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390次禽腺病毒I群(FADV-I)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR法)
【產(chǎn)品名稱】
商品名稱:禽腺病毒I群 (FADV-I)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR法)
【包裝規(guī)格】50T/盒
【預期用途】
禽腺病毒感染主要感染家禽,,一旦感染容易通過家禽消化道及呼吸道進行擴散,,引起家禽暴發(fā)流行性疾病,,引起病雞出現(xiàn)精神不振,、排稀糞便,,心包積液滲出,、肝脹腫脹出血,,造成家禽死亡,禽腺病毒I群為常見型,,包括A\B\C\D\E型,。本試劑盒適用于檢測呼吸道分泌物棉拭子(感染I群禽腺病毒的雞、火雞,、鵝,、鵪鶉)、卵巢,、輸卵管,、卵泡、子宮和輸卵管粘膜組織,、泄殖腔拭子(感染I群禽腺病毒的雞,、鴨)等樣本中的禽腺病毒感染的輔助診斷,其檢測結果僅供參考,。
【檢驗原理】
本試劑盒采用TaqMan探針法實時熒光PCR技術,,選用3套引物探針組合,包含禽腺病毒I群的A型,C型,E型的特異性基因,,分別設計1對特異性引物,,并結合1條特異性探針,用熒光PCR技術對禽腺病毒的核酸進行體外擴增檢測,,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷,。
【試劑組成】
名 稱 | 規(guī) 格 |
FADV-I酶液 | 25μL×1管 |
FADV-I反應液 | 975uL×1管 |
FADV-I陽性質(zhì)控品 | 50μL ×1管 |
陰性質(zhì)控品 | 50μL ×1管 |
說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。
【儲存條件及有效期】
-20℃±5℃,,避光保存,、運輸、反復凍融少于7次,,有效期12個月,。
【適用儀器】
ABI 、安捷倫MX3000P/3005P,、LightCycler,、Bio-Rad、eppendorf等系列熒光定量PCR檢測儀,。
【標本采集】
病死禽取卵巢,、輸卵管,、卵泡、子宮和輸卵管粘膜組織,;活雞取呼吸道拭子或泄殖腔拭子,,放于1mL 50%甘油生理鹽水中。
【保存和運輸】
上述標本短期內(nèi)可保存于-20℃,,長期保存可置-70℃,,但不能超過6個月,標本運送應采用2~8℃冰袋運輸,,嚴禁反復凍融,。
【使用方法】
1. 樣品處理(樣本處理區(qū))
1.1 樣本前處理
組織樣品:每份組織分別從3個不同的位置稱取樣品約1g,手術剪剪碎混勻后取0.5g于研磨器中研磨,,加入1.5mL生理鹽水后繼續(xù)研磨,,待勻漿后轉至1.5mL滅菌離心管中,8000rpm離心2min,,取上清液100μL于1.5mL滅菌離心管中,;泄殖腔拭子直接取100μL進行DNA提取。
1.2 DNA提取
為了使實驗結果穩(wěn)定,、有效,、可靠,建議使用商品化的RNA 提取試劑盒進行提取,,嚴格按照對應試劑盒說明書進行操作,。
2. 試劑配制(試劑準備區(qū))
根據(jù)待檢測樣本總數(shù),設所需要的PCR反應管管數(shù)為N(N=樣本數(shù)+1管陰性對照+1管陽性對照,;樣品每滿7份,,多配制1份),每測試反應體系配制如下表:
試劑 | FADV-I反應液 | 酶液 |
用量(樣本數(shù)為N) | 19.5μL | 0.5μL |
3. 加樣(樣本處理區(qū))
將步驟1提取的DNA,、陽性質(zhì)控品,、陰性質(zhì)控品各取5μL,分別加入相應的反應管中,,蓋好管蓋,,混勻,短暫離心,。
4. PCR擴增(核酸擴增區(qū))
4.1 將待檢測反應管置于熒光定量PCR儀反應槽內(nèi),;
4.2 設置好通道、樣品信息,,反應體系設置為25μL,;
熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM檢測禽腺病毒A型,淬滅通道(Quencher Dye)NONE,,請勿選擇ROX參比熒光,。
4.3 推薦循環(huán)參數(shù)設置:
步驟 | 循環(huán)數(shù) | 溫度 | 時間 | 收集熒光信號 |
1 | 1 cycle | 95℃ | 3min | 否 |
2 | 40 cycles | 95℃ | 15sec | 否 |
55℃ | 30sec | 是 |
5. 結果分析判定
5.1 結果分析條件設定
設置Baseline和Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,,當曲線出現(xiàn)整體傾斜時,根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié)Baseline的start值(一般可在3~15范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),、stop值(一般可在5~20范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),,以及Threshold的Value值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果,。
5.2 結果判斷
陽性:檢測通道Ct值≤35.0,,且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線,。
可疑:檢測通道35.0<Ct值<38.0,,且出現(xiàn)典型擴增曲線的樣本建議重復試驗,重復試驗結果出現(xiàn)Ct值<38.0且有典型擴增曲線者為陽性,,否則為陰性,。
陰性:樣本檢測結果無Ct值且無明顯的擴增曲線。
6. 檢測方法的局限性
? 樣本檢測結果與樣本收集,、處理,、運送以及保存質(zhì)量有關;
? 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,,會出現(xiàn)假陽性結果,;
? 陽性對照、擴增產(chǎn)物泄漏,,會導致假陽性結果,;
? 病原體在流行過程中基因突變、重組,,會導致假陰性結果,;
? 不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果,;
? 試劑運輸,,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準確的結果,;
? 本檢測結果僅供參考,,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。
7. 質(zhì)控標準
陰性質(zhì)控品:無明顯擴增曲線且無Ct值顯示,;
陽性質(zhì)控品:擴增曲線有明顯指數(shù)生長期,,且Ct值≤30;
以上條件應同時滿足,,否則實驗視為無效,。
8. 性能指標
(1)敏感性:內(nèi)控樣本敏感性為100%,綜合評價敏感性98%以上,。最低檢測限不低于1000copies/ml,。
(2)特異性:100%,。
(3)穩(wěn)定性:批內(nèi)及批間差異≤3%。
【注意事項】
? 所有操作嚴格按照說明書進行,;
? 試劑盒內(nèi)各種組分使用前應自然融化,,完全混勻并短暫離心;
? 反應液應避光保存,;
? 反應中盡量避免氣泡存在,,管蓋需蓋緊;
? 使用一次性吸頭,、一次性手套和各區(qū)專用工作服,;
? 樣本處理、試劑配制,、加樣需在不同區(qū)進行,,以免交叉污染;
? 實驗完畢后用10%次氯酸或75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器,;
? 試劑盒里所有物品應視為污染物對待,,并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通則》進行處理。
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