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蛋白質(zhì)技術(shù)專題:雙向電泳操作步驟

2013-11-27  閱讀(1318)

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水化上樣( 被動(dòng)上樣)

1. 從冰箱中取出 IPG 膠條,,室溫放置 10min。

2. 沿水化盤槽的邊緣從左向右線性加入樣品,,槽兩端各 1cm 左右不加樣,,中間的樣品液一定要連貫,。注意:不要產(chǎn)生氣泡,,否則會(huì)影響膠條中蛋白質(zhì)的分布,。

3. 用鑷子輕輕撕去 IPG 膠條上的保護(hù)層,。注意:堿性端較脆弱,,應(yīng)小心操作,。

4. 將IPG膠條膠面朝下輕輕置于水化盤中樣品溶液上。注意:不要將樣品溶液弄到膠條背面,,因?yàn)檫@些溶液不會(huì)被膠條吸收,; 還使膠條下面的溶液產(chǎn)生氣泡。如產(chǎn) 生了氣泡,,用鑷子輕輕地提起膠條的一端,,上下移動(dòng)膠條,直到氣泡被趕走,。

5. 放置 30~45min 大部分樣品被膠條吸收,,沿著膠條緩慢加入礦物油,每根膠條 約 3ml(17cmIPG),,防止膠條水化過程中液體蒸發(fā),。

6. 置等電聚焦儀于- 20℃水化 11~15h。

*向 等電聚焦

1. 將紙電極置于聚焦盤的正負(fù)極上,,加 ddH2O 5~8μl 潤(rùn)濕,。

2. 取出水化好的膠條,提起一端將礦物油瀝干,,膠面朝下,,將其置于剛好潤(rùn)濕 的濾紙片上雜交以去除表面上的不溶物。

3. 將 IPG 膠條膠面朝下置于聚焦盤中,,膠條的正極(標(biāo)有+)對(duì)應(yīng)于聚焦盤的正 極,,確保膠條與電極緊密接觸。

4. 在每根膠條上覆蓋 2- 3ml 礦物油,。

5. 對(duì)好正,、負(fù)極,蓋上蓋子,。設(shè)置等電聚焦程序,。

6. 聚焦結(jié)束的膠條,立即進(jìn)行平衡,、第二向 SDS-PAGE電泳,。或?qū)⒛z條置于樣 品水化盤中,,- 20℃冰箱保存,,電泳前取出膠條, 室溫放置10 分鐘,使其溶解,。

第二向 SDS-PAGE電泳

1. 配制 12%的丙烯酰胺凝膠,。

2. 待凝膠凝固后,, 倒去分離膠表面的MilliQ水,、 乙醇或水飽和正丁醇,用MilliQ 水沖洗,。

3. 配制膠條平衡緩沖液 I

4. 在桌上先放置干的厚濾紙,,聚焦好的膠條膠面朝上放在干的厚濾紙上。將另 一份厚濾紙用 MilliQ水浸濕,,擠去多余水分,,然后直接置于膠條上,輕輕吸 干膠條上的礦物油及多余樣品,,這樣可以減少凝膠染色時(shí)出現(xiàn)的縱條紋,。

5. 將膠條轉(zhuǎn)移至樣品水化盤中,加入 6ml(17cmIPG)平衡緩沖液 I ,,在水平搖床 上緩慢搖晃 15 分鐘,。

6. 配制膠條平衡緩沖液 II 。

7. *次平衡結(jié)束后,,取出膠條將之豎在濾紙上瀝去多余的液體,,放入平衡緩 沖液 II 中,繼續(xù)在水平搖床上緩慢搖晃 15 分鐘,。

8. 用濾紙吸去 SDS-PAGE膠上方玻璃板間多余的液體,,將二向凝膠放在桌面上, 凝膠的頂部面對(duì)自己,。

9. 將瓊脂糖封膠液加熱溶解,。

10. 在 100ml 量筒中加入 TGS 電泳緩沖液。

11. 第二次平衡結(jié)束后,,取出膠條,,用濾紙吸去多余的平衡液(將膠條豎在濾紙 上,以免損失蛋白或損壞凝膠表面) ,。

12. 用鑷子夾住膠條的一端使膠面*浸末在 1×電泳緩沖液中漂洗數(shù)次,。

13. 將膠條背面朝向玻璃板,輕輕放在長(zhǎng)玻板上,,加入低熔點(diǎn)瓊脂糖封膠液,。

14. 用適當(dāng)厚度的膠片,輕輕地將膠條向下推,,使之與聚丙烯酰胺凝膠膠面*接 觸,。注意:不要在膠條下方產(chǎn)生氣泡, 應(yīng)推動(dòng)凝膠背面的支撐膜, 不要碰到面膠,。

15. 放置 5 分鐘,,使低熔點(diǎn)瓊脂糖封膠液凝固。

16. 打開二向電泳制冷儀,,調(diào)溫度為 15℃,。

17. 將凝膠轉(zhuǎn)移至電泳槽中,加入電泳緩沖液,,接通電源,,起始時(shí)用的低電流(5mA~10mA/gel/17cm) ,待樣品在*走出IPG 膠條,,濃縮成一條線后,,再加大電流 (20-30mA/gel/17cm) 待溴酚藍(lán)指示劑達(dá)到底部邊緣時(shí)即可停止電泳。

18. 電泳結(jié)束后,,輕輕撬開兩層玻璃,,取出凝膠,并切角以作記號(hào)(戴手套,,防 止污染膠面) ,。

19. 進(jìn)行染色。

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