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蛋白質(zhì)技術(shù)專題:凝膠層析法脫鹽和分離蛋白質(zhì)

2013-11-27  閱讀(1540)

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(一)原理

凡鹽析所獲得的粗制蛋白質(zhì)(鹽析得到的IgG)中均含有硫酸銨等鹽類,,這類將影響以后的純化,所以純化前均應(yīng)除去,,此過程稱為“脫鹽”(desalthing),。脫鹽常用透析法和凝膠過濾法,這兩種方法各有利弊,。前者的優(yōu)點(diǎn)是透析后析品終體積較小,,但所需時間較長,且鹽不易除盡,;凝膠過濾法則能將鹽除盡,,所需時間也短,但其凝膠過濾后樣品體積較大,。所以,,要根據(jù)具體情況選擇使用。前實驗中樣品體積較小,,凝膠達(dá)濾后樣品體積不會太增加,,所以選用凝膠過濾法。

(二)試劑與器材

(1)Sephadex G-25,。

(2)0.0175mol/L,,pH6.7磷酸鹽緩沖液。

(3)奈氏(Nessler)試劑:于500ml錐形瓶內(nèi)加入碘化鉀150g,,碘110g,,汞150g及蒸餾水100ml。用力振蕩7~15min,,至碘的棕色開始轉(zhuǎn)變時,,混合液溫度升高,,將此瓶浸于冷水內(nèi)繼續(xù)振蕩,直到棕色的碘轉(zhuǎn)變?yōu)閹ЬG色的碘化鉀汞液為止,。將上清液傾入2000ml量筒內(nèi),,加蒸餾水至2000ml,混勻備用,。

(4)20%(W/V)磺基水楊酸溶液,。

(5)1.5cm×20cm層析柱。

(6)黑,、白比色磁盤,。

(三)操作

(1)取層析柱1支(1.5cm×20cm),垂直固定在支架上,,關(guān)閉下端出口,。將已經(jīng)溶脹好的Sephadex G-25中的水傾倒出去,加入2倍體積的0.0175mol/L,,pH6.7磷酸鹽緩沖液,,并攪拌成懸浮液,然后灌注入柱,,打開柱的下端出口,,繼續(xù)加入攪勻的Sephadex G-25,使凝膠自然沉降高度到17cm左右,,關(guān)閉出口。待凝膠柱形成后,,在洗脫瓶中加入0.0175mol/L,,pH6.7磷酸鹽緩沖液以3倍柱體積的磷酸鹽緩沖流過凝膠柱,以平衡凝膠,。

(2)凝膠平衡后,,用皮頭滴管除去凝膠柱面的溶液,將鹽析所得全部IgG樣品加到凝膠柱表面,,打開柱下口,,控制流速讓IgG樣品溶液慢慢浸入凝膠內(nèi)。凝膠柱面上加一層的0.0175mol/L,,pH6.7磷酸鹽緩沖液,,并用此緩沖液洗脫,控制流速為0.5ml/min左右,。用試管收集洗脫液,,每管10滴。

(3)在開始收集洗脫液的同時檢查蛋白質(zhì)是否已開始流出,。為此,,由每支收集管中取出1滴溶液置于黑色比色磁盤中,,加入1滴20%磺基水楊酸,若呈現(xiàn)白色絮狀沉淀即證明已有蛋白質(zhì)出現(xiàn),,直到檢查不出白色沉淀時,,停止收集洗脫液。

(4)由經(jīng)檢查含有蛋白質(zhì)的每管中,,取1滴溶液,,放置在白色比色盤孔中,加入1滴奈氏試劑,,若呈現(xiàn)棕黃色沉淀說明它含有硫酸銨,。合并檢查后不含硫酸銨的各管收集液,即為“脫鹽”后的IgG,。

注意:在檢測時,,用皮頭滴管吸取管中溶液后應(yīng)及時洗凈,再吸取下一管,,以免造成相互污染假象,。

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