原理:

熒光探針法通過使用能夠穿透細胞膜的熒光探針來實現(xiàn)ROS檢測,。以DCFH-DA為例,，該物質(zhì)本身呈非極性，可自由穿過細胞膜進入細胞內(nèi)部,。進入細胞后,，細胞內(nèi)的酯酶會將DCFH-DA水解，脫去乙?；蒁CFH,。由于DCFH具有極性，無法自由跨膜,，因而只能留在細胞內(nèi),。當細胞內(nèi)存在ROS時，DCFH會被ROS氧化,，生成具有強熒光特性的DCF,。DCF的熒光強度與細胞內(nèi)ROS的水平呈正相關(guān)，通過檢測DCF的熒光強度,，可以間接反映細胞內(nèi)ROS的含量,。

操作流程：

1. 樣本準備：對于細胞樣本，需在適宜的培養(yǎng)條件下將細胞培養(yǎng)至對數(shù)生長期,；對于組織樣本,，則需先將組織剪碎，進行勻漿處理,，隨后通過離心去除雜質(zhì),，取上清液備用。

2. 探針負載：將 DCFH-DA 探針用適宜的緩沖液稀釋至適當濃度,，加入至細胞懸液或組織樣本中,，置于 37℃恒溫培養(yǎng)箱中孵育 20-30 分鐘，以確保探針充分進入細胞并被水解,。

3. 清洗樣本：使用緩沖液多次洗滌細胞或樣本,，以去除未進入細胞的 DCFH-DA 探針,，防止其對后續(xù)檢測造成干擾。

4. 檢測熒光：將處理完畢的樣本置于熒光顯微鏡下,，觀察細胞內(nèi)熒光分布情況,，或利用流式細胞儀測定樣本的熒光強度。若采用熒光顯微鏡,，可通過拍照記錄不同視野下細胞的熒光圖像,；若使用流式細胞儀，則需先對儀器進行校準,，設(shè)定適宜的檢測參數(shù),，如激發(fā)光波長、發(fā)射光波長等,，隨后將樣本上機檢測,。

優(yōu)缺點：

優(yōu)點：

1. 靈敏度高，能夠精準檢測細胞內(nèi)低水平的 ROS 變化,。

2. 特異性顯著,，通過選擇不同的熒光探針，可精確檢測特定種類的 ROS,。

3. 具備細胞水平定位檢測功能,，直觀展現(xiàn) ROS 在細胞內(nèi)的分布狀況。

4. 廣泛適用于多種樣本類型,，涵蓋細胞,、組織、微生物等,。

缺點：

1. 熒光探針價格相對昂貴,，顯著增加實驗成本。

2. 熒光信號易受細胞內(nèi)其他物質(zhì)干擾,，例如細胞內(nèi)的還原劑可能還原 DCF,，導(dǎo)致熒光強度下降，影響檢測結(jié)果準確性,。

3. 探針穩(wěn)定性不足,，需避光保存且現(xiàn)用現(xiàn)配，對實驗操作要求較高,。