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淀粉磷酸化酶(SP)測試盒紫外分光光度法

本公司所有產品僅供科學實驗,，不做其他科學實驗外的使用,！
商品屬性：

測定意義：

淀粉磷酸化酶（Starch Phosphorylase,，SP）是淀粉代謝過程的可逆反應酶,，既可催化淀粉的合成,，也可催化淀粉的分解,。

在高等植物中,，淀粉磷酸化酶（合成方向）主要存在于質體中,，負責延長淀粉的 α-1,4-葡萄糖鏈的非還原末端；淀粉磷酸化酶（分解方向）主要存在于細胞質基質中,，催化淀粉中的α-1,4-糖苷鍵磷酸解產生葡萄糖-1-磷酸,，負責葡萄糖鏈的磷酸解，是淀粉代謝過程中的關鍵酶,。

在植物體中,，淀粉磷酸化酶分解方向的底物無機磷濃度比合成方向的底物葡萄糖-1-磷酸濃度幾乎高了兩個數量級，一般認為淀粉磷酸化酶只催化淀粉的分解,，因此,，分解方向的淀粉磷酸化酶具有重要測定意義。

測定原理：

淀粉磷酸化酶催化淀粉中的α-1,4-糖苷鍵與無機磷反應產生葡萄糖-1-磷酸,，葡萄糖-1-磷酸在磷酸葡萄糖變位酶的作用下產生葡萄糖-6-磷酸,，并在6-磷酸葡萄糖脫氫酶催化下還原NADP+產生NADPH，使340nm下吸光值增加,。

需自備的儀器和用品：

紫外分光光度計,、臺式離心機、可調式移液器,、1mL石英比色皿,、研缽,、冰和蒸餾水。

試劑的組成和配制:

提取液一：液體 100mL×1 瓶,，4℃保存,。

提取液二：液體 100mL×1 瓶，4℃保存,。

試劑一：粉劑×1 瓶,，-20℃保存；

試劑二：液體 20mL×1 瓶,，4℃保存,；

試劑三：液體 14uL×1 支，4℃保存,；

組織樣本的前處

①總 GAPDH 酶提?。航ㄗh稱取約 0.1g 樣本，加入 1mL 提取液一,，冰浴勻漿后超聲破碎（冰浴,，200W，破碎 3s,，間歇 7s,，總時間 1min），然后 4℃,，8000g 離心 10min,，取上清測定。

②胞漿和葉綠體 GAPDH 酶的分離：按照植物組織質量（g）：提取液體積(mL)為 1：5～10的比例（建議稱取約 0.1g 樣本,，加入 1mL 提取液一）,，冰浴勻漿后于 4℃，200g 離心 5min,，棄沉淀,，取上清4℃，8000g 離心 10min,，取上清用于測定胞漿 GAPDH 酶活性,，取沉淀加 1mL 提取液二，震蕩溶解后超聲破碎（冰浴,，200W,，破碎 3s，間歇 7s,，總時間 1min）,，然后 4℃，8000g 離心 10min，取清測定葉綠體中 GAPDH 酶活性,。建議測定總 GAPDH 酶活性,，按照步驟①提取粗酶液，若需要分別測定胞漿和葉綠體中的GAPDH,，則按照步驟②提取粗酶液,。細菌或培養(yǎng)細胞的前處理先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清,；按照細菌或細胞數量（104個）：提取液一體積（mL）為 500~1000：1 的比例（建議 500 萬細菌或細胞加入 1mL 提取液一）,，超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W,，超聲 3s,，間隔 10s，重復 30 次）,；8000g 4℃離心10min，取上清,，置冰上待測,。

測定步驟:

1、 分光光度計或酶標儀預熱 30min 以上,，調節(jié)波長至 340nm,，蒸餾水調零。

2,、 樣本測定

（1）工作液的配制：將試劑二全部倒入試劑一瓶中,，充分溶解，37℃(哺乳動物)或 25℃(其它物種)預熱 10 分鐘,；用不完的試劑分裝后-20℃保存,，禁止反復凍融。

（2）在試劑三中加入 500μL 蒸餾水,，充分混勻待用,；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復凍融,。

（3）在微量石英比色皿或 96 孔板中加入 5μL 樣本,、5μL 試劑三和 190μL 工作液，混勻,，加入最后一個試劑的同時開始計時,，記錄 340nm 處 20s 時的吸光值 A1 和 5min20s 后的吸光值 A2，計算 ΔA=A1-A2,。

GAPDH 活性計算

a.用微量石英比色皿測定的計算公式如下

（1）按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每 mg 組織蛋白每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位,。GAPDH（nmol/min/mg prot）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(V 樣×Cpr) ÷T=1286×ΔA÷Cpr

（2）按樣本鮮重計算

單位的定義：每 g 組織每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位。GAPDH（nmol/min/g 鮮重）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(W ×V 樣÷V 樣總) ÷T=1286×ΔA÷W

（3）按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每一萬個細菌或細胞每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位。GAPDH（nmol/min/104cell）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(500 ×V 樣÷V 樣總) ÷T=2.572×ΔA

V 反總：反應體系總體積,，2×10-4L,；ε：NADH 摩爾消光系數，6.22×103L / mol /cm,；d：比色皿光徑,，1cm；V 樣：加入樣本體積,，0.005 mL,；V 樣總：加入提取液體積，1 mL,；T：反應時間,，5 min；Cpr：樣本蛋白質濃度,，mg/mL,；W：樣本質量，g,；500：細菌或細胞總數,，500 萬。

b.用 96 孔板測定的計算公式如下

（1）按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每 mg 組織蛋白每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位,。GAPDH（nmol/min/mg prot）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(V 樣×Cpr) ÷T=2572×ΔA÷Cpr

（2）按樣本鮮重計算

單位的定義：每 g 組織每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位,。GAPDH（nmol/min/g 鮮重）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(W ×V 樣÷V 樣總) ÷T=2572×ΔA÷W

（3）按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每一萬個細菌或細胞每分鐘消耗 1 nmol 的 NADH 定義為一個酶活力單位。GAPDH（nmol/min/104cell）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×109]÷(500 ×V 樣÷V 樣總) ÷T=5.144×ΔA

V 反總：反應體系總體積,，2×10-4L,；ε：NADH 摩爾消光系數，6.22×103L / mol /cm,；d：96 孔板光徑,，0.5cm；V 樣：加入樣本體積,，0.005 mL,；V 樣總：加入提取液體積，1 mL,；T：反應時間,，5 min；Cpr：樣本蛋白質濃度,，mg/mL,；W：樣本質量，g,；500：細菌或細胞總數,，500 萬,。

生化試劑盒的使用注意事項：

選擇合適的試劑盒：根據實驗目的和檢測對象選擇合適的試劑盒，確保實驗的準確性和可靠性,。

嚴格遵循說明書：按照試劑盒的說明書進行操作,，避免誤用或浪費。

注意保存條件：按照試劑盒的保存條件進行妥善保存,，避免陽光直射,、高溫或潮濕等不利因素。

控制實驗條件：在實驗過程中嚴格控制實驗條件,，如溫度,、時間、pH值等,，以確保實驗結果的穩(wěn)定性,。

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