不知道大家是否會遇到細胞凍存的時候狀態(tài)非常不錯,，結(jié)果等到需要用到該細胞的時候怎么也復(fù)蘇不起來的情況啊,？或許可能是凍存細胞的時候出現(xiàn)了什么差錯,？
一.細胞凍存的原則：慢凍,，細胞在冷凍過程中，如果降溫過快,，會形成大的冰晶,，這些冰晶會破壞細胞結(jié)構(gòu)，導(dǎo)致細胞死亡,。
詳細版本見《細胞凍存的原理是什么,？》
二.凍存液的配置：
常用配置比例：培養(yǎng)基:血清:DMSO=7:2:1
適用于大多數(shù)細胞系，能夠保證細胞在凍存過程中有較高的存活率,。
血清:DMSO=9:1
適用范圍：適用于需要長時間保存或者具有特別珍貴性的細胞系,。血清含量高，可以更好地保護細胞,，并確保其在凍存后依然保持較好的生物學(xué)特性,。
無血清凍存液：適用于某些對血清敏感或需要避免血清成分的細胞系,。配置比例：如10% DMSO+90%專用無血清培養(yǎng)基，或其他適合細胞生長的無血清替代品,。
凍存注意事項?。?！
詳細版本見《細胞凍存的注意事項》
1.不要將DMSO直接加入含有細胞的培養(yǎng)基中,，因為DMSO溶于培養(yǎng)基時會釋放大量熱量，可能燙傷細胞,。在加入細胞前,，可以將配置好的凍存液放于4℃進行預(yù)冷（預(yù)冷步驟并非必需)。DMSO在4°C時毒性會大大減弱,，且滲透速度加快,，有助于保護細胞。
2.若使用凍存盒進行凍存,，必須將凍存盒解凍至室溫（避免溫度驟變對細胞的損傷：如果直接將冷凍的凍存盒從低溫環(huán)境取出,，并立即打開或處理,，細胞會受到溫度驟變的影響,。
溫度的急劇上升可能導(dǎo)致細胞內(nèi)冰晶的形成或擴大，對細胞膜和細胞器造成機械性損傷,，進而影響細胞的存活率,。)
3.把握細胞凍存的密度：應(yīng)確保細胞處于對數(shù)生長期，形態(tài)正常,，無污染,，且細胞密度足夠大，因為凍存和復(fù)蘇的過程中不可避免會導(dǎo)致部分細胞死亡,。
細胞凍存的步驟：
詳細版本見《細胞凍存的實驗步驟》
1.配置好細胞凍存液,，置于4℃預(yù)冷備用
2.將待凍存的細胞從培養(yǎng)箱中取出，棄去舊的培養(yǎng)基,，PBS洗滌,，對于貼壁細胞，加入適量胰酶消化液,，將培養(yǎng)皿放入37℃培養(yǎng)箱中消化數(shù)分鐘（消化時間根據(jù)細胞類型而定）當(dāng)觀察到細胞大塊大塊地從皿底脫落時,，加入等體積的wan全培養(yǎng)基終止消化。離心收集細胞,；對于懸浮細胞直接離心收集
3.向離心管中加入適量的凍存液,，用移液器輕輕吹打細胞沉淀，使細胞均勻懸浮于凍存液中,。
4.將重懸后的細胞懸液分裝至無菌凍存管中,，凍存管放入-80過夜,，次日轉(zhuǎn)移置液氮保存。
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