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DNA實(shí)驗(yàn)技術(shù):SSR標(biāo)記實(shí)驗(yàn)步驟

2013-8-6  閱讀(2012)

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一,、簡介:

SSR簡單序列重復(fù)標(biāo)記(Simple sequence repeat, 簡稱SSR標(biāo)記),,也叫微衛(wèi)星序列重復(fù),,是由一類由幾個核苷酸(1-5個)為重復(fù)單位組成的長達(dá)幾十個核苷酸的重復(fù)序列,,長度較短,,廣泛分布在染色體上。由于重復(fù)單位的次數(shù)的不同或重復(fù)程度的不*相同,,造成了SSR長度的高度變異性,,由此而產(chǎn)生SSR標(biāo)記或SSLP標(biāo)記。雖然SSR在基因組上的位置不盡相同,,但是其兩端序列多是保守的單拷貝序列,,因此可以用微衛(wèi)星區(qū)域特定順序設(shè)計成對引物,通過PCR技術(shù),,經(jīng)聚丙烯酰胺凝膠電泳,,即可顯示SSR位點(diǎn)在不同個體間的多態(tài)性。

優(yōu)點(diǎn):

(1)標(biāo)記數(shù)量豐富,,具有較多的等位變異,,廣泛分布于各條染色體上;

(2)是共顯性標(biāo)記,呈孟德爾遺傳,;

(3)技術(shù)重復(fù)性好,,易于操作,結(jié)果可靠,。

缺點(diǎn):

開發(fā)此類標(biāo)記需要預(yù)先得知標(biāo)記兩端的序列信息,,而且引物合成費(fèi)用較高。

二,、操作程序:

取葉片→磨樣→提取DNA→PCR擴(kuò)增→電泳檢測→染色→讀帶標(biāo)記,。

1、DNA提取

按照Doyle和Dickson(1987)CTAB法(`Cetyl triethyl ammonium bromide)并略加改進(jìn)的程序進(jìn)行,,具體步驟如下:

①  成熟期取葉片加液氮研磨成粉末狀,轉(zhuǎn)入1.5ml離心管中,,-20℃冰箱保存,;

②  加入600μl 65℃的2×CTAB混勻并置于65℃水浴中保溫30-60分鐘;

③  取出,,冷卻,,上下?lián)u勻后,加入600微升24:1的氯仿異戊醇,;

④  12000轉(zhuǎn)/分鐘離心10分鐘,,取上清液于另一個1.5ml的離心管中;

⑤  加異丙醇,,12000轉(zhuǎn)/分鐘離心10分鐘,,倒掉上清液;

⑥  干后用100%的灑精清洗,,干后加適量TE,。

2、PCR擴(kuò)增

模板DNA的濃度大約25ng/μl,擴(kuò)增反應(yīng)體系為20μl,。具體如下:

Sterile ddH2O        11μl

PCR Buffer              3μl

dNTP-mix                 0.5μl

Primer1                     1μl

Primer2                     1μl

Taq polymerase      0.5ul(2U/μl)

DNA                            3μl  

PCR擴(kuò)增程序?yàn)椋海?h30min)  

①  預(yù)變性:94℃,,5分鐘;

②  變  性:94℃,,40秒,;

③  退  火:55℃  40秒;

④  延  伸:72℃,,1分鐘,;

⑤  循  環(huán):從2到4共38個循環(huán);

⑥  72℃下zui后延伸5分鐘,;4℃ 5min,,擴(kuò)增產(chǎn)物置于4℃的冰箱保存。

3、擴(kuò)增產(chǎn)物的電泳分離

制膠→灌膠→上樣→電泳,。

擴(kuò)增產(chǎn)物用8%的聚丙烯酰胺變性膠電泳分離,,步驟如下:

①  準(zhǔn)備電極液(1×TBE);

②  將梳子撥出,,并迅速用電極液沖洗膠面,;

③  不預(yù)電泳;

④  點(diǎn)樣,,電泳220V,;

⑤  拆板,并及時將內(nèi)板,、邊條及梳子洗凈,。

4、凝膠染色

①  固定:10%醋酸,,5分鐘,;

②  染色:10分鐘;

③  漂洗:dH2O,,5-10秒,;

④  顯色:甲醛-NaOH,直到滿意為止,;

⑤  漂洗:dH2O,,2分鐘。

 5,、自封帶封膠,,讀帶標(biāo)記,數(shù)碼照相攝像,,室溫風(fēng)干

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