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免疫熒光標記樣品

2012-2-25  閱讀(932)

用于流式細胞儀檢測的常用熒光素有FITC,、TRITC,、Cy3、Cy5,,PE和PI,,在以上各種熒光染料中,PE熒光zui強,,適用于弱表達抗原,;FITC*,適用于強表達抗原,,適用范圍廣,。

 
    1.直接免疫熒光標記法  取一定量的細胞懸液(濃度約l×l06個/m1),直接加入熒光素標記抗體進行免疫反應(yīng)(如做雙重標記或多重標記染色,,可把幾種標記有不同熒光素的抗體同時加入),。4℃孵育15~30分鐘后,用l/15mol/LPBS(pH 7.2~7.4)洗l~2次,,加入緩沖液重懸,,上機檢測。
    本方法操作簡便,,結(jié)果準確,,易于分析,適用于同一細胞群多參數(shù)同時測定,。雖然直接熒光抗體標記試劑成本較高,。但減少了間接標記法中較強的非特異熒光干擾,因此更適用于臨床標本的檢測,。
 
    2.間接免疫熒光標記法  取一定量的細胞懸液(濃度約5×106個/m1),,加入特異性*抗體,4℃孵育15~30分鐘,,待反應(yīng)*后用磷酸緩沖液洗去未結(jié)合抗體,,吸盡殘留液體,再加入熒光標記第二抗體,,4~C孵育30分鐘,,生成抗原—抗體—抗抗體復(fù)合物,,洗滌后即可上機檢測。注意:在整個熒光標記過程中均需參考免疫熒光細胞化學間接法染色程序,,尤其是加入一抗前需使用正常非免疫血清封閉,,以減少非特異性反應(yīng)。如果對于未經(jīng)固定的細胞需使用0.3%TritonX-100為細胞膜打孔,,以保證抗體能夠進入細胞內(nèi),。
    此法費用較低,二抗應(yīng)用廣泛,,多用于科研樣品檢測,。但是,由于非特異性熒光背景較強,,
影響實驗結(jié)果,,在樣品制備時應(yīng)加人陰性或陽性對照。另外,,由于間接法步驟較多,,尤其是經(jīng)過多次洗滌,均可使細胞數(shù)量驟減,,因此,,在加入*抗體前細胞懸液的細胞濃度約5×10‘個/ml,上機檢測前不少于1×106個/ml即可,,此法不適用測定細胞數(shù)較少的樣品,。
 
    3.熒光標記中的注意事項
    (1)為減少非特異性干擾,熒光標記物用前應(yīng)用0.22um濾膜過濾或高速離心5分鐘,,以除去顆?;虺猎?/div>
    (2)細胞樣品的制備,、染色及保存均應(yīng)該盡量保持新鮮,,防止分解代謝引起的表面抗原消失及細胞死亡,可以通過加入營養(yǎng)培養(yǎng)基或低濃度血清以及4~0或冰浴中操作來解決,。
    (3)細胞或低比例細胞亞群分析時,為保證準確,,應(yīng)排除死細胞,。
    (4)熒光標記抗體濃度應(yīng)該合適,如果濃度過高,,會使非特異性結(jié)合增加,。在使用一抗之前,將樣品與過量的牛血清白蛋白(BSA)或來源于同一種屬的正常血清一起孵育,,以阻斷一抗和細胞表面或胞內(nèi)結(jié)構(gòu)非特異性作用,。在使用一抗之后,,將樣品、與二抗相同種屬的5%~10%正常血清和二抗一起孵育,,以減少二抗與一抗,、細胞表面或胞內(nèi)結(jié)構(gòu)之間的非特異相互作用。如果使用含有與一抗或二抗種屬相同的血清液體稀釋抗體,,便可以省略此步驟,。


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