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間充質干細胞（mesenchymal stem cells，MSCs）是來源于中胚層的多能成體干細胞,，廣泛存在于臍帶,、骨髓、脂肪,、牙髓,、月經血等組織，體外培養(yǎng)可分化為成骨細胞,、軟骨細胞,、脂肪細胞等多種類型的細胞。

圖1 The Mesengenic Process（圖片來源于文獻，僅供學習參考用）

MSCs具有自我更新能力和多向分化潛能,，能夠釋放出許多具有抗凋亡,、免疫調節(jié)、促血管生成等功能的生物活性因子,，可刺激組織器官再生,，并且低水平表達主要組織相容性復合體（MHC）Ⅰ類分子，不表達MHC-Ⅱ類分子,，不易激活T細胞的免疫反應,，具有低免疫原性。這些特點和功能使MSCs成為細胞治療的選擇,，美國臨床信息公示數據庫顯示,，截止今年9月份，共有1583項MSCs的臨床實驗,，研究主要集中于心血管疾病,、骨關節(jié)損傷、自身免疫性疾病等,。

圖2 MSCs研究者分布和MSCs研究熱點

隨著MSCs的研究如火如荼,，不同的分離方法、營養(yǎng)體系隨之而來,，如何評判不同分離方法的MSCs獲得率成為了一個難題,，為了解決這個問題，2006年,，國際細胞治療學會的間充質和組織干細胞委員會提出了定義人類MSCs的標準,。

1、MSCs在標準培養(yǎng)條件下必須具有塑料粘附性

MSCs具有異質性,，不同物種,，不同組織來源大小有所差異，例如貓脂肪來源MSCs臍帶來源MSCs小,，所以無法單一的從外觀判定MSCs,，但是幾乎所有的MSCs都是貼壁生長，具有較強的貼壁能力,，多數MSCs呈纖維細胞樣生長,，呈梭形或不規(guī)則三角形，胞質向外伸出突起,。傳代后細胞呈旋渦狀排列生長,。

圖3 人骨髓間充質干細胞（圖片來源于網絡，僅供學習參考用）

2,、特異性表面抗原（Ag）的表達

通過流式細胞術測量,，95%的MSCs群體必須表達CD105,、CD73和CD90。此外,，這些細胞必須缺乏CD45,、CD34、CD14或CD11b,、CD79a或CD19和HLA II類的表達（5/2%陽性）,。

表1 MSCs特異性表面抗原的表達指標

3、在體外具有分化為成骨細胞,、脂肪細胞和成軟骨細胞的能力

三系分化能力是MSCs特別的鑒定MSCs的方法,，向成骨細胞的分化可以通過用茜素紅染色或von Kossa染色來證明，向脂肪細胞分化最容易通過油紅O染色來證明,，成軟骨細胞分化通過阿利辛藍或免疫組織化學染色來證明,。

圖4 人MSCs成骨分化誘導 abs9453

圖5 人MSCs成脂分化誘導 abs9454

圖6 人MSCs成軟骨分化誘導 abs9455

三系分化小問答：

1、如何解決成骨分化后細胞極易脫壁的現象,？
1）試劑盒內含有包被液,，可在鋪板前使用；
2）分化時細胞匯合度不易過高,，請按照說明書指示,；
3）多孔樣品換液時應盡量分批迅速，避免細胞表面干涸,，加液時手法輕柔,，不能直接沖擊皿底，換液時培養(yǎng)基必須復溫,；
4）誘導過程中更換培養(yǎng)液時不要清洗,，誘導結束后清洗時一定要輕柔，避免劇烈晃動,。

2,、成脂分化時細胞形態(tài)變差？
1）成脂時細胞匯合度一定要達到90%左右,；
2）若用誘導培養(yǎng)基B時發(fā)現細胞狀態(tài)變差,，可以根據具體情況提前更換為誘導培養(yǎng)基C；
3）誘導過程中無需清洗,，誘導結束后清洗時一定要輕柔，避免劇烈晃動,。

3,、成軟骨誘導后軟骨球不懸浮或者軟骨球碎裂？
1）細胞成軟骨誘導離心時,，推薦220g離心5min,，具體情況可以調整,，以細胞聚團為準，離心力過大軟骨球不易懸浮,，過小軟骨球表面易分散,；
2）誘導后24 小時內避免搖動細胞沉淀，以確保形成個團塊,。離心管需使用聚丙烯材質無菌管,；
3）注意開關培養(yǎng)箱門時動作要輕柔，不要震動,。

4,、軟骨球是否可以做冰凍切片？
可以,，做冰凍切片時固定后可以用蔗糖梯度脫水,，若不及時切片染色，需用鋁箔紙包裹,，保存在-80℃,。

MSCs鑒定相關的講解就到這里啦，老師們有細胞培養(yǎng)相關問題,，歡迎公眾號“愛必信生物"后臺留言,。

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[1] Dominici M, Le Blanc K, Mueller I, et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement[J]. Cytotherapy, 2006, 8(4): 315-317.

[2] Caplan A I, Correa D. The MSC: an injury drugstore[J]. Cell stem cell, 2011, 9(1): 11-15.

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