步驟一,根據(jù)實驗?zāi)康?,選擇目標(biāo)Marker,。
通過閱讀相關(guān)文獻,了解您實驗需要選擇哪些Marker,,以及這些Marker之間的邏輯關(guān)系(圈門的父子關(guān)系,,比如T細胞CD3是“父”,,而CD4或者CD8就是“子”)。
這里列舉了一些常見的細胞標(biāo)志Marker:
B Cells | CD19 |
T Cells | CD3, CD4, CD8 |
Treg Cells | CD4, CD25, CD127 |
Th1/Th2/Th17 Cells | CD4, IFN-γ, IL-4, IL-17 |
Dendritic Cells | CD1c, CD83, CD141, CD209, MHC II |
Natural Killer Cells | CD3-, CD16, CD56 |
Macrophage | CD11b, CD68, CD163 |
Monocyte | CD14, CD16, CD64 |
Plasma Cells | CD138 |
Red Blood Cells | CD235a |
B Cells | CD19 |
T Cells | CD3, CD4, CD8 |
Treg Cells | CD4, CD25, Foxp3 |
Th1/Th2/Th17 Cells | CD4, IFN-γ, IL-4, IL-17 |
Dendritic Cells | CD11c, MHC II |
Natural Killer Cells | CD3-, CD49b (clone DX5) or NK1.1 |
Macrophage | F4/80, CD11b, CD80, CD86, CD206 |
Monocyte | CD11b, CD115, Gr-1, Ly-6C |
Plasma Cells | CD138 |
Red Blood Cells | TER-119 |
步驟二,,確認Marker的表達位置,。
對于細胞質(zhì)或者細胞核的Marker,需要對細胞進行固定破膜/破核膜,。在做胞質(zhì)或胞核Marker染色實驗操作時,,需要先染細胞表面Marker,,再對細胞進行固定破膜,,最后對胞內(nèi)或核內(nèi)Marker染色。此時細胞表面的Marker盡量避免使用串聯(lián)染料,,因為“固定”容易對串聯(lián)熒光素造成影響,。

一般來說,絕大部分CD分子指標(biāo),,都是細胞表面指標(biāo),;IL白介系列,、IFN-γ、TNF-α等,,屬于胞內(nèi)指標(biāo),;而常見的核內(nèi)染色指標(biāo)是Foxp3。
確認Marker表達位置的同時,,我們還需要了解Marker的表達量,。前面提到過“強弱搭配”,我們需要通過表達量的強弱,,來搭配熒光素的弱強,。
通常,根據(jù)待測細胞類型中,,相應(yīng)抗原的表達量,,可以粗略地將抗原分子分為三類:
01
很容易鑒定、容易區(qū)分陰陽性細胞群,、陰陽性峰明顯分開的抗原,。例如: CD3,CD4,,CD19等,。
02
很容易鑒定、較高水平表達,、經(jīng)常連續(xù)性表達,。例如: CD27,CD28,,CD45RA, CD45RO等,。
03
低水平表達、激活性Marker,、未知但關(guān)鍵,。例如: CD25,STAT5,,F(xiàn)oxp3等,。



表達量的強弱,可以參考廠家的質(zhì)檢結(jié)果,,但更多地需要參考文獻里具體細胞群體的表達,。
步驟三,了解實驗所用流式細胞儀的配置信息,,包括:流式細胞儀的激光器,、檢測通道和濾光片等。
上期提到:流式細胞儀是同時檢測多種熒光的,,這些熒光之間可能存在干擾,。我們需要根據(jù)流式細胞儀的通道,,來確認有哪些熒光素可以選擇,這樣可以在后期搭配的時候,,盡量避免干擾,。如果沒有儀器的通道信息,是無法去確定哪些熒光素可供選擇的,??梢哉f,如果沒有儀器通道信息,,配色就是“無源之水,,無本之木”。
通過儀器通道信息,,確認可以選擇哪些熒光素后,,我們還需要了解熒光素的信息,確認這些熒光素的激發(fā)波長和發(fā)射波長,、接收該熒光的濾光片等信息,,是否和流式細胞儀的通道一致。

▲ 常見熒光基團信息
步驟四,,了解熒光素的強度,。
下表列出了常見熒光素的強度:

在已確定Marker的強弱,和流式細胞儀可檢測的熒光素的強弱后,,我們要遵循“強弱搭配原則”,,進行配色。
強表達抗原,,可以選擇弱熒光素,,也可以選擇強熒光素。
如下圖所示,,強表達抗原CD3,,選擇弱熒光素FITC或強熒光素APC,對實驗結(jié)果影響不大,。


弱表達抗原,,一定要選擇強熒光素。
如下圖所示,,弱表達的抗原CD25,,選擇弱熒光素PerCP,會導(dǎo)致陰陽性細胞群分不開,。如果選擇強熒光素PE,,可以看到明顯的陽性細胞群,。


當(dāng)然,,有些老師在配色時,,也會遇到一些其他的問題,如:細胞樣本有自發(fā)熒光,、細胞處理容易出現(xiàn)死細胞(需要額外增加死活細胞染料)等,。因此,我們需要特別注意,,將對應(yīng)通道的熒光檢測信息,,預(yù)留給自發(fā)熒光,或者死活染料檢測,。

相信在了解了流式配色的基本原則及操作步驟后,,大家的實驗也能更加順利地開展啦~
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