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實驗小白來集合,!染色質(zhì)免疫共沉淀(ChIP)實驗流程與常見問題

閱讀:1024      發(fā)布時間:2023-9-14
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染色質(zhì)免疫共沉淀技術(shù)的原理是在活細胞狀態(tài)下固定蛋白質(zhì)-DNA復合物,,并將其隨機切斷為一定長度范圍內(nèi)的染色質(zhì)小片段,然后通過免疫學方法沉淀此復合體,,特異性地富集目的蛋白結(jié)合的DNA片段,,通過對目的片斷的純化與檢測,,從而獲得蛋白質(zhì)與DNA相互作用的信息,。

 

一、細胞交聯(lián)與裂解


在裝有20ml生長培養(yǎng)基的150mm培養(yǎng)皿中培養(yǎng)貼壁細胞,,長到80%-90%密度,,約107個細胞。如有必要,,可進行刺激或處理,。建議采用1×106個細胞作為一次ChIP的細胞量。

 

1)在20ml培養(yǎng)基中加入終濃度為1%的甲醛,,輕輕渦旋培養(yǎng)皿混勻,,使細胞在甲醛中固定,室溫固定10分鐘(對于轉(zhuǎn)錄因子和轉(zhuǎn)錄輔因子,,可適當延長交聯(lián)時間,,但不超過30分鐘)。加入甲醛后培養(yǎng)基的顏色會發(fā)生改變,;

2)在培養(yǎng)皿中加入濃度為0.125M的甘氨酸,,輕輕渦旋混勻,室溫反應5分鐘,,淬滅未反應的甲醛,,終止交聯(lián)。加入甘氨酸后培養(yǎng)基的顏色會發(fā)生改變,;

3)棄培養(yǎng)基,,20ml預冷的1×PBS洗滌細胞,重復洗滌一次,;

4)在培養(yǎng)皿中加入2ml 預冷的含蛋白酶抑制劑混合物的1×PBS,;使用細胞刮收集細胞,4°C,,800g,,離心5分鐘,;

5)去除上清液(此步細胞可在液氮中快速冷卻,存放于-80°C保存幾個月),,細胞再次重懸于0.5ml含蛋白酶抑制劑混合物的細胞裂解緩沖液中,,冰上孵育15分鐘,每5分鐘渦旋一次,;

6)4°C,,800g,離心5分鐘,。小心去除上清液,,加入0.5ml含蛋白酶抑制劑混合物的細胞核裂解緩沖液,使其重懸,。


二,、超聲處理片段化 DNA

 

超聲處理的效果取決于細胞類型、細胞濃度和儀器,。需要通過預實驗確定超聲的最佳條件,,以便將交聯(lián)DNA剪切為如上圖的約200-1000bp長度。染色質(zhì)片段化對于ChIP實驗成功很關(guān)鍵,。片段化不足會導致樣本丟失,,片段化過度會破壞靶標蛋白表位、降低ChIP效率,。在超聲過程中,,保持樣品一直處于冰上低溫狀態(tài)。不要使探頭接觸超聲管底部或管壁,,如超聲過程產(chǎn)生泡沫,,需暫停超聲并調(diào)整超聲管位置。

 

超聲處理后,,4°C,,12000g離心10分鐘。離心后,,留取5μl染色質(zhì)溶液進行瓊脂糖凝膠分析,,以檢測超聲效率??蓪⒊暻昂统暫蟾魅〉?μl染色質(zhì)溶液對比分析,。


圖1 超聲前超聲后

 

三、靶蛋白和DNA 免疫共沉淀

 

將下述緩沖液放于冰上保存:低鹽洗滌緩沖液高鹽洗滌緩沖液,,LiCl洗滌緩沖液和TE洗滌緩沖液,。配制450μl稀釋緩沖液(含蛋白酶抑制劑混合物),冰上保存,。如有多個樣品可合并配制,。

 

1)取上述50μl離心后的裂解液上清加入到新的離心管中,,作為一次免疫沉淀實驗的DNA混合物樣本。每50μl 裂解液中含有1×106個細胞裂解產(chǎn)物,。ChIP反應包括陽性對照抗體管,、陰性對照IgG管和目的蛋白抗體管。推薦陰性對照IgG和目的抗體使用同一物種來源,。

2)在上述50μl片段化染色質(zhì)樣品的離心管中加入上述配制好的450μl稀釋緩沖液,,充分混勻。每管取5μl樣品于新的離心管中作為實驗的1% “input",,用于實驗的優(yōu)化與數(shù)據(jù)處理,,保存于4°C,直至蛋白DNA復合物洗脫與解交聯(lián)步驟,。

3)取完inpμt的離心管中分別加入1-10μg免疫沉淀抗體,,4°C轉(zhuǎn)子上孵育4h以上或過夜。

4)每個離心管中加入20μl蛋白A/G磁珠(建議將吸頭前端剪去一小部分后再吸取磁珠),,4°C轉(zhuǎn)子上孵育2h,。

5)磁力架吸附,靜置1-2分鐘,,去上清。按如下步驟洗滌蛋白A/G磁珠-抗體-蛋白/DNA復合物:

低鹽洗滌緩沖液,,4°C轉(zhuǎn)子上孵育3-5分鐘,,洗滌一次;

高鹽洗滌緩沖液,,4°C轉(zhuǎn)子上孵育3-5分鐘,,洗滌一次;

LiCl 洗滌緩沖液,,4°C轉(zhuǎn)子上孵育3-5分鐘,,洗滌一次;

 

注:使用前將等體積A液及B液混勻,,請勿提前混勻,,否則會導致出現(xiàn)沉淀析出。TE 緩沖液,,4°C轉(zhuǎn)子上孵育3-5分鐘,,洗滌一次。


圖2 靶蛋白和DNA免疫共沉淀示意圖


四,、洗脫和解交聯(lián)

 

實驗前準備:解凍蛋白酶K,;ChIP洗脫緩沖液恢復至室溫,以確保SDS溶解,;配制洗脫緩沖液,;ChIP洗脫緩沖液100μl+蛋白酶K 1μl(多個樣本可合并配制),。

1)樣品管及Input管加入ChIP洗脫緩沖液(含蛋白酶K);

2)62°C孵育2小時,;

3)在95°C下培養(yǎng)10分鐘,;

4)讓樣品冷卻至室溫;

5)10000g離心10秒收集管蓋及管壁上殘留樣品,,采用磁力架分離磁珠,。將上清液小心轉(zhuǎn)移至一個新的試管中。

 

五,、DNA 純化

采用純化柱進行DNA純化(免疫沉淀和input),。

 

六、鑒定分析

QPCR或者高通量測序的方法檢測IP得到的DNA,。

 

七,、常見問題

 

常見問題

常見原因/解決辦法

陰性對照(IgG IP)樣品的背景高

1、優(yōu)化抗體的濃度,,過量抗體導致非靶點的結(jié)合,;

2、與微珠的非特異結(jié)合:采用預純化步驟,,以排除這些非靶點,,或加入微珠的封閉劑;
3,、染色質(zhì)的不充分斷裂:優(yōu)化斷裂過程,,以獲得長度在200-1000bp的染色質(zhì);

4,、試劑被污染,;

5、增加洗滌次數(shù),。

DNA 回收率低

1,、ChIP 抗體失效或親和力低,使用 ChIP驗證過的抗體,;

2,、抗體使用量不足;

3,、起始樣品不足,,可適當增加起始樣品用量;

4,、過度交聯(lián)或交聯(lián)不足,;
5、磁珠與抗體的親和力低。

無法找到合適的ChIP抗體,,該如何做ChIP實驗,?

1、使用標簽抗體是一種解決抗體無法獲得,、抗體可變性和交聯(lián)染色質(zhì)的表位被遮蔽的方法,。不過標簽有可能干擾轉(zhuǎn)錄因子的功能;

2,、嘗試IP/IHC/IF抗體,,效果需要自己摸索鑒定。

陰性對照抗體如何選擇,?

使用與ChIP抗體相同物種的正常IgG,,因此如果使用小鼠單克隆抗體,建議使用正常小鼠IgG,。

 

貨號

品名

規(guī)格

abs50034

染色質(zhì)免疫共沉淀(ChIP)試劑盒

22T

abs47050830

甘氨酸

1kg

abs961

10×PBS緩沖液

500ml

abs9118

蛋白酶K

100mg

abs9330

核糖核酸酶 A

150ul

 

好消息,!Absin文獻獎勵重磅升級!


 


Absin特色產(chǎn)品線:

WB相關(guān):ECL發(fā)光液,、預染marker,、預制膠;IHC相關(guān):二抗試劑盒,、組化筆,;IP/CoIP試劑盒;激動劑/抑制劑,;血清,、BSA、蛋白酶K,、CTB、TTX,、CEE,;凋亡試劑盒;呼吸爆發(fā)試劑盒,;ELISA試劑盒,;重組蛋白;抗體: 二抗,、標簽抗體,、對照抗體;定制服務(抗體/多肽/蛋白/標記/檢測)...

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