詳細介紹
α酮戊二酸脫氫酶(αKGDH)測試盒微量法
本公司所有產品僅供科學實驗,,不做其他科學實驗外的使用,!
商品屬性:
貨號 | GOY-SH131 | 檢測方法 | 微量法 |
規(guī)格 | 100管/96樣 | 產品類別 | 三羧酸循環(huán)系列 |
測定意義:
α-KGDH(EC 1.2.4.2)廣泛存在于動物,、植物微生物和培養(yǎng)細胞的線粒體中,,是三羧酸循環(huán)調控關鍵酶之一,,催化α-酮戊二酸氧化脫羧生成琥珀酰輔酶。
測定原理
α-KGDH催化α-酮戊二酸,、NAD+ 和輔酶生成琥珀酰輔酶、 二氧化碳和 NADH,,NADH在340 nm有特征吸收峰,以NADH的生成速率表示α-KGDH活性,。
需自備的儀器和用品
紫外分光光度計/酶標儀、水浴鍋,、臺式離心機,、可調式移液器,、微量石英比色皿/96孔板、研缽,、冰和蒸餾水,。
試劑的組成和配制:
提取液一:液體 100mL×1 瓶,,4℃保存,。
提取液二:液體 100mL×1 瓶,4℃保存,。
試劑一:粉劑×1 瓶,-20℃保存,;
試劑二:液體 20mL×1 瓶,,4℃保存,;
試劑三:液體 14uL×1 支,4℃保存,;
組織樣本的前處
①總 GAPDH 酶提?。航ㄗh稱取約 0.1g 樣本,,加入 1mL 提取液一,,冰浴勻漿后超聲破碎(冰浴,200W,,破碎 3s,,間歇 7s,總時間 1min),,然后 4℃,,8000g 離心 10min,,取上清測定。
②胞漿和葉綠體 GAPDH 酶的分離:按照植物組織質量(g):提取液體積(mL)為 1:5~10的比例(建議稱取約 0.1g 樣本,,加入 1mL 提取液一),,冰浴勻漿后于 4℃,200g 離心 5min,,棄沉淀,,取上清4℃,8000g 離心 10min,,取上清用于測定胞漿 GAPDH 酶活性,,取沉淀加 1mL 提取液二,震蕩溶解后超聲破碎(冰浴,,200W,破碎 3s,,間歇 7s,總時間 1min),,然后 4℃,8000g 離心 10min,,取清測定葉綠體中 GAPDH 酶活性,。建議測定總 GAPDH 酶活性,,按照步驟①提取粗酶液,若需要分別測定胞漿和葉綠體中的GAPDH,,則按照步驟②提取粗酶液。細菌或培養(yǎng)細胞的前處理先收集細菌或細胞到離心管內,,離心后棄上清,;按照細菌或細胞數(shù)量(104個):提取液一體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建議 500 萬細菌或細胞加入 1mL 提取液一),超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,,功率 20%或 200W,超聲 3s,,間隔 10s,,重復 30 次);8000g 4℃離心10min,,取上清,,置冰上待測,。
測定步驟:
1、 分光光度計或酶標儀預熱 30min 以上,,調節(jié)波長至 340nm,,蒸餾水調零。
2,、 樣本測定
(1)工作液的配制:將試劑二全部倒入試劑一瓶中,,充分溶解,37℃(哺乳動物)或 25℃(其它物種)預熱 10 分鐘,;用不完的試劑分裝后-20℃保存,,禁止反復凍融。
(2)在試劑三中加入 500μL 蒸餾水,,充分混勻待用,;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復凍融,。
(3)在微量石英比色皿或 96 孔板中加入 5μL 樣本,、5μL 試劑三和 190μL 工作液,混勻,,加入最后一個試劑的同時開始計時,,記錄 340nm 處 20s 時的吸光值 A1 和 5min20s 后的吸光值 A2,計算 ΔA=A1-A2,。
GAPDH 活性計算
a.用微量石英比色皿測定的計算公式如下
(1)按樣本蛋白濃度計算
單位的定義:每 mg 組織蛋白每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位,。GAPDH(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷(V 樣×Cpr) ÷T=1286×ΔA÷Cpr
(2)按樣本鮮重計算
單位的定義:每 g 組織每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位。GAPDH(nmol/min/g 鮮重)=[ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷(W ×V 樣÷V 樣總) ÷T=1286×ΔA÷W
(3)按細菌或細胞密度計算
單位的定義:每一萬個細菌或細胞每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位,。GAPDH(nmol/min/104cell)=[ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷(500 ×V 樣÷V 樣總) ÷T=2.572×ΔA
V 反總:反應體系總體積,,2×10-4L;ε:NADH 摩爾消光系數(shù),,6.22×103L / mol /cm,;d:比色皿光徑,1cm,;V 樣:加入樣本體積,,0.005 mL;V 樣總:加入提取液體積,,1 mL,;T:反應時間,5 min,;Cpr:樣本蛋白質濃度,,mg/mL,;W:樣本質量,g,;500:細菌或細胞總數(shù),,500 萬。
b.用 96 孔板測定的計算公式如下
(1)按樣本蛋白濃度計算
單位的定義:每 mg 組織蛋白每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位,。GAPDH(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷(V 樣×Cpr) ÷T=2572×ΔA÷Cpr
(2)按樣本鮮重計算
單位的定義:每 g 組織每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位,。GAPDH(nmol/min/g 鮮重)=[ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷(W ×V 樣÷V 樣總) ÷T=2572×ΔA÷W
(3)按細菌或細胞密度計算
單位的定義:每一萬個細菌或細胞每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位,。GAPDH(nmol/min/104cell)=[ΔA×V 反總÷(ε×d)×109]÷(500 ×V 樣÷V 樣總) ÷T=5.144×ΔA
V 反總:反應體系總體積,,2×10-4L;ε:NADH 摩爾消光系數(shù),,6.22×103L / mol /cm,;d:96 孔板光徑,0.5cm,;V 樣:加入樣本體積,,0.005 mL;V 樣總:加入提取液體積,,1 mL,;T:反應時間,5 min,;Cpr:樣本蛋白質濃度,,mg/mL;W:樣本質量,,g,;500:細菌或細胞總數(shù),500 萬,。
生化試劑盒的使用注意事項:
選擇合適的試劑盒:根據實驗目的和檢測對象選擇合適的試劑盒,,確保實驗的準確性和可靠性。
嚴格遵循說明書:按照試劑盒的說明書進行操作,,避免誤用或浪費,。
注意保存條件:按照試劑盒的保存條件進行妥善保存,避免陽光直射,、高溫或潮濕等不利因素,。
控制實驗條件:在實驗過程中嚴格控制實驗條件,如溫度,、時間,、pH值等,以確保實驗結果的穩(wěn)定性,。
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