枚單個(gè)胚胎放入0.2ml PCR管中,,其中含有1ul 17uM SDS和 2ul 125ug/ml 蛋白酶K,37°C孵育過,,然后95°C 15min 用以使蛋白酶失活,。

5. 線粒體的超微結(jié)構(gòu)

從每個(gè)處理組取五枚胚胎,用2%多聚甲醛和0.6%戊二醛的混合物固定,,然后用含有1%的二甲基胂酸鈉進(jìn)行后固定,,再用一系列濃度逐步升高的乙醇對(duì)其進(jìn)行脫水處理,然后用PolyBed 812 樹脂包埋,。用切片機(jī)制備超薄切片,,將切片放到銅網(wǎng)上,用醋酸雙氧鈾和枸櫞酸鉛染色,,然后放到Ieol 1200 EX 顯微鏡下進(jìn)行觀察,。至少每個(gè)處理組的三枚胚胎用來(lái)進(jìn)行主觀上的線粒體形態(tài)學(xué)上的評(píng)定,并用好,、中、差來(lái)表示。

6. MitoTracker 染色和分析

為了能夠看到有活性的線粒體,,胚胎在含有葡萄糖的WM液(WM-)中或不含葡萄糖的WM液(WM )中孵育30min,,上述兩液均含有500nM 氯甲基-四甲基-rosamine(MitoTracker,分子探針),。MitoTracker是對(duì)活性線粒體特異的熒光探針,。樣本經(jīng)上述處理后,在培養(yǎng)液中洗60min,,然后用4%多聚甲醛固定30min,。此染色法是可見的,胚胎顯微鏡(Eclipse 800; Nikon Instruments,Melville, NY)拍照,。上述顯微鏡配備有表面熒光和不同干涉相差光學(xué)系統(tǒng),。顯微鏡放大倍數(shù)為 X60,聚焦于每枚胚胎zui長(zhǎng)的直徑上,;用Cool Snap 相機(jī)和 MetaMorph 7.1.0.0 軟件系統(tǒng)取相,。線粒體形態(tài)學(xué)分析用MetaMorph中的形態(tài)學(xué)分析工具進(jìn)行分析。手動(dòng)記錄每枚胚胎的周長(zhǎng)(每個(gè)胚胎階段,,每個(gè)處理組都要分析五枚胚胎),,記錄周長(zhǎng)的相關(guān)像素強(qiáng)度值都會(huì)被軟件記錄,將這些值錄入Microsoft Excel以計(jì)算每個(gè)階段,、每個(gè)處理組的平均值,。

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