材料與儀器
組織
Hanks 培養(yǎng)液 胰蛋白酶
吸管 平皿 培養(yǎng)瓶 燒杯 攪拌器 三角燒瓶 不銹鋼篩 眼科剪 眼科鑷 計數(shù)板
實驗步驟
1. 準備
取各種已消毒的培養(yǎng)用品置于凈化臺面，紫外線消毒20 分鐘；
2. 布局
點燃酒精燈（或煤氣燈），安裝吸管帽（應通過火焰）,；
3. 處理組織
把組織塊置入燒杯中，用Hanks液漂洗2~3 次，去除血污,；如懷疑組織可能污染，可先置于含有青鏈霉素的混合液中30~60 分鐘,；
4. 剪切
用眼科剪把組織塊切成2~3 毫米大小的塊（用手術刀割亦可）,，以便于消化；加入比組織塊總量多30~50 倍的胰蛋白酶液,，然后一并倒入三角燒瓶中,，結扎瓶口或塞以膠塞；
5. 消化
或用恒溫水浴，或置入37 ℃溫箱消化均可,，消化中每隔20 分鐘應搖動一次,，如用電磁恒溫攪拌器消化更好（消化前瓶中需置一無菌攪棒）；消化時間依組織塊的大小和組織的硬度而定,；
6. 分離
在消化過程中見消化液發(fā)混濁時,，可用吸管吸出少許消化液在鏡下觀察，如組織已分散成細胞團或單個細胞,，立即終止消化,，隨即通過適宜不銹鋼篩，濾掉尚未充分消化開的組織塊（必要時可繼續(xù)進行消化）,；低速（500~1000 轉(zhuǎn)/分）離心消化液5 分鐘,，吸出上清，加入適量含有血清的培養(yǎng)液（如有其它酶或EDTA 等消化,，需用Hanks液洗脫一兩次后,，再加入培養(yǎng)液）；
7. 計數(shù)
用計數(shù)板計數(shù),，如細胞懸液細胞密度過大,，再補加培養(yǎng)液調(diào)整后，分裝入培養(yǎng)瓶中,；對大多數(shù)細胞來說,，pH 要求在7.2~7.4范圍，培養(yǎng)液呈微紅色,，如顏色偏黃,，說膽液體變酸，可用NaHCO3調(diào)整,；
8. 培養(yǎng)
置入36.5 ℃溫箱培養(yǎng),；如用CO2溫箱培養(yǎng)，瓶口需用紗布棉塞或螺旋帽（松口）堵塞,，紗布塞易生霉菌,，每次換液時需更換新塞。
