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細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)
| 實(shí)驗(yàn)方法原理 | 水合氯醛腹腔麻醉,，采用膠原酶ⅴ逆行灌注、原位消化及Ficoll-400梯度離心的方法分離,、純化大鼠胰島,，并分離、培養(yǎng)胰島單細(xì)胞,。 |
|---|---|
| 實(shí)驗(yàn)材料 | 一周齡Wistar 大鼠 |
| 試劑,、試劑盒 | D-Hanks’液 胰蛋白酶 Ⅴ型膠原酶 葡萄糖 碘乙酸 |
| 儀器、耗材 | 手術(shù)剪 手術(shù)鉗 眼科剪刀 眼科鑷子 大頭針 手術(shù)刀片 培養(yǎng)皿 |
| 實(shí)驗(yàn)步驟 | 一,、實(shí)驗(yàn)步驟
2. 加入少量無菌D-Hanks’液,，用眼科剪剪成0.1-1.0 mm3 大小的碎片，用滴管輕輕吸出上層細(xì)小脂肪碎塊和油滴,，再用無菌D-Hanks’液反復(fù)清洗 8~10 次,，加入10 倍體積無菌消化酶液[胰蛋白酶-膠原酶消化液：0.05 g 胰蛋白酶，0.025 g Ⅴ型膠原酶(663 U/mg),，0.05 g 葡萄糖,，溶于100mL 無Ca2+、Mg2+的0.01 mol/L PBS(pH 值為 7.4)溶液,，用0.22 µm 微孔濾膜濾菌],，38℃±1℃消化，消化過程中不斷震蕩,，10 分鐘后棄去上清液,。
3. 用無菌D-Hanks’液將組織塊清洗 2~3 次，加入新鮮酶液繼續(xù)消化,，重復(fù)上述步驟,，此時(shí)組織塊邊緣模糊。
4. 將組織塊浸入消化酶液中，38℃±1℃消化10 分鐘,，將消化酶液與組織塊分開,，組織塊重新加入新鮮消化酶液進(jìn)行消化；而原消化酶液1500 rpm離心 10 分鐘,，取沉淀即為消化下的細(xì)胞,，重新用無菌D-Hanks’懸浮，離心,，重復(fù) 1~2 次,，再用培養(yǎng)基洗 2~3 次，用培養(yǎng)基懸浮即得細(xì)胞懸液,。
5. 將消化過的組織塊重復(fù)消化5~6 次至組織塊消化*,，重復(fù)以上操作。
6. 合并幾次所得細(xì)胞懸液,，計(jì)數(shù),，調(diào)整細(xì)胞濃度為 2×105個(gè)細(xì)胞/mL，將細(xì)胞懸液接種于24 孔塑料培養(yǎng)板中,，每孔1 mL,，置于37℃，5%CO2,，飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng),。
7. 由于成纖維細(xì)胞貼壁要比胰島細(xì)胞迅速，接種15 h 后,，輕輕振蕩培養(yǎng)板,，將上面未貼壁的細(xì)胞接入新的培養(yǎng)板中，可除去部分成纖維細(xì)胞,。
8. 將新培養(yǎng)板中細(xì)胞培養(yǎng) 48 小時(shí)后,，換新鮮配置的含有2.5 ng/mL 的碘乙酸的培養(yǎng)基培養(yǎng)5 h，可除去絕大部分成纖維細(xì)胞,，而胰島細(xì)胞不受傷害,，換不含碘乙酸的培養(yǎng)基洗2 次，并換不含碘乙酸的培養(yǎng)基在 37℃,、5% CO2,，飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，每隔 3 天換培養(yǎng)液,，獲得單層胰島細(xì)胞,。 |
