Ni瓊脂糖凝膠說明書

Ni-Agarose Resin for 6×His-Tagged Proteins 

目錄號：  K0010       

保    存：  20%乙醇中          2-8℃保存 

組分說明 

                     Cat.No.        K0010A         K0010C

                     Volume           10ml         100ml

產品簡介

      該鎳柱純化系統(tǒng)對6×His-tag 蛋白具有顯著特異吸附能力,，能夠高效一步純化帶有 6 個組氨酸親和標簽的蛋白。該系統(tǒng)具有4 個 Ni2+ 螯合位點,，較只有3 個螯合位點的Ni-IDA 結合Ni2+更為牢固,，有效防止純化過程中Ni2+脫落且增強對His 標簽蛋白的結合能力，提高純化效率,。較高的基團密度,，大大提高了蛋白載量。該系統(tǒng)在天然或變性條件下,，對來源于各種表達系統(tǒng)（如桿狀病毒,，哺乳細胞，酵母以及細菌）中的 His 標簽蛋白,，均有很好的純化效果,。本產品已螯合鎳離子，可直接使用,，方便,，快捷,。

支持物：CL-6B 瓊脂糖凝膠

      載量：20-30mgHis標簽蛋白/ml 填料

      粒徑：50-160μm

注意事項 

 1. 緩沖液中不建議使用β-巰基乙醇、DTT 和EDTA,。

 2. 整個純化過程中切忌凝膠脫水變干,。

 3. 為提高純化效率，首先確定BindingBuffer 和  ElutionBuffer 中咪唑的最-#佳使用濃度,?？梢允褂镁€性或梯度濃度的咪唑（20-500mM）洗脫蛋白，并通過SDS-PAGE 或 WesternBlotting 來檢測目的蛋白的純度,。

 4. 請使用高純度的試劑配制緩沖液,，并通過0.45µm 過濾器過濾。為避免柱子被堵塞,，建議將裂解液進行離心,，或者使用 0.45µm 過濾器過濾。

 5. 柱再生時,，保證每步洗完后都要用足夠的去離子水沖洗至中性,。

操作步驟 

組裝層析柱 

 1. 將填料混勻后加入層析柱，室溫靜置10 分鐘,，待凝膠與溶液分層后,，把底部的出液口打開，讓乙醇通過重力作用緩慢流出,。

 注意：（1）填料的上層是乙醇保護層,，將填料和乙醇一起混勻，以每ml填料純化20-30mgHis標簽蛋白計算,，取需要的填料與乙醇的混合液加入層析柱,。

（2）如果乙醇不流出，可以給柱子一個外力,，例如用大拇指對柱口輕輕按壓一下,，迫使乙醇流出。                                                        

（3）本實驗都是通過重力作用使溶液流出,。

 2. 向裝填好的柱中加入5 倍柱體積的去離子水將乙醇沖洗干凈后,，再用 10 倍柱體積的Binding Buffer  平衡柱子,，平衡結束后即可上樣,。

 注意：柱體積指的是填料的體積。

I  可溶性蛋白的純化（SolubleBindingBuffer和SolubleElutionBuffer配方詳見附表1） 

 1.  收集菌體后,，每100mg菌體（濕重）加入1-5 ml細菌裂解液,，超聲裂解菌體。

 2.  將菌體裂解液負載上柱,，流速為10倍柱體積/小時,。

 3.  使用15倍柱體積的Soluble Binding Buffer沖洗柱子,，收集流穿峰。

 4.  使用5倍柱體積的Soluble Elution Buffer洗脫,，收集洗脫峰,。

 5.  洗脫后，依次使用3倍柱體積的Soluble Binding Buffer和5倍柱體積的去離子水洗滌柱子,，再用3倍柱體積的20%乙醇平衡（乙醇要將填料浸沒）,，4℃保存。

II  包涵體蛋白的純化（InclusionBodyBindingBuffer和 InclusionBodyElutionBuffer配方詳見附表2） 

 1. 收集菌體后,，每100mg菌體（濕重）加入1-5 ml  細菌裂解液,，超聲裂解菌體。

 2. 離心,，棄上清,，將沉淀重懸于Soluble Binding Buffer中（如有需要，可進行超聲波處理,，超聲前可加入1-5mM磷酸酶抑制劑混合物）,。

 3. 重復操作2，直至包涵體清洗干凈（呈較潔凈的乳白色狀）,。

 4. 將沉淀重懸于Inclusion BodyBinding Buffer中,，冰浴1小時，使包涵體溶解,。

 5. 10,000×g離心20分鐘,，將上清以孔徑為0.45 μm的濾膜過濾。

 6. 將蛋白溶液負載上柱,，流速為10倍柱體積/小時,。

 7. 使用15倍柱體積的Inclusion BodyBinding Buffer沖洗柱子，收集流穿峰,。

 8. 使用5倍柱體積的Inclusion Body Elution Buffer洗脫,，收集洗脫峰。

 9. 洗脫后,，依次使用3倍柱體積的Inclusion BodyBinding Buffer和5倍柱體積的去離子水洗滌柱子,，再用3倍柱體積的20%乙醇平衡（乙醇要將填料浸沒），4℃保存,。

     注意：在純化包涵體蛋白時,，所有緩沖液均含有變性劑，需要降低 BindingBuffer 中的咪唑濃度（5mM 或更低）,。洗脫時,，若蛋白在較高pH下洗脫失敗，可以選用低 pH 緩沖液作為洗脫緩沖液（pH6.5,，pH5.9 或 pH4.5）,。 柱再生 當填料使用多次后,，結合效率會有所下降（表現為流速變慢或填料失去藍綠色），可以用以下方法再生,，提高填料的使用壽命和蛋白質的結合效率,。

 1. 使用2 倍柱體積的6M  鹽酸胍沖洗后，使用3 倍柱體積的去離子水沖洗,。

 2. 使用 1 倍柱體積2% SDS 沖洗,。

 3. 依次使用 1 倍柱體積的25%、50%,、75%和5 倍柱體積100%乙醇沖洗,，再依次使用 1 倍柱體積的75%、50%,、25%的乙醇沖洗,。

 4. 使用 1 倍柱體積的去離子水沖洗。

 5. 使用 5 倍柱體積含50 mM EDTA 緩沖液（PH8.0）沖洗,。

 6. 使用 3 倍柱體積去離子水,，3 倍柱體積20%乙醇沖洗。

 7. 4°C 保存,。

 8. 再次使用前,，需首先使用10 倍柱體積去離子水沖洗，然后使用5 個柱體積的      50 mM NiSO4再生,，3 個柱體積的Binding Buffer   平衡,。

 1: 蛋白分子量標準  

（分子量由大到小分別為：90/66/45/27/  14.4kDa）

2: 全菌裂解液

 3: 流穿收集液

 4: 洗脫收集液    

1（洗脫緩沖液，含     500mM   咪唑,，收集第1 個柱體積）

 5: 洗脫收集液

2（洗脫緩沖液,，含 500mM 咪唑，收集第 2 個柱體積）

 6: 洗脫收集液

3（洗脫緩沖液,，含500mM咪唑,，收集第3 個柱體積）

7: 洗脫收集液

 4（洗脫緩沖液,，含500mM 咪唑，收集第 4 個柱體積）

 附表 

 附表  1. 可溶性蛋白純化緩沖液配方

                                                         

成分                    Tris-HCl（PH7.9）   咪唑            NaCl

SolubleBindingBuffer              20mM      10mM       0.5M

SolubleElutionBuffer              20mM        500mM     0.5M



    

附表  2. 包涵體蛋白純化緩沖液配方

 成分                 Tris-HCl（PH7.9）    咪唑    NaCl     尿素/鹽酸胍

InclusionBodyBindingBuffer      20mM     5mM  0.5M    8M/6M

InclusionBodyElutionBuffer       20mM   500mM   0.5M    8M/6M

    

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