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轉染專題:脂質體轉染的幾個實驗方法

2013-11-11  閱讀(1184)

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摘要: 本實驗介紹了脂質體轉染的幾個方法,。
 

實驗原理
脂質 體(LR)試劑是陽離子脂質體DOTMA和DOPE的混合物(1:1)。它適用于把DNA 轉染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中,,是目前條件下zui方面的轉染方法之一,。轉染率高,優(yōu)于磷酸鈣法,,比它高5-100倍,,能把DNA和RNA轉染到各種細胞。
用LR進行轉染時,,首先需要優(yōu)化轉染條件,,應找出該批LR對轉染某一特定細胞適合的用量、作用時間等,,對每批LR都要做,。先要固定一個DNA的量和DNA/LR混合物與細胞相互作用的時間,DNA可從1-5ug和孵育時間6h,,開始,,按這兩個參數(shù)繪出相應LR需用量的曲線,再選用LR和DNA兩者*的劑量,,確定出轉染時間,。因LR對細胞有一定的毒性,轉染時間以不超過24h為宜,。
細胞種類:COS-7,、BHK,、NIH-3T3、Hela和Jurkat等任何一種細胞均可作為受體細胞,。
實驗步驟
1. 操作步驟(方法一):
   1) 取6孔培養(yǎng)板,,向每孔中加入2ml含(1-2) x 105 個細胞的培養(yǎng)基,37℃,、18% CO2 培養(yǎng)基40%-60%匯合時,。
   2) 轉染液制備:在聚苯乙烯管中制備以下兩液(為轉染1個空細胞所用的量)。
      A液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋DNA使?jié)舛葹?-10ug,,終量100ul,。
      B液:用不含血清培養(yǎng)基稀釋LR,使終濃度為2-50ug,,終量100ul,。
輕輕混合A液、B液,,室溫中置10-15min,,稍后會出現(xiàn)微濁現(xiàn)象,但并不妨礙轉染,。
   3) 轉染準備:用2ml不含血清培養(yǎng)基漂洗2次,,再加入1ml不含血清培養(yǎng)基。
   4) 轉染:把A/B復合物緩緩加入培養(yǎng)基中,,搖勻,,置37℃溫箱中6-24h,吸除無血清轉染液,,換入正常培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),。
   5) 其余處理:如觀察、篩選,、檢測等與其他轉染法相同,。
   6) 注意:轉染時切勿加血清,血清對轉染效率有很大影響,。
2. 快速脂質體轉染法操作步驟(方法二):
   1) 將細胞以5 x 105個/孔接種于6孔板中培養(yǎng)24h,,使其達到50%-60%板底面積。
   2) 在試管中配制DNA-脂質體復合物,。
      a. 在1ml無血清DMEM中稀釋PSV1-neo質粒DNA或供體DNA,。
      b. 旋轉1s,再加入脂質體懸液,,旋轉,。
      c. 室溫下放置5-10min,使DNA結合在脂質體上。
   3) 棄去細胞中的舊液,,用1ml無血清DMEM洗細胞1次后棄去,,向每孔中直接加入1mlDNA-脂質體復合物,37℃培養(yǎng)3-5天,。
   4) 再于每孔中加入含20%胎牛血清的DMEM,,繼續(xù)培養(yǎng)14-24h。
   5) 吸出DMEM-DNA-脂質體混合物加入新鮮含10%胎牛血清的DMEM,,2ml/孔,,再培養(yǎng)24-48h。
   6) 用細胞刮或消化法收集細胞,,以備分析鑒定,。
3. 穩(wěn)定的脂質體轉染法:
   1) 接種細胞同前述,細胞長至50%板底面積可用于轉染,。
   2) DNA-脂質體復合物制備轉染細胞同前,。
   3) 在每孔中加入1ml含20%胎牛血清的DMEM,37℃培養(yǎng)48h,。
   4) 吸出DMEM,,用G418選擇性培養(yǎng)基稀釋細胞,使細胞生長 一定時間,,篩選轉染克隆,,方法參照細胞克隆篩選法進行。
4. Invitrogen公司的Lipofectamine2000在24孔板轉染單層貼壁細胞,。(別的方法可以參考生產(chǎn)商提供的protocol)
   1) 轉染前1天將0.5~2×105細胞接種于24孔培養(yǎng)板,并加入500ul不含抗生素 的*培養(yǎng)基,,以保證轉染時細胞匯合達90~95%,。
   2) 準備復合物
      a. 將0.8ug DNA稀釋于50ul無血清無抗生素的培養(yǎng)液中輕輕渾勻。
      b. 將2ul Lipofectamine2000稀釋于50ul無血清無抗生素的培養(yǎng)液中,,輕輕渾勻,,室溫孵育5分。注意:必須在25分內(nèi)進行,。
      c. 5分后將它們混合,,并輕輕渾勻,室溫孵育20分,。
   3) 吸去培養(yǎng)板的培養(yǎng)基,,用PBS或無血清培養(yǎng)基()清洗細胞2次。
   4) 將復合物(總體積100ul)加入培養(yǎng)孔,,前后搖動培養(yǎng)板使其分布均勻,。
   5) 將細胞放入培養(yǎng)箱 孵育4~6h后,可以更換含血清培養(yǎng)液去除復合物(也可不用),。
   6) 24~48h后可以觀察轉入基因表達 情況,。
   7) 穩(wěn)定轉染:換含血清培養(yǎng)基24h后將細胞以1:10(或更高比例)傳代,,1天后更換篩選培養(yǎng)基篩選。
   8) 優(yōu)化:要保證細胞匯合率達90~95%(比較高),;DNA/ Lipofectamine2000比率1:0.5~1:5,,一般細胞1:2~3。

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