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微生物細菌學檢查的分離培養(yǎng)與接種實驗方法,!

來源:北京百歐博偉生物技術有限公司   2025年01月16日 14:18  

一,、細菌的分離培養(yǎng)

 

1,、培養(yǎng)基制作的原則和一般步驟

 

1)培養(yǎng)基制作的原則  培養(yǎng)基是人工方法將多種物質(zhì)按照各類微生物生長的需要而合成的一種混合營養(yǎng)料,,一般用以分離和培養(yǎng)菌類,。常用的培養(yǎng)基有基礎培養(yǎng)基,、增菌培養(yǎng)基,、選擇培養(yǎng)基,、鑒別培養(yǎng)基等。在制作培養(yǎng)基時應掌握如下原則和要求:

 

①培養(yǎng)基必須含有細菌生長所需要的營養(yǎng)物質(zhì),。

 

②必須滅菌,不得含有任何活細菌,。

 

③培養(yǎng)基的材料和盛培養(yǎng)基的容器上,沒有抑制細菌生長的物質(zhì)。

 

④所制備培養(yǎng)基應該是透明的,,以便觀察細菌生長性狀和其它代謝活動所產(chǎn)生的變化,。

 

⑤培養(yǎng)基的酸堿度應該符合細菌的生長要求,多數(shù)細菌生長適宜范圍是弱堿(pH7.1~7.6),。

 

2)培養(yǎng)基制備的一般過程  不同的培養(yǎng)基其制備方法不同,,一般要經(jīng)如下步驟:

 

①根據(jù)不同的菌類和用途,選擇適宜的培養(yǎng)基,。

 

②精確稱量各種成分,。

 

③將各種成分按規(guī)定加熱溶解,調(diào)整pH到適宜的范圍內(nèi),。再加熱煮沸10~15分鐘(注意補加液體的損耗)

 

④過濾(用濾袋或紗布棉花),,分裝、滅菌(不同的培養(yǎng)基的滅菌溫度和時間不同,,通常為15磅壓力下15~30分鐘)

 

⑤培養(yǎng)基中的某些成分,,象血清,、腹水、糖類,、尿素,、氨基酸、酶等,,在高溫下易分解,,變性,故應用濾菌器過濾,,再按規(guī)定的溫度和量加入培養(yǎng)基中,。

 

⑥無菌檢驗,取作好的培養(yǎng)基數(shù)管,,置37℃恒溫箱內(nèi)24小時,,若無細菌和霉菌生長即可使用。

 

2,、細菌的分離培養(yǎng)

 

在細菌學診斷中,,細菌的分離培養(yǎng)是的一環(huán),分離培養(yǎng)的目的是在病料中由多種細菌里挑選出可疑菌,。在分離培養(yǎng)之前,,首先應該注意下列事項:

 

1)選擇適合于所含分離細菌生長的培養(yǎng)基。

 

2)培養(yǎng)溫度一般在37℃,,但應考慮特殊細菌對溫度的要求,。

 

3)考慮所分離的細菌是需氧性或厭氧性,進一步?jīng)Q定培養(yǎng)條件,。

 

4)初步分離時發(fā)現(xiàn)有多種細菌,,應進一步選擇可疑菌落進行純培養(yǎng)

 

二、細菌的接種

 

1,、平板劃線法  此法為常用的細菌分離培養(yǎng)法,。平板劃線培養(yǎng)的方法甚多,可按各人的習慣選擇應用,,其目的都是將被檢材料作適當?shù)南♂?,以求獲得獨立單在的菌落,防止發(fā)育成菌苔,,以致不易鑒別其菌落性狀,。劃線培養(yǎng)時須注意以下幾點:

 

1)左手持皿,用左手拇指,,食指及中指將皿蓋揭開成20度左右的角度(角度愈小愈好,,以免空氣中的細菌進入皿中將培養(yǎng)基污染)。

 

2)右手持接種環(huán),將材料少許涂布于培養(yǎng)基邊緣,,然后將接種環(huán)上多余的材料在火焰中燒毀,,待接種環(huán)冷卻后,再與涂材料之處輕輕接觸,,開始劃線,。

 

3)劃線時先將接種環(huán)稍稍彎曲,這易和平皿內(nèi)瓊脂平行,,不致劃破培養(yǎng)基,。

 

4)劃線中不宜過多地重復舊線,以免形成菌苔,。

 

5)平皿蓋向下,,在培養(yǎng)皿上標注樣品名稱,、編號,、接種日期后,置溫箱中培養(yǎng),。

 

2,、斜面接種法

 

3、液體培養(yǎng)基接種法

 

三,、細菌培養(yǎng)性狀觀察

 

1,、細菌在液體培養(yǎng)基中生長性狀觀察

 

1)渾濁度  觀察是否透明,輕度渾濁,,中度渾濁或極度渾濁,,還有均勻渾濁,顆粒狀渾濁,,絮狀渾濁,。

 

2)沉淀  試管底有無沉淀,沉淀物呈顆粒狀,,粘稠狀或絮狀,。輕搖時云霧狀,絮狀或發(fā)辮狀開起,。

 

3)表面  有無菌膜及附著于管壁的菌環(huán),。

 

4)色素及氣味

 

2、細菌在固體培養(yǎng)基上菌落生長性狀觀察

 

1)大小  各種細菌菌落大小差異很大,,菌落直徑在1毫米以下為露滴狀菌落,;1~2毫米為小菌落;2~4毫米為中等大菌落,;4~6毫米或更大為大菌落,。

 

2)形狀  有圓形、規(guī)則形,、根足形,、菌絲狀等,。

 

3)邊緣  有整齊、鋸齒狀,、纖毛狀,、卷發(fā)狀等。

 

4)表面  有光滑,、濕滑,、粗糙、顆粒狀,、皺絲狀,、同心狀、放射狀等,。

 

5)降起度  有角平,、隆起、臍狀,、扭扣狀,。

 

6)顏色  有無色、白色,、灰白色,、金黃色、檸檬色,、綠色,、紅色等。

 

7)透明度 有透明,、半透明,、不透明等。

 

四,、顯微鏡檢查——細菌抹片制備,、染色及鏡檢

 

細菌細胞微小,無色而半透明,,原樣直接在普通光學顯微鏡下觀察,,只能大致見到其外貌,,制成抹片和染色之后,,則能較清楚地顯示其形態(tài)和特殊構造,也可以根據(jù)不同的染色反應,,作為鑒別細菌的一種依據(jù),。

 

常應用各種染料對細菌進行染色,由于毛細管、滲透,、吸附和吸收等物理作用,,以及離子交換,酸堿等化學作用,,染料就能使細菌著色,,且因細菌細胞的結(jié)構和化學成分不同,而含有不同的染色反應,。

 

1,、細菌抹片的制備

 

進行細菌染色之前,須先作好細菌抹片,,其方法如下:

 

1)玻片準備  載玻片應清晰透明,、潔凈而無油漬,滴上水后,,能均勻展開,,附著性好。如有油漬,,可按下列方法處理:

 

①滴上95%酒精2~3滴,,用潔凈紗布揩擦,然后在酒精燈火焰上輕輕拖過幾次,。

 

②若上法仍未能去除油漬,可再滴上1~2滴冰醋酸,,用紗布擦凈,,再在酒精燈火焰上輕輕通過。

 

2)抹片  所用材料情況不同,,抹片方法亦有差異,。

 

液體材料(如液體培養(yǎng)物、血液,、滲出液,、乳汁等)可直接用滅菌接種環(huán)取一環(huán)材料,于玻片的均勻地涂布成適當大小的薄層,。

 

不是液體材料(如菌落,、膿、糞便等)則應先用滅菌接種環(huán)取少量生理鹽水或蒸餾水,,置于玻片,,然后再用滅菌接種環(huán)取少量材料,在液滴中混合,,均勻涂布成適當大小的薄層,。

 

組織臟器材料,先用鑷子夾持局部,然后以滅菌或潔凈剪刀取一小塊,,夾出后將其新鮮切面在玻片上壓積或涂抹成一薄片,。

 

如有多個樣品同時需要制成抹片,只要染色方法相同,,亦可以在同一張玻片上有秩序地排好,,作多點涂抹,或者先用蠟筆在玻片上劃分成若干小方格,,每方格涂抹一種樣品,,需要保留標本片,應貼標簽,,注明菌名,、材料、染色方法和制片日期等,。

 

3)干燥  上述涂片,,應讓其自然干燥。

 

4)固定  有兩類固定方法,。

 

①火焰固定  將干燥好的抹片,,使涂抹面向上,以其背面在酒精燈火焰上來回通過數(shù)次,,略作加熱(但不能太熱,,以不燙手背為度)進行固定。

 

②化學固定  血液,、組織臟器等抹片要作姬姆薩(Giemsa)染色,,不用火焰固定,而應用甲醇固定,,可將已干燥的抹片浸入甲醇中2~3 分鐘,,取出晾干;或者在抹片上滴加數(shù)滴甲醇使其作用2~3分鐘后,,自然揮發(fā)干燥,。抹片如作瑞特氏染色(Wright’s stain),則必先須作特別固定,,染料中含有甲醇,,可以達到固定的目的。

 

將抹片固定的目的有如下幾種:

 

①除去抹片的水分,,涂抹材料能很好地貼附玻片,,以免水洗時易被沖掉

 

②使抹片易于著色或更好地著色,因為死的蛋白質(zhì)比活的蛋白質(zhì)著色力較強,。

 

③可能殺死抹片中的微生物,。

 

必須注意:在抹片固定過程中,,實際上并不能保證殺死全部細菌,也不能避免在染色水洗時不將部分抹片沖脫,。因此,,在制備烈性病原菌,特別是帶芽孢的病原菌的染色抹片時,,應嚴格慎重處理染色用過殘液和抹片本身,,以免引起病原的散播。

 

固定好的抹片,,即可進行各種方法的染色,。

 

2、幾種常用染色方法

 

常用的細菌染色方法,,主要有兩種類型:

 

1)簡單染色法  只應用一種染料進行染色的方法,,如美藍染色法。

 

2)復染色法   應用兩種或兩種以上的染料或再加媒染劑進行染色的方法,。染色時,,有些是將染料分別先后使用,有些則同時混合使用,。染色后不同的細菌和物體,,或者細菌構造的不同部分可以呈現(xiàn)不同的顏色,有鑒別細菌的作用,,又可稱為鑒別染色,,如革蘭氏染色法、抗酸性染色法,、瑞特氏染色法和姬姆薩染色法,。

 

①美藍染色法  在已干燥、固定好的抹片上,,滴加適量的(足夠覆蓋涂抹點即可)美藍染色液,經(jīng)1~3分鐘,,水洗,,干燥(可用吸水紙吸干,或自然干燥,,但不能烤干),,鏡檢。

 

②革蘭氏染色法

 

A.在已干燥,、固定好的抹片上,,滴加草酸銨結(jié)晶紫染色液,經(jīng)1~2 分鐘,,水洗,。

 

B.加革蘭氏碘溶液于抹片上媒染,,作用1~2 分鐘,水洗,。

 

C.加95%酒精于抹片上脫色,,約0.5~1 分鐘,水洗,。

 

D.加稀釋石炭酸復紅(或沙黃水溶液)復染10~30秒,,水洗。

 

E.吸干或自然干燥,,鏡檢,。革蘭氏陽性菌呈藍紫色,革蘭氏陰性菌呈紅色,。

 

③ 抗酸染色法

 

A.萋一尼(Ziehl-Neelsen)氏抗酸染色法  首先在已干燥,、固定好的抹片上,滴加較多量的石炭酸復紅染色液,,在玻片下以酒精燈火焰微微加熱至發(fā)生蒸氣為度(不要煮沸),,維持微微發(fā)生蒸氣,經(jīng)3~5分鐘,,水洗,。然后用3%鹽酸酒精脫色,至標本紅色脫出為止,,充分水洗,。再用堿性美蘭染色液復染約1分鐘,水洗,。最后吸干,,鏡檢??顾嵝约毦始t色,,非抗酸細菌呈藍色。

 

B.又法之一:將固定后的抹片滴加金(Kinyoun)氏石炭酸復紅液,,歷3 分鐘,。此液配法為:

 

堿性復紅              4克        95%乙醇        20毫升

 

石炭酸(化學純)     9毫升        蒸餾水        100毫升

 

溶堿性復紅于酒精,再緩緩加水并搖振,,再加入石炭酸混合,。

 

連續(xù)水洗1.5分鐘后滴加加鮑脫(Gabbott)氏復染液歷1分鐘。此液配法為:

 

美藍             4克           無水乙醇          20毫升

 

濃硫酸         20毫升            蒸餾水           50毫升

 

先將美藍溶于乙醇,,再加蒸餾水,,再加硫酸。

 

連續(xù)水洗1 分鐘,,吸干,,鏡檢,。抗酸菌呈紅色,,其他菌呈藍色,。

 

C.又法之二:滴加石炭酸復紅液于抹片(已干燥固定過的)上染1 分鐘;水洗,;再用1%美藍酒精溶液復染20秒,;水洗,干燥,,鏡檢,。抗酸菌紅色,。

 

鏡檢前對光檢查染色片,,標本片務必全呈藍色。如標本片呈現(xiàn)紅色或棕色,,表示復染不足,,應再作復染5~10 秒,再觀察,。如仍未全呈藍色時,,仍可反復復染,至符合要求為止,。

 

④ 瑞氏染色法

 

方法一:抹片自然干燥后,,滴加瑞特氏染色液于其上,為了避免很快變干,,染色液可稍多加些,,或者看情況補充滴加,經(jīng)1~3分鐘,,再加約與染液等量的中性蒸餾水或緩沖液,,輕輕晃動玻片,使與染液混勻,,經(jīng)5分鐘左右,,直接用水沖洗(不可先將染液傾去),吸干或烘干,,鏡檢。細菌染成藍色,,組織,、細胞等物呈其他顏色。

 

方法二:抹片自然干燥后,,按涂抹點大小,,蓋上一塊略大的清潔濾紙片,,在其上輕輕滴加染色液,至略浸過濾紙,,并看情況補滴,,維持不使變干;染色3~5分鐘鐘,,直接以水沖洗,,吸干或烘干,鏡檢,。此法的染色液經(jīng)濾紙濾過,,可大大避免沉渣粘附抹片上而影響鏡檢觀察。

 

⑤ 姬姆薩氏染色法

 

A.于5毫升新煮過的中性蒸餾水中滴加5~10滴姬姆薩染色液原液,,即稀釋成 常用的姬姆薩染色液,。

 

B.抹片經(jīng)甲醇固定并干燥后,在其上滴加足量染色液或?qū)⒛ㄆ胧⒂腥旧旱娜旧字?,染?0分鐘,,或者染色數(shù)小時至24小時,取出水洗,,吸干或烘干,,鏡檢。細菌呈藍青色,,組織,、細胞等呈其他顏色,視野常呈紅色,。

 

3,、細菌基本形態(tài)及構造的觀察

 

1)細菌的形態(tài)

 

①球菌:

 

雙球菌:注意其成雙的排列,兩個菌體接觸面的形狀以及菌體的形態(tài),。

 

鏈球菌:注意其鏈狀排列,,鏈的長短,個體的形態(tài),。

 

四聯(lián)球菌:注意其四個聯(lián)結(jié)成方形排列的形態(tài),。

 

八疊球菌:注意其八個堆疊一起,呈立體方形的形態(tài),。

 

葡萄球菌:注意其無一定次序,,無一定數(shù)目,不規(guī)則地堆在一起的形態(tài),。

 

②桿菌:

 

單桿菌:注意其單個散在的狀態(tài),,菌體外形、大小,、菌端的形狀,。

 

雙桿菌:注意其成雙的排列以及菌體外形,、大小、菌端的形狀,。

 

鏈桿菌:注意其成鏈狀排列,,鏈的長短,菌體外形,、大小,、菌端的形狀。

 

③螺旋狀菌:

 

弧菌:注意其彎曲成弧形以及菌體大小,,菌端的形狀,。

 

螺菌:注意其具有兩個彎曲以上的螺旋狀及菌體的長度、大小,,菌端的形狀,。

 

2)細菌的一些構造

 

①莢膜:注意莢膜的位置、形狀,、大小,、染色及相互間的聯(lián)結(jié)。

 

②鞭毛:注意鞭毛的形狀,、長度,、大小、數(shù)目及其在菌體上的排列(單毛,、叢毛,、周毛)。

 

③芽孢:注意芽孢的形狀,,與菌體相比的大小以及在菌體中的位置(偏端,、末端)。

 

④異染顆粒:注意其與菌體不同的染色反應,、形狀,、大小、多少,、位置等,。

 

五、動物試驗

 

為了作細菌或其它微生物的分離鑒定,,致病力測定等,,常用實驗動物進行接種,常用的實驗動物接種方法有下列數(shù)種,。

 

1,、皮下接種

 

1)家兔皮下接種  由助手把兔伏臥或仰臥保定,于其背側(cè)或腹側(cè)皮下結(jié)締組織疏松部分剪毛消毒,術者右手持注射器,,以左手拇指、指食和中指捏起皮膚使成一個三角形皺褶,,于其底部進針,,感到針頭可隨意撥動即表示插入皮下。當壓入注射物時感到流利暢通也表示在皮下,。拔出注射針頭時用消毒棉球壓住針孔并稍加按摩,。

 

2)豚鼠皮下接種  保定和術式同家兔。

 

3)小白鼠皮下注射  作小白鼠皮下注射接種無須助手幫助保定,。術者在做好接種準備后,,以右手捏取鼠尾,此時鼠頭會向前掙扎而可以緊牽其尾,,然后用左手的拇指和食指捏住其兩耳及其頭頸部皮膚使其翻轉(zhuǎn),,背部皮膚固定于左手中指、無名指及拇指基部之間,,以小指壓住其尾根,,小白鼠即仰臥保定于左手上。右手操作局部消毒,,把持注射器,,以針頭稍微挑起皮膚插入皮下,注入時見有水泡微微鼓起即表示注入皮下,。拔出針頭后,,同家兔皮下注射時一樣處理。

 

2,、皮內(nèi)接種  作家兔,、豚鼠及小白鼠的皮內(nèi)接種時,均需助手保定動物,,其保定方法與皮下接種相同,。接種時術者以左手拇指及食指夾起皮膚,右手持注射器,,針頭要很細,,針頭插入拇指與食指之間的皮膚內(nèi),針頭插入不宜過深,,同時針頭插入角度要小,,即與夾起的皮膚平行,注射時感到有阻力且注射完畢后皮膚上有小硬皰即為注入皮內(nèi)的表現(xiàn),。皮內(nèi)接種要慢,,否則容易使皮膚脹裂或自針孔流出注射物而散播傳染。

 

3、腹腔內(nèi)接種  在家兔,、豚鼠及小白鼠的腹腔接種,,宜采取仰臥保定。接種時其后軀應稍抬高使其內(nèi)臟傾向前腔,,接種部位在腹后側(cè)面,,針頭先插入皮下,后進入腹腔,,注射后皮膚應無皰隆起,。其余術式同于皮下接種法。

 

4,、靜脈注射

 

1)家兔的靜脈注射  將家兔納入保定器內(nèi)或由助手保定兔體露出其頭,。選一側(cè)耳邊緣靜脈,助手以拇指及食指緊壓耳根部,,使靜脈努張,,術者剪去靜脈管上皮膚的毛,消毒局部,,若需對同一動物作多次接種時,,應自接近耳尖初處開始刺入接種,以后逐次接近耳根,。接種時術者左手執(zhí)兔耳,,右手持針(針頭不宜太細),以與靜脈平行方向刺入靜脈,,同時助手放松其緊壓手指,,以便血液流通。注射時無阻力且有血向前流即表示注入靜脈,。緩緩注射,,注射完針頭拔出后,用消毒棉球緊壓針孔片刻,,以免流血或注射物溢出,。

 

2)豚鼠靜脈內(nèi)接種  豚鼠靜脈內(nèi)接種比較困難,因為豚鼠沒有裸露明顯的靜脈可尋,,若必須作注射時,,使豚鼠伏臥保定,腹面向下,,將其后肢剃毛,,用70%酒精消毒皮膚,施以全身麻醉,,用銳利刀片向后肢內(nèi)上側(cè)向外下方切一長約一厘米的切口,,使露出皮下靜脈,用最小號針頭(26號),刺入靜脈慢慢注入接種物,。接種完畢,,皮膚應縫合一兩針。

 

3)小白鼠靜脈接種  作小白鼠靜脈內(nèi)接種時,,選尾側(cè)靜脈,,體重在15~20克為宜。因其尾部皮膚比較柔軟,、菲薄,靜脈管清晰可見,,若體重在20克以上時,,尾部皮膚較厚、較硬,,對缺乏經(jīng)驗的人更難于注射好,。接種時用一玻璃杯扣住小白鼠,露出尾部,,用最小號針頭刺入尾側(cè)靜脈,,緩緩注入接種物,注射時無阻力,,皮膚不變白,、不隆起,表示注入到靜脈內(nèi),。

 

5,、腦內(nèi)接種法  作病毒學實驗研究時,有時用腦內(nèi)接種法,,通常多用小白鼠,,特別是乳鼠(1~3日齡),接種時通常使小白鼠以作輕度麻醉,,用碘酒消毒其顱部毛皮再以酒精棉球拭去碘液,,用1毫升結(jié)核菌素注射器,以最小號針頭吸取接種,,于兩耳根連接線中點略偏左(或右)處,,以皮膚及顱骨稍向下刺入少許即可,注射完畢拔出針頭,,以棉球壓住針孔片刻,。接種乳鼠時一般不麻醉,不用碘酒,。       

 

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