描述：

AO/PI雙染試劑盒是采用 AO/PI 探針雙染細胞核的方法檢測凋亡細胞的狀態(tài),，是細胞凋亡形態(tài)學研究常用的染色方法,。吖啶橙（Acridine Orange，AO）為一種具有細胞膜通透性的熒光染料,，該染料能透過活細胞膜,，使核 DNA 和 RNA 染色。它與細胞中 DNA 和 RNA 結(jié)合量存在差別,，復合物可發(fā)出不同顏色的熒光,，AO 與 dsDNA 結(jié)合時發(fā)出綠色熒光，而與 ssDNA 和 RNA 結(jié)合時發(fā)出紅色熒光,。當與 DNA 結(jié)合時,，它與熒光素在光譜上非常相似，激發(fā)最大值為 502nm,，發(fā)射最大值為 525nm（綠色）,。當它與 RNA 結(jié)合時，激發(fā)最大值移至 460nm（藍色）,，發(fā)射最大值移至 650nm（紅色）,。

在熒光顯微鏡下觀察，吖啶橙可透過正常細胞膜,，使細胞核呈綠色或黃綠色均勻熒光；而在凋亡細胞中,，因染色質(zhì)固縮或斷裂為大小不等的片斷,，形成凋亡小體。吖啶橙使其染上致密濃染的黃綠色熒光,，或黃綠色碎片顆粒,；而壞死細胞黃熒光減弱甚至消失。Propidium Iodide 是一種 DNA 結(jié)合性染料,，其激發(fā)和發(fā)射波長分別為 488nm 和 630nm,，產(chǎn)生紅色熒光，但無膜通透性,，不能透過活細胞膜,，只能染死細胞。因此,，在熒光顯微鏡下觀察,，正常細胞不能著色，早期凋亡細胞呈微弱紅光,，晚期凋亡細胞紅光加強,，壞死細胞呈強紅色熒光。

應(yīng)用：

流式細胞儀,；激光共聚焦,；熒光顯微鏡

使用方法：

1,、試劑準備：
PBS 緩沖液（pH7.4）或者HBSS（Hank's Balanced Salt Solution）

2、耗材準備
離心管,、吸頭,、一次性手套

3、染色工作液配制：
（1） 根據(jù)樣品數(shù),，按下列比例配制染色緩沖液,。 取 100μL 試劑 C 用 900μL 純水稀釋，充分混勻即成染色緩沖液,。
（2）每 500μL 染色緩沖液加入 5ul AO 染色液和 10ul PI 染色液,，充分混勻，即成染色工作液,。

4,、懸浮細胞染色
（1）收集樣本細胞，細胞數(shù)量在 10X105 個以內(nèi),。
（2）用 PBS 洗滌細胞兩次,。
（3）用 500μL 染色工作液將細胞重懸。
（4）輕輕混勻后 4℃避光孵育 10-20 分鐘,。
（5）用 PBS 洗滌細胞,。
（6）用熒光顯微鏡或流式細胞儀檢測結(jié)果。

5,、貼壁細胞原位染色
（1）用 PBS 洗滌細胞 2 次,。
（2）細胞培養(yǎng)板中或細胞爬片上加入適量體積的染色工作液。
（3）37 ℃孵育細胞 10～20 分鐘,，不同的細胞最佳培養(yǎng)時間不同,。可以用 20 分鐘作為起始孵育時間,，之后優(yōu) 化體系以得到均一的標記結(jié)果,。
（4）吸干染色工作液，用培養(yǎng)基洗培養(yǎng)板或蓋玻片 2～3 次,，每次用預熱的培養(yǎng)基覆蓋所有細胞,，然后吸干培養(yǎng)基。

結(jié)果分析 ：
在熒光顯微鏡下,，選用 488nm 激發(fā)光鏡檢：
AO 染色正常細胞 DNA 呈均勻黃色或黃綠色,，形態(tài)結(jié)構(gòu)正常。
當細胞凋亡時,，染色質(zhì)濃縮,，細胞核碎裂成點狀，被染成大小不一、致密濃染,。
壞死細胞呈強紅色熒光,。

注意事項：

1、螺旋蓋微量試劑管裝的試劑在開蓋前請短暫離心,，將蓋內(nèi)壁上的液體收集至管底,，避免開蓋時液體灑落。
2,、細胞處理需要小心操作,盡量避免人為的損傷細胞,。
3、本染色試劑盒可用于細胞,、細胞涂片等,。以下以懸浮培養(yǎng)細胞的熒光顯微鏡檢測為例，其他方法請參閱相關(guān)資料,。
4,、貼壁細胞可以消化下來染色，也可以直接原位染色,。