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一、原理
1.葡聚糖凝膠SephadexG-200凝膠柱層析利用大分子不能進入凝膠顆粒內(nèi)部zui先流出柱外,，而小分子物質(zhì)進入凝膠顆粒內(nèi)部，流速慢而zui后流出柱外,，凝膠層析法能將不同分子大小的物質(zhì)分離開,。（G-200能分離800-80000D分子量的蛋白質(zhì)）
2.利用離子交換法，選取DEAE-陰離子纖維素DE52柱材料,，因為PPO是帶有陽離子的蛋白質(zhì),，在層析時會吸附在柱材料上，而雜蛋白會洗下,。后用NaCl梯度洗脫PPO,，（NaCl為強離子交換劑，能將弱吸附在柱材料上的PPO置換下來）,。粗酶液從而得到純化,。
二、材料與試劑
試劑：0.02MTris-HCL緩沖液Ph7.4（內(nèi)含0.001MEDTA）配制時配×10倍濃縮液1000ml;NaCL;聚已二醇,；DEAE-纖維素DE52,；葡聚糖凝膠SephadexG-200;蘭葡萄糖－40、70,、100等,；
實驗器械與儀器設(shè)備：試管與試管架、燒杯,、玻璃攪棒、移液管,、滴管等,；試劑瓶、層析柱,、pH計和pH試紙,、恒流泵、梯度混合儀,、核酸蛋白監(jiān)測儀,、GL-20C高速冷凍離心機、DL-7A大容量低速冷凍離心機
三,、操作步驟
1．葡聚糖凝膠的處理,、裝柱及平衡
（1）柱材處理
稱取一定量的SephadexG-200干粉，加無離子水或蒸餾水浸泡溶脹48h,去掉懸浮的細微顆粒,，為防止凝膠顆粒中的空氣存在,，影響層析效果,，凝膠裝柱前一定要將凝膠液中的氣體除掉，其辦法是將凝膠液放進抽濾瓶中,，進行抽真空處理,，直到凝膠液中沒有氣泡出現(xiàn)為止。
（2）裝柱
將層析柱清洗干凈垂直固定到層析架上,，加1/3體積的無離子水,，打開下出液口，水流暢通,，即刻將小燒杯中裝有適宜濃度的凝膠液（凝膠的濃度過高會產(chǎn)生氣泡,，影響蛋白質(zhì)分離速度，濃度過低易產(chǎn)生凝膠分層,，影響蛋白質(zhì)的分離效果）輕輕倒入層析柱中,，凝膠自然慢慢沉降在層析柱底部，凝膠沉積直到離層析柱上端1.5-2cm處,，停止裝柱,，剪一與柱內(nèi)徑相等的濾紙片覆蓋于凝膠上。層析柱上端進液口連接恒流泵,，下出液口連接蛋白質(zhì)監(jiān)測儀,，待層析柱的平衡。
（3）平衡
在柱層析上樣前必須對層析柱進行平衡,，所謂平衡就是將層析柱中的溶液用層析過程的緩沖液（洗脫液）置換出來,，使層析柱中的緩沖系統(tǒng)與柱層析過程中的系統(tǒng)一致。其方法是：利用層析柱上端的恒流泵將平衡緩沖液泵入到層析柱內(nèi),，打開層析柱下端的出口,，平衡液流速在0.5-1ml/min，當(dāng)下出口流出液的PH值與平衡緩沖液的PH值一致時,，層析柱達到了平衡,。在本實驗中，用0.002MTris-HCL緩沖液PH7.4（內(nèi)含0.0001MEDTA）,，平衡SephadexG-200凝膠,。
2．上樣：將粗酶液上柱。
3．洗脫：用0.02MTris-HCL緩沖液Ph7.4（內(nèi)含0.001MEDTA）洗脫,，收集洗脫液進行酶活性,、蛋白質(zhì)濃度、聚丙烯酰胺凝膠電泳分子量的基本性質(zhì)分析測定,。
4．DEAE－纖維素的處理及裝柱
（1）處理
本實驗采用的是DEAE－纖維素DE52是弱酸型陰離子交換劑,，具體處理方法為：先將DE52陰離子交換劑干粉浸泡于蒸餾水中，去除雜質(zhì)；再在0.5N的HCL溶液中浸泡1－2h,再用無離子水或蒸餾水洗至pH值中性或PH4以上,，并將其在抽濾漏斗中抽干,；將抽干的離子交換劑浸泡在0.5N的NaOH溶液中1－2h，再用無離子水或蒸餾水將其洗至中性,。
（2）裝柱
將層析柱清洗干凈垂直固定到層析架上,，加1/3體積的無離子水，打開下出液口,，水流暢通,，即刻將小燒杯中裝有適宜濃度的柱材，輕輕倒入層析柱中,，凝膠自然慢慢沉降再層析柱底部,，凝膠沉積直到離層析柱上端1.5－2cm處，停止裝柱,。層析柱上端進液口連接恒流泵,，下出口連接蛋白質(zhì)監(jiān)測儀，待層析柱的平衡,。
（3）平衡
在柱層析上樣前必須對層析柱進行平衡,，所謂平衡就是將層析柱中的溶液用層析過程的緩沖液（洗脫液）置換出來，使層析柱中的緩沖系統(tǒng)與柱層析過程中的系統(tǒng)一致,。其方法是：利用層析柱上端的恒流泵將平衡緩沖液泵入到層析柱內(nèi),，打開層析柱下端的出口，平衡液流速在0.5-1ml/min,，當(dāng)下出口流出液的PH值與平衡緩沖液的PH值一致時,，層析柱達到了平衡。在本實驗中,，用0.002MTris-HCL緩沖液PH7.4（內(nèi)含0.0001MEDTA）,，預(yù)先將DE-52柱進行平衡。
5．上樣：
將洗脫酶液上樣,，用0.02MTris-HCL緩沖液pH7.4（內(nèi)含0.001MEDTA）洗脫雜蛋白,。
6．洗脫：
用含NaCL（0.2-0.6M）的0.02MTris-HCL緩沖液pH7.4（內(nèi)含0.001MEDTA）進行梯度洗脫。
7．測定酶活性和蛋白質(zhì)濃度,。
