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【DNA原位雜交技術(shù)】 熒光原位雜交(FISH)探針的制備及其應(yīng)用

2013-9-4  閱讀(5313)

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zui近有一些戰(zhàn)友對(duì)熒光原位雜交技術(shù)比較感興趣,,我整理了相關(guān)資料和自己的心得,,和大家交流一下,。不妥之處,,請(qǐng)大家指出,,共同討論學(xué)習(xí)。
 
內(nèi)容分三部分:
一,、概述
1.  克隆性染色體異常是腫瘤的特征
2.  染色體異常常見(jiàn)的類(lèi)型
3.  染色體異常的檢測(cè)方法

二,、熒光原位雜交及其探針
1.  熒光原位雜交的原理
2.  熒光原位雜交的探針

三、熒光原位雜交探針的制備和熒光原位雜交(按試驗(yàn)流程介紹)

一,、 概述
1.  克隆性染色體異常是腫瘤的特征
1914年德國(guó)遺傳學(xué)家Boveri就提出染色體畸變與腫瘤起源相關(guān),,然而這還僅僅只是一個(gè)假說(shuō);1960年Nowell和Hungerford在7例慢性髓系白血?。╟hronic myeloid leukemia,,CML)的患者中發(fā)現(xiàn)后來(lái)被稱(chēng)為費(fèi)城染色體(Philadelphia chromosome)的微小染色體,;1973年Rowley證實(shí)了Ph染色體是9號(hào)和22號(hào)染色體易位所致,,這是人們?cè)谀[瘤中認(rèn)識(shí)到的*個(gè)染色體易位;目前,,已經(jīng)有11,500篇文獻(xiàn)報(bào)道了55,600多種克隆性細(xì)胞遺傳學(xué)異常,。這些染色體畸變,尤其是染色體易位及其相應(yīng)的融合基因在腫瘤致病的起始階段有著重要的作用,,無(wú)不說(shuō)明克隆性細(xì)胞遺傳學(xué)異常是腫瘤的特征,,在腫瘤起源中起重要作用。


下圖是各種疾病報(bào)告的克隆性染色體異常病例數(shù)

2.  染色體異常的常見(jiàn)類(lèi)型
染色體異常指數(shù)目異常和結(jié)構(gòu)異常兩類(lèi):前者包括整條染色體數(shù)目的擴(kuò)增和缺失,;后者包括染色體易位,、插入、倒置,、區(qū)帶的缺失或擴(kuò)增等,。

下圖是染色體數(shù)目異常  


染色體結(jié)構(gòu)異常


3.  染色體異常的檢測(cè)方法
染色體異常的識(shí)別得益于二十世紀(jì)六十年代后發(fā)展起來(lái)的胰蛋白酶-姬姆薩染色和常規(guī)顯帶技術(shù),使得常規(guī)篩查全基因組染色體異常和檢測(cè)染色體核型改變成為可能,。染色體顯帶是細(xì)胞遺傳學(xué)分析技術(shù)中標(biāo)準(zhǔn)和常用的方法,,但耗時(shí)且依賴(lài)于獲得良好的分裂相,還難于分析復(fù)雜和隱匿的異常,。


 

PCR或熒光原位雜交(FISH,,fluorescent in situ hybridization)對(duì)染色體異常的檢出依賴(lài)于引物或探針與模板的結(jié)合,因此較常規(guī)顯帶具有更高的特異性,,是高通量檢測(cè)染色體異常的敏感和特異的方法,。   


 

二、 熒光原位雜交及其探針
1.  熒光原位雜交的原理
染色體熒光原位雜交始于傳統(tǒng)的細(xì)胞遺傳學(xué)和DNA技術(shù)的結(jié)合,,這種結(jié)合開(kāi)創(chuàng)了一門(mén)新的學(xué)科——分子細(xì)胞遺傳學(xué),。其基礎(chǔ)是Southern blot原理,以半抗原如生物素、地高辛間接標(biāo)記或以熒光素直接標(biāo)記的已知核酸分子為探針,,探針和靶序列雙鏈DNA變性后雜交,,互補(bǔ)的異源單鏈DNA分子在適宜的溫度和離子強(qiáng)度下退火形成穩(wěn)定的異源雙鏈DNA,通過(guò)熒光標(biāo)記的親和素或抗地高辛抗體將半抗原顯示出來(lái),,通過(guò)熒光顯微鏡觀察雜交信號(hào),。FISH具有快速靈敏、特異性好的特點(diǎn),,可同時(shí)分析分裂期和間期的多個(gè)細(xì)胞,,并進(jìn)行定量;可以檢測(cè)隱匿或微小的染色體畸變以及復(fù)雜核型,;還可以使用多種熒光標(biāo)記,,顯示DNA段及基因之間的相對(duì)位置與方向,空間定位,。 


 

2.  熒光原位雜交探針的類(lèi)型
FISH技術(shù)種類(lèi)甚多,,發(fā)展迅速,其實(shí)現(xiàn)需要獲得能與靶序列互補(bǔ)結(jié)合的探針,。常用的探針有以下三類(lèi):
(1)染色體重復(fù)序列探針,,主要是指著絲粒α-衛(wèi)星 DNA重復(fù)序列探針和端粒重復(fù)序列探針,用以檢測(cè)染色體數(shù)目異常,,同時(shí)由于G顯帶時(shí),,端粒區(qū)是蒼白的,因此涉及此區(qū)的易位常難以檢測(cè),,而應(yīng)用端粒探針則彌補(bǔ)了G顯帶的不足,;
(2)染色體涂染探針,包括通過(guò)流式分選或顯微切割獲得的全染色體或染色體臂以及特異性區(qū)帶的涂染探針,,用以檢測(cè)染色體數(shù)目或結(jié)構(gòu)異常,;
(3)染色體單一序列探針,包括各類(lèi)人工染色體探針,,如酵母人工染色體(yeast artificial chromosome, YAC),、細(xì)菌人工染色體(bacterial artificial chromosome, BAC)、P1人工染色體(P1 artificial chromosome, PAC)探針,,主要用以識(shí)別染色體的易位,、缺失和擴(kuò)增。

α-衛(wèi)星DNA(alpha salite DNA)是*一個(gè)存在于所有人類(lèi)染色體著絲粒區(qū)域的著絲粒DNA(centromere DNA,,CEN-DNA)家族,,由171bp的單體為單位組成的高度串聯(lián)重復(fù)片段,重復(fù)數(shù)百次至數(shù)千次,,跨越長(zhǎng)達(dá)100kb的著絲粒DNA區(qū)域,,其雜交將產(chǎn)生很強(qiáng)的雜交信號(hào),。因此常被選為著絲粒探針的來(lái)源。


 

The Wellcome Trust Sanger Institute(Hinxton, Cambridge)由Wellcome Trust和British Medical Research Council聯(lián)合建立,,是世界上較早開(kāi)展人類(lèi)基因組大規(guī)模測(cè)序并具有相當(dāng)實(shí)力的測(cè)序中心,。該中心利用能容納大片段人類(lèi)基因組DNA的高容量載體(如粘粒、BAC,、PAC等)構(gòu)建了大片段人類(lèi)基因組DNA文庫(kù),,通過(guò)文庫(kù)中末端相互重疊的DNA段連接成疊連群(contig)并與鳥(niǎo)槍法相結(jié)合,加快了基因組測(cè)序,,實(shí)現(xiàn)了人類(lèi)基因組計(jì)劃(Human Genome Project,,HGP)中人類(lèi)基因組的物理作圖(physical mapping)和基因組測(cè)序相結(jié)合的目標(biāo)。因此,,這些克隆文庫(kù)為基因定位研究提供了豐富的DNA 序列資源,,NCBI Clone Registry、Ensembl Genome Browser和UCSC Genome Bioinformatics提供的網(wǎng)絡(luò)生物信息學(xué)資源也記載了許多克隆基因組定位的詳細(xì)信息,,為我們選擇相應(yīng)克隆為作為染色體單一序列和端粒探針的來(lái)源提供了便利,。

大片段人類(lèi)基因組DNA文庫(kù)的構(gòu)建過(guò)程


常用的BAC、PAC文庫(kù)  


 

人類(lèi)基因組的鳥(niǎo)槍法測(cè)序和物理作圖


 

定位檢索BAC,、PAC克隆的常用數(shù)據(jù)庫(kù)


 

三,、 熒光原位雜交探針的制備和熒光原位雜交
實(shí)驗(yàn)流程


*天
缺口平移標(biāo)記探針
1.1 試劑準(zhǔn)備
(1) 0.1 mmol/L dNTP 0.3 mmol/L dATP,、0.3 mmol/L dCTP和0.3 mmol/L dGTP等體積混合,。
(2) 0.1mmol/L dTTP 1倍體積的0.3mmol/L dTTP和2倍體積的三蒸水混合。

1.2 缺口平移體系和反應(yīng)條件
0.1mmol/L dTTP 6.5μl
0.1mmol/L dNTP 10μl
10× Nick Translation buffer 5μl
1mmol/L DIG-11-dUTP /Biotin-16-dUTP 0.5μl
Nick Translation Enzyme 10μl
DNA (1μg) X μl
H2O 18-X μl
in total 50μl

以上為標(biāo)記1μg DNA的缺口平移體系,,若標(biāo)記更多量的DNA,,則試劑量和反應(yīng)體系相應(yīng)等倍擴(kuò)大。各成分混勻后短時(shí)離心,。對(duì)于≤10kb的質(zhì)粒,,于15 ℃ 反應(yīng)3.5小時(shí);對(duì)于BAC/PAC,,于15 ℃ 反應(yīng)9小時(shí),。

1.3 凝膠電泳判斷探針大小
將EP管置于冰上,取其中5 μl 于70 ℃加熱5分鐘后行2 %瓊脂糖凝膠電泳以觀察所標(biāo)記探針的大小,,單一序列探針合適大小為200~600 bp,;如片段大小偏大,則于15℃延長(zhǎng)反應(yīng)10~30分鐘,,再重復(fù)進(jìn)行凝膠電泳,,直至得到合適大小的探針。

1.4 終止反應(yīng)
向反應(yīng)體系中加入1 μl 0.5 M EDTA和(或)70 ℃加熱5分鐘,,以滅活酶,。探針于-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/span>

第二天
1. 探針的沉淀和變性
1.1 探針混合物的組成
(1) 對(duì)BAC/PAC探針
DNA探針 5ul
Human Cot-1 DNA 3ul
Salmon Sperm DNA 0.5ul
H2O 1.5ul
in total 10ul
(2) 對(duì)著絲粒探針:
DNA探針 5ul
Salmon Sperm DNA 0.5ul
H2O 4.5ul
in total 10ul

1.2 DNA的沉淀
將探針混合物與1ul(V/10)3M 醋酸鈉(PH5.2)和27.5ul(2.5V)無(wú)水乙醇(-20℃凍存)混合,,-80℃沉淀30min(或-20℃沉淀),以14000g在4℃離心30min,,以沉淀DNA,。

1.3 清洗沉淀
小心棄去上清,用70 %乙醇洗滌一次,,再次以14000g在4℃離心15min,;小心棄去上清,在45~50℃的中溫水浴中風(fēng)干DNA沉淀10~15min,。

注:當(dāng)大部分乙醇蒸發(fā)時(shí),,白色的DNA沉淀變?yōu)榘胪该鳡睿灰欢ㄒ?清除乙醇,,否則會(huì)在加入Master Mix后產(chǎn)生微小的沉淀,,導(dǎo)致高背景。

1.4 溶解探針
加入5μl 預(yù)熱至37℃的去離子甲酰胺(PH 7.0),,短時(shí)離心后在37 ℃振搖30 min以充分溶解DNA,;再加入預(yù)熱至37 ℃的Master Mix 5μl,短時(shí)離心后在37 ℃振搖15~30 min,。
注:振搖時(shí)間盡可能延長(zhǎng),;DNA沉淀亦可以TE緩沖液1.1 μl溶解后加入Vysis探針緩沖液4.4 μl稀釋?zhuān)靹蚝笏矔r(shí)離心,37 ℃振搖15~30 min,。
 
1.5 探針的變性和預(yù)雜交
短時(shí)離心后于80 ℃水浴中變性探針10 min,,冰浴5分鐘;短時(shí)離心,,于37 ℃水浴中預(yù)雜交30~60 min,;*序列探針(如cDNA)和重復(fù)序列探針(如α-衛(wèi)星DNA)探針,無(wú)需預(yù)雜交,。

2. 標(biāo)本(染色體靶DNA)的處理和變性
2.1 滴片和老化
取出儲(chǔ)存于-20 ℃的細(xì)胞懸液標(biāo)本,,以1100 rpm.離心10 min沉淀細(xì)胞,換用適量體積的新鮮甲醇:冰乙醇(v/v)=3:1固定液重懸細(xì)胞并調(diào)整細(xì)胞密度,,滴片,,劃出雜交區(qū)域,晾干,;在預(yù)熱到 37 ℃ 的2×SSC中老化30 min(也可實(shí)驗(yàn)前夜室溫老化再以2×SSC浸泡2分鐘),;依次于70 %、90 %和100 %的梯度乙醇中依次脫水,,每缸2min,,晾干(以下略作“梯度乙醇脫水后涼干”)。

2.2 RNase A消化
每張玻片上加30 μl 100 μg/ml RNA酶(將10mg/ml的RNase A儲(chǔ)存液稀釋100倍),,蓋上22×22 mm蓋玻片,,置于37℃濕盒中孵育1小時(shí),;室溫下2×SSC中振蕩洗滌,5min/次×3次,;梯度乙醇脫水后涼干,。

2.3 靶DNA的變性
將玻片放入預(yù)溫至72 ℃(每增加一張玻片,溫度要提高1℃)的70 %去離子甲酰胺/2×SSC中變性2分鐘后,,立即置入預(yù)冷至-20 ℃保存的梯度乙醇脫水晾干,。

2.4 蛋白酶消化
將50 μl 100 mg/ml的胃蛋白酶(終濃度為0.01 %)加入預(yù)溫至37℃的50ml蒸餾水(PH 2.0,以適量稀鹽酸酸化)中,,混勻,;將變性后的玻片放入其中處理10分鐘;室溫下1×PBS中振蕩洗滌,,5min/次×2次,;室溫下梯度乙醇脫水后涼干。
注:靶DNA的變性和消化應(yīng)與探針變性同步進(jìn)行,,完成后盡快進(jìn)行雜交,。

3. 雜交
將變性后的DNA探針加于玻片雜交區(qū)域,蓋上22mm×22mm蓋玻片,,封片后置于濕盒中,,37 ℃雜交。

第三天
1. 雜交后洗滌和半抗原信號(hào)放大
1.1 雜交后洗片
小心揭去封片膠和蓋玻片,,將玻片置于預(yù)熱至46 ℃的50 %甲酰胺/2×SSC中,,5 min×3缸;將玻片移入室溫下4×SSC/0.1 % Tween-20中振蕩洗滌5 min×2缸,;每張玻片滴加30 μl阻斷液1,,蓋上22mm×22mm蓋玻片,,于37 ℃濕盒中孵育30 min,;再次將玻片移入室溫下4×SSC/0.1 % Tween-20中振蕩洗滌5min×2缸。
注:此后步驟應(yīng)注意避光操作,。

1.2 滴加一抗
將4 μl Anti-DIG monoclonal antibody 和0.5 μl Texas-red-Avidin 稀釋于100 μl 抗體稀釋液1中,,混勻;每張玻片滴加25 μl 于雜交區(qū)域,,蓋上22mm×22mm蓋玻片,,于37℃濕盒中孵育1小時(shí);室溫下4×SSC/0.1 % Tween-20中振蕩洗滌5min×2缸,。

1.3 滴加二抗
將4 μl Anti-mouse-Ig-DIG 和1 μl Biotinylated goat anti-Avidin 稀釋于100 μl 抗體稀釋液1中,,混勻;每張玻片滴加25 μl 于雜交區(qū)域,,蓋上22mm×22mm蓋玻片,,于37℃濕盒中孵育40min,;室溫下4×SSC/0.1 % Tween-20中振蕩洗滌5min×2缸。

1.4 滴加三抗
將4 μl Anti-DIG-Fluorescein和0.5 μl Texas-red-Avidin 稀釋于100 μl 抗體稀釋液1中,,混勻,;每張玻片滴加25 μl 于雜交區(qū)域,蓋上22mm×22mm蓋玻片,,于37℃濕盒中孵育30min,;室溫下4×SSC/0.1 % Tween-20中振蕩洗滌5min×2缸。
注:以上步驟按雙色FISH描述,,若為單色FISH則選擇相應(yīng)抗體即可,。

2. 核復(fù)染和抗熒光淬滅劑封片
將1.25 μl 5 mg/ml的DAPI加入50 ml 2×SSC中(終濃度為125 ng/ml,避光保存于4℃),,混勻,;將玻片置于其中,避光復(fù)染2min,;2×SSC中洗滌5min,;梯度乙醇脫水晾干;每張玻片滴加10 μl 抗熒光淬滅劑封片,,蓋上22mm×22mm蓋玻片,,-20 ℃避光保存。

3. 熒光顯微鏡檢測(cè)FISH雜交信號(hào)
以熒光顯微鏡觀察,,在DAPI/FITC/Texas Red濾光鏡激發(fā)下觀察中期/間期細(xì)胞的熒光雜交信號(hào),,計(jì)數(shù)細(xì)胞和采集圖像。每例分析100~200個(gè)間期細(xì)胞核細(xì)胞,,重疊,、破損、未去除細(xì)胞質(zhì)和雜交信號(hào)微弱的細(xì)胞核不計(jì)入其中,。對(duì)于雙色雙融合FISH,,細(xì)胞內(nèi)雜交信號(hào)相互靠近(<1/10核直徑的距離)者計(jì)為一個(gè)信號(hào)。

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