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石蠟切片制備基本步驟

來(lái)源:中山誠(chéng)銘科技有限公司   2019年11月25日 09:22  

石蠟切片制備基本步驟

                                      

一,、準(zhǔn)備工作

(一)洗滌實(shí)驗(yàn)所需器皿:(玻璃器皿的清洗)

1,、  用洗衣粉將玻璃器皿表里擦洗干凈反復(fù)洗刷

2,、  將器皿在自來(lái)水下沖洗干凈

3,、  將器皿倒扣在鋪有吸水紙或紗布的桌子上控干

注:一般情況下,,經(jīng)以上步驟后,,用蒸餾水洗過(guò)1~3次即可烘干備用,,如果做特殊染色還需浸泡在酸性清潔液內(nèi)12~24小時(shí),再經(jīng)自來(lái)水*沖洗,,再用蒸餾水過(guò)洗1~3次 烘干備用,。

(三)載玻片與蓋玻片的處理

1.        將所需載玻片與蓋玻片清洗后,放入硫酸重鉻酸鉀溶液中浸泡24小時(shí)

2.        流水沖洗,,再用蒸餾水沖洗3遍

3.        95%~100%酒精浸泡24小時(shí),,用綢布擦干備用

注:在將載玻片與蓋玻片放入清潔液中時(shí),要一片片地投入,,使其不致重疊,。

 

二、常用液體的配制

(一)緩沖溶液:

1.磷酸鹽緩沖液

A液:0.1mol/L磷酸二氫鈉

B液:0.1mol/L磷酸氫二鈉

A液與B液按比例混合調(diào)整到所需的PH值(3:7≈PH7.0)

2.枸椽酸緩沖溶液

A液:0.1mol/L枸椽酸

B液:0.1mol/L枸椽酸鈉

A液與B液按比例混合調(diào)整到所需的PH值(6.2:42.8≈PH6.2)

(二)固定劑:

1.甲醛:10%甲醛

福爾馬林    100ml

蒸餾水      900ml

注:實(shí)際甲醛含量只有3.6~4.0%但習(xí)慣上都將其視為10%,。

2.10%中性福爾馬林鈣固定液

甲醛液    10ml

蒸餾水    90ml

加碳酸鈣至過(guò)飽和(以容器底部碳酸鈣沉淀1~2cm厚為適度)充分振蕩混合后,,放置24小時(shí)取上清液使用。

3.4%多聚甲醛:

8%多聚甲醛

多聚甲醛   8g

蒸餾水    100ml

加溫至60℃左右,,不時(shí)攪拌,,成為乳白色溶液。滴加1N NaOH,,并不停攪動(dòng)至液體清明,。

1N NaOH

lN等于1L溶液中某種物質(zhì)1mol除以該物質(zhì)的氫當(dāng)量?jī)r(jià)所得數(shù)值的量

氧化鈉(NaOH );分子量=40.005,,當(dāng)量?jī)r(jià)=1

1N Na0H的配制方法為:m=40.005/1=40.005g,。取40.005gNaOH溶解于1L蒸餾水中

4%多聚甲醛

8%多聚甲醛         50ml

0.1M磷酸鹽緩沖液   50ml

PH7.2

先取50 ml 8%多聚甲醛,用0.1M磷酸二氫鈉和0.1M磷酸氫二鈉將PH值調(diào)至7.2

6.Carnoy液:

冰醋酸     10 m1

無(wú)水乙醇   60 m1

以上三者臨用前混合,,預(yù)冷至4℃后使用,。24小時(shí)后固定液失效。

(三)染色液

1.Harris蘇木精液

A液:

蘇木精          1g

*        10ml

B液:

銨礬或鉀礬      20g

蒸餾水          200ml

冰醋酸          8ml

2.Mayer蘇木精掖

蘇木精         1g

鉀礬或銨礬     50g

碘酸鈉         0.2g

蒸餾水         1000ml

水合氯醛       50g

枸櫞酸         1g

將蘇木精,,鉀礬及碘酸鈉依次加入水內(nèi),略加熱并攪拌,,此時(shí)液體呈藍(lán)色,,待全溶后過(guò)夜。再加入水合氯醛及枸櫞酸并加熱至煮沸5分鐘,,冷后過(guò)濾備用,。如不急用可不煮沸而在室溫待其成熟,染液可較長(zhǎng)期貯存使用,。核染色鮮明,,染色時(shí)間5—10分鐘。用該染液染色后,,不需分化,,充分水洗藍(lán)化后即可,,伊紅復(fù)染細(xì)胞質(zhì),使用一段時(shí)間后就要換新溶液,。

3.Hasnsen甲礬蘇木精的配制

A液:蘇木精      1g

      無(wú)水乙醇    10ml

B液:鉀礬        20g

      蒸餾水      200ml

C液:高錳酸鉀    1g

      蒸餾水      16ml

三液分別溶化后,,將A液倒入B液,再加入C液3ml,,充分?jǐn)嚢杈鶆蚝蠹訜嶂练序v,,1分鐘左右,將容器置于冷水中使其迅速冷卻,,此液配后即可使用,,染后無(wú)需堿化,細(xì)胞核即為藍(lán)色,,效果較好,,高錳酸鉀可以迅速氧化蘇木精(每1g蘇木精需0.177g高錳酸鉀氧化)。

4.伊紅

0.5~1%水溶液或酒精溶液,。

1.水溶性伊紅

伊紅    5~10g

蒸餾水  1000ml

冰醋酸  10滴

先將水溶性伊紅加入蒸餾水中,,用玻璃棒攪起泡沫后過(guò)濾,再加冰醋酸,。

2.醇溶性伊紅

伊紅            5~10g

70%~90%酒精   1000ml

冰醋酸  10滴

(四)其它

2.各級(jí)濃度酒精的配制

75%,;85%;95%,;100%酒精,。75%和85%酒精用95%酒精配制;(取75ml95%酒精,,加水至95ml,,即為75%酒精)

3.鹽酸灑精

多用于多種染色過(guò)程中的分色,如蘇木精染色后分色,。配法是在100ml的70%酒精內(nèi)加0.5~1ml的濃鹽酸(Hcl),。用鹽酸酒精分色后要經(jīng)自來(lái)水充分沖洗組織切片,去除所含的酸再作其他處理,。

4.碘酒

取碘5g,,溶于95%酒精80ml,再加入20ml蒸溜水即成

5.生理鹽水

以氯化納0.85~0.90g溶于100m1蒸餾水配成的生理鹽水適用哺乳動(dòng)物

石蠟切片制備基本步驟 之二

                                      

三,、取材,,固定

(一)   實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的抓取及固定

1.小白鼠、大白鼠的抓取及固定方法

要點(diǎn):(1)動(dòng)作要輕緩,;(2)不要突然襲擊,;(3)如發(fā)現(xiàn)動(dòng)物的毛發(fā)豎起來(lái)時(shí),停一會(huì)后再抓;(4)將四肢打開,,固定在木板或方形蠟板上,。

2.實(shí)驗(yàn)家兔的抓取及固定方法

要點(diǎn):(1)隨時(shí)撫摩其頭部;(2)防止被其腳爪抓傷,;(3)根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求選擇固定方法,。

3.豚鼠的抓取及固定方法

要點(diǎn):先用一只手扣住豚鼠背部,然后抓緊兩耳間頭頸部的皮膚,,用另一只手托起臀部送到動(dòng)物固定臺(tái)上,。

(二)   實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的編號(hào)、標(biāo)記,、分組和被毛去除方法

1.編號(hào)和標(biāo)記方法

(1)染色法

編號(hào)原則:先左后右,,從前到后

左前腳為1,左側(cè)腹為2,,左后腿為3,,頭頂為4,腰背部為5,,尾基為6,,右前腳為7,右側(cè)腹為8,,右后腿為9,。超過(guò)10可用不同的染色的標(biāo)記液,一種染色為個(gè)位,,另一種為十位數(shù),。

(2)掛牌法

(3)耳孔法

一般來(lái)說(shuō),小型動(dòng)物適宜用耳孔法和染色法,,中型動(dòng)物適用于掛牌法,。

2.實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的隨機(jī)分組方法

動(dòng)物實(shí)驗(yàn)時(shí),常常需要將選擇好的實(shí)驗(yàn)動(dòng)物,,按研究需要分成若干個(gè)組,,分組時(shí)為了避免人為因素的影響,常應(yīng)用隨機(jī)數(shù)字表進(jìn)行*隨機(jī)化的分組,。

3.實(shí)驗(yàn)動(dòng)物被毛去除方法

剪毛法

拔毛法

剃毛法

脫毛法:系用化學(xué)脫毛劑將實(shí)驗(yàn)動(dòng)物被毛脫去,,適用于無(wú)菌手術(shù)野的準(zhǔn)備以及觀察動(dòng)物皮膚血液循環(huán)和病理變化。方法:將需脫毛部位的被毛先用彎頭剪刀剪去,,盡量剪短,,勿剪破皮膚,。然后用溫水將該部位潤(rùn)濕,,再用紗布包扎棉球的小棒蘸脫毛劑,在需脫毛部位涂一層,,經(jīng)2~3min后,,用溫水洗去該部位脫下的毛,,自然晾干備用,切勿用紗布去擦,,以免損傷皮膚,。

脫毛劑配方:

(1)硫化鈉3g

     肥皂粉1g

     淀粉7 g

     加水適量調(diào)成糊狀

(2)硫化鈉8g

     溶于100ml水中

(3)硫化鈉8g

     淀粉7 g

     糖4 g

     甘油5 g

     硼砂1 g

     加水75ml

(三)   實(shí)驗(yàn)動(dòng)物處死

處死動(dòng)物的方法很多,無(wú)論是采用哪種方法,,都要盡力避免使動(dòng)物長(zhǎng)時(shí)間陷于痛苦和瀕于死亡狀態(tài),。熱愛(ài)生命,珍愛(ài)動(dòng)物,。

1.空氣栓塞致死法

要點(diǎn):(1)常用于大的動(dòng)物(如:兔,、貓、狗和猴等),;(2)用50~100ml注射器一只,;(3)此方法迅速、方便,,但各臟器淤血明顯,。

2.麻醉后處死法

注:采用此方法,取材后一定要確定動(dòng)物是否已死亡,,再行斷頸,。

(1)吸入麻醉法

要點(diǎn):(1)適用于較小的動(dòng)物(小白鼠、大白鼠,、豚鼠和兔等),;(2)時(shí)間大約1~2分鐘;(3)注意防火

(2)注射麻醉法

要點(diǎn):(1)適用范圍較廣,;(2)注射方式可采用靜脈,、腹腔、皮下和肌內(nèi)注射,,常用的是腹腔注射,;(3)注射致死量一般視動(dòng)物大小而定。

3.腦,、脊破壞法

要點(diǎn):(1)常用于蛙類,;(2)用金屬針經(jīng)枕骨大孔進(jìn)入,破壞大腦和脊髓,。

4.?dāng)囝^處死法

要點(diǎn):(1)常用于小動(dòng)物,;(2)用剪刀剪斷頸椎;(3)如果沒(méi)有特殊要求,,不要使頭和軀干分離,。

5.?dāng)嘧捣?/span>

要點(diǎn):(1)常用于大白鼠和小白鼠;(2)一手固定頭部,一手拽住實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的尾部,,輕輕一拉扯斷其頸椎,,使其脫位,椎管內(nèi)急性損傷癱瘓或死亡后取材,;(3)此方法處死動(dòng)物組織結(jié)構(gòu)保存較好,。

(四)   實(shí)驗(yàn)動(dòng)物解剖

解剖步驟

1.實(shí)驗(yàn)動(dòng)物被麻醉或處死后,將其,;固定在動(dòng)物解剖臺(tái)上,,用紗布蘸取生理鹽水濕潤(rùn)被毛;

2.從下頜至恥骨聯(lián)合沿正中線切開皮膚,;

3.打開腹腔:沿肋骨下緣腹正中,,用鑷子提起腹壁切開腹壁肌肉,至恥骨聯(lián)合,,從肋骨下端向脊柱方向,,將兩側(cè)腹壁剪開,充分暴露腹腔內(nèi)臟器,;

4.打開胸腔:用剪刀沿肋骨的肋軟骨和骨的連接處由下向上剪開,,不要剪斷鎖骨,剪時(shí)應(yīng)盡量貼著胸內(nèi)壁,,并注意不要剪斷胸骨兩側(cè)的大血管,。然后將肋弓提起,暴露腹腔內(nèi)臟器,。

(五)   取材

取材一定要迅速,,應(yīng)在動(dòng)物處死后立即進(jìn)行解剖和切取組織材料,否則會(huì)引起細(xì)胞發(fā)生死后變化,,進(jìn)而失去原有的結(jié)構(gòu),,如果進(jìn)行酶組化染色,將會(huì)使大量的酶失活和丟失,。

取材方法和注意事項(xiàng)

(1)取材用的刀剪必須鋒利,,取材時(shí)應(yīng)用鑷子夾該組織的周圍的結(jié)締組織,凡是用鑷子夾過(guò)的或用手壓過(guò)的組織均不可用,。

(2)根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求選擇不同的取材方法(整體取出臟器法,、單個(gè)臟器取出法和切取組織塊法等)

(3)取材的先后順序原則。根據(jù)死后組織結(jié)構(gòu)改變的速度的快慢而定,。先腹腔后胸腔,,先消化管后肝、脾等多血的器官及神經(jīng)組織,。

(4)取材組織塊的大小既要保證組織的完整性,,又要力求小而薄,,一般以1.0cm×1.0cm×0.5cm為好,但有些特殊要求的可視情況而定,。

(5)較小的組織或器官(淋巴結(jié)、松果體,、腦垂體和神經(jīng)節(jié)等)應(yīng)整體固定,,但要破壞其表面一側(cè)的被膜。

(6)管狀及囊狀組織(消化管的取材)都不應(yīng)斜切,,先將一段腸管或食管剪下,,從中剪開管腔,使之成片狀,,然后將其鋪在紙板下,,黏膜面朝上,用大頭針或細(xì)線將四邊固定,,用生理鹽水漂洗黏膜表面,,然后固定。

(7)較細(xì)的管狀臟器(輸尿管,、輸精管,、輸卵管、中動(dòng)脈和靜脈等)應(yīng)取下1~2cm長(zhǎng),,平鋪于硬紙片上或吸水紙上分段固定,。

(8)取材要盡量注意臟器的完整性。

(9)應(yīng)根據(jù)所要觀察的部位及實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪M(jìn)行選擇組織的切面,。對(duì)于病理材料,,除切取病變部位外,還要切取病變和正常組織交界部分的區(qū)域,,以利于進(jìn)行正常組織與病理組織的對(duì)比觀察分析,。

(10)取材時(shí)要注明取材時(shí)間、組織器官名稱,、固定液名稱,、組織塊的數(shù)量、所取組織位于器官的部位等,,以備查,。

(六)   固定

1.固定的目的

2.固定的對(duì)象和方法

(1)固定的主要對(duì)象是蛋白質(zhì);

(2)固定液的量要足夠,,其固定液的量一般不少于組織總體積的10倍以上(一般為1:20),。對(duì)于某些需要制作神經(jīng)染色和酶組織化學(xué)染色的組織固定,比一般的固定要嚴(yán)格,。

3.固定液的性質(zhì)和條件

(1)能迅速滲入組織,,使組織細(xì)胞形態(tài)在短期內(nèi)不至于有較大變化,。

(2)固定液有相當(dāng)?shù)臐B透力,對(duì)組織各部分的滲透力相等,,可使組織內(nèi)外*固定,。

(3)使組織細(xì)胞不至于因固定而引起人為的改變。

(4)盡可能避免固定劑使組織膨脹或收縮,。

(5)使組織達(dá)到一定硬度,,獲得較佳的折光率和對(duì)染料具有較強(qiáng)的親合力。

4.固定時(shí)應(yīng)注意的事項(xiàng)

(1)固定液及被固定的組織必須新鮮,;

(2)固定液的用量一般為組織體積的10~20倍,,容器不要過(guò)小,材料也不要太多,;應(yīng)避免組織緊貼瓶底或瓶壁,,以免影響固定液的滲入,必要的時(shí)候可以在瓶底墊上一層棉花,;

(3)固定時(shí)間視組織塊的種類,、性質(zhì)、大小,,固定液的種類,、性質(zhì)、滲透力的強(qiáng)弱,,固定時(shí)的溫度的高低,,實(shí)驗(yàn)?zāi)康牡龋?/span>

(4)防止被固定的組織因固定劑的作用而發(fā)生變形;

(5)固定所用的固定液,,以新配的為好,,放置過(guò)久會(huì)失效;

(6)在固定期間搖動(dòng)組織或搖動(dòng)容器有利于固定液的滲入,,對(duì)長(zhǎng)期固定的標(biāo)本,,可經(jīng)常更換固定液

(7)取材固定應(yīng)同時(shí)作好記錄,包括組織名稱,、固定液和時(shí)間等內(nèi)容,。

5.固定劑

單純固定劑

(1)10%甲醛:對(duì)組織滲透性強(qiáng),固定均勻,。對(duì)組織膨脹約5%,,經(jīng)酒精脫水時(shí)有較大的收縮。能保存脂肪,,不能沉淀核蛋白及白蛋白,,長(zhǎng)期用其固定的組織使組織變?yōu)樗嵝裕焕谌旧?,特別是細(xì)胞核的著色,。經(jīng)自來(lái)水沖洗6~24小時(shí)后,,可以使其酸堿中和,并減少結(jié)晶,。

(2)4%多聚甲醛:對(duì)組織穿透性好,,組織收縮小,對(duì)大多數(shù)抗原物質(zhì)保存較好,,特別是對(duì)脂肪和各種酶的固定效果更好,。固定的時(shí)間不宜太長(zhǎng),以24小時(shí)以內(nèi)為宜,,適用于免疫組織化學(xué)染色。

(3)冰醋酸:滲透力強(qiáng),,沉淀核蛋白,,對(duì)染色質(zhì)固定好,使組織膨脹,,故一般不單獨(dú)使用,。

(4)鋨酸:價(jià)格昂貴,為強(qiáng)氧化劑,,易還原成氫氧化鋨,,呈黑色沉淀;必須避光保存,。不能沉淀蛋白質(zhì),,而使蛋白質(zhì)凝膠化,所以對(duì)蛋白質(zhì)固定不均勻,,鋨酸固定的細(xì)胞能保持生活時(shí)的形態(tài),,不收縮細(xì)胞,對(duì)胞質(zhì)固定較長(zhǎng)好,,核的固定不好,,鋨酸為脂肪及類脂質(zhì)的優(yōu)良固定劑,經(jīng)它固定的脂肪和類脂質(zhì)呈黑色,,特別是對(duì)于是顯示線粒體和高難度爾基復(fù)合體效果良好,。

混合固定劑

(1)Carnoy液:滲透力強(qiáng),特別適宜于固定染色體,、肝糖,、粘液等一些較為細(xì)微的結(jié)構(gòu)。顯示DNA,、RNA效果良好,。

(2)改良Bouin氏固定液:此液對(duì)一般組織固定效果都很好,固定時(shí)間為4~18小時(shí),,固定后直接放70%乙醇脫水,,固定時(shí)間較長(zhǎng)對(duì)組織亦無(wú)損害,。

(七)   組織塊修整

固定后的組織塊可能會(huì)在外部形態(tài)上有些改變,或者由于組織在還未固定時(shí)就取材,,組織器官較軟,,取材不容易切平。經(jīng)固定后的組織有一定的硬度,,此時(shí)就可以做一些修整,,但改變不要太大,只是將組織材料切取平整,,修掉一些不規(guī)則的部位,。修整組織塊時(shí),手術(shù)切片一定要鋒利,。

                                      

四,、水洗

1.目的:

洗去滲入組織中的固定液,終止固定,。以免影響對(duì)組織內(nèi)結(jié)構(gòu)的觀察,、分析和研究。

2.原則和方法:

固定后的組織塊的沖洗,,一般情況下是置水下以自來(lái)水流水沖洗,,這樣可以使組織中的固定液隨時(shí)溢出,洗得更干凈*,,有些還需要進(jìn)行特殊的洗滌,。

 

五、脫水包埋

(一)脫水

1.脫水的目的

組織內(nèi)的水不能和支持劑混合,,所以必須把組織中的水分*脫除,。脫水有利于組織的透明和浸蠟,有利于組織的保存,。

2.脫水劑

(1)乙醇:可作固定劑,,又可脫水劑,但乙醇與水混合時(shí)有較劇烈的物理反應(yīng),。高濃度的酒精對(duì)組織有強(qiáng)烈收縮及脆化的缺點(diǎn),,因此用乙醇脫水不能直接入純酒精中脫水,而必須經(jīng)過(guò)由高到低的一系列不同濃度的酒精,,逐漸取代組織中水分,,以保證組織脫水*,并避免組織過(guò)度收縮和硬化,。

(2)丙酮:脫水能力比酒精強(qiáng),,但對(duì)組織的收縮更大,在組織學(xué)制片中較少使用,,多用于病理快速切片,,或用于某些組化水解酶的固定,。

(3)正丁醇:是較好的脫水兼透明劑,可與酒精及石蠟混合,,用于脫水是可先經(jīng)過(guò)各種不同濃度的正丁醇和乙醇混合液,,再入正丁醇,進(jìn)行石蠟包埋時(shí),,可先用正丁醇和石蠟等量混合液,,然后浸入純石蠟包埋,正丁醇用于脫水的優(yōu)點(diǎn)是很少引起組織收縮和脆硬,,可替代二甲苯,,是很好的脫水劑,但由于價(jià)格較貴,,不常使用,。

3.步驟

(1)乙醇脫水過(guò)程

50%乙醇      6~8小時(shí)

75%乙醇      6~8小時(shí)

85%乙醇      3~5小時(shí)

95%乙醇      1~2小時(shí)

95%乙醇      1~2小時(shí)

100%乙醇Ⅰ   1小時(shí)

100%乙醇Ⅱ   1小時(shí)

(2)丙酮脫水

如果是丙酮固定的組織,則不必再經(jīng)過(guò)乙醇,,可以用新丙酮更換一次,,便直接浸入二甲苯或苯中透明,。其他水溶液固定的組織,,均按上述乙醇脫水方法脫水,亦可由100%乙醇中移入丙酮繼續(xù)脫水2~4小時(shí)再入二甲苯透明,,透明后浸蠟包埋,。

(3)正丁醇脫水

組織用正丁醇脫水前,先經(jīng)50%乙醇脫水,,然后移入正丁醇和乙醇混合液進(jìn)行脫水,。

50%乙醇                              6~12小時(shí)

50%乙醇+20%正丁醇+30%蒸餾水        5~8小時(shí)

50%乙醇+35%正丁醇+15%蒸餾水        4~6小時(shí)

45%乙醇+45%正丁醇+10%蒸餾水        3~5小時(shí)

25%乙醇+75%正丁醇                   2~3小時(shí)

25%乙醇+75%正丁醇                   1~2小時(shí)

15%乙醇+85%正丁醇                   1~2小時(shí)

5%乙醇+95%正丁醇                    1~2小時(shí)   

100%正丁醇Ⅰ                         1小時(shí)

100%正丁醇Ⅱ                         1小時(shí)

4.注意事項(xiàng):

(1)脫水的過(guò)程應(yīng)逐步地而不應(yīng)驟然地進(jìn)行,不能操之過(guò)急,。

(2)脫水的時(shí)間應(yīng)根據(jù)組織塊的大小和組織的類型而定,。

(3)組織塊在高濃度,特別是無(wú)水乙醇內(nèi)不能放置的時(shí)間太長(zhǎng),。無(wú)水乙醇吸水能力太強(qiáng),,容易造成組織塊的過(guò)度硬化,使得切片理組織易碎裂,。

(4)在脫水的過(guò)程中可以將組織塊停留在70%~80%的酒精中,。

(5)每次更換新的脫水劑時(shí)(組織塊從低濃度到高濃度),都要把組織塊放在吸水紙上吸干,,裝組織塊的容器也要控干水分,,以免將水及低濃度脫水劑帶入高濃度脫水劑中,影響脫水效果,。

(6)脫水劑的先擇要根據(jù)實(shí)驗(yàn)的要求及實(shí)驗(yàn)室的條件

(二)透明

1.透明的目的

置換組織內(nèi)的脫水劑,,為下一步的浸蠟起到橋梁作用,;

使組織呈現(xiàn)不同程度的透明狀態(tài),有利于光線的透過(guò),。

2.透明劑

(1)二甲苯:是現(xiàn)在應(yīng)用廣的一種透明劑,,價(jià)格較便宜,不能和水混合,,遇水則變成乳白色渾濁,,因此必*脫水后才能使用;易溶于酒精又能溶解石蠟,,透明力強(qiáng),;其大的缺點(diǎn)是容易使組織收縮變硬變脆,所以組織不能在其停留過(guò)久,,透明時(shí)間視組織塊的大小,、性質(zhì)而定;有的組織如肌肉,、肌腱,、軟骨、骨,、皮膚,、頭皮及眼球等,不宜用二甲苯透明,,因組織過(guò)硬不易切片,;長(zhǎng)時(shí)間接觸,對(duì)粘膜有刺激作用,。

(2)苯:性質(zhì)與二甲苯相似,,對(duì)組織收縮也較小,組織也不易變脆,,但透明較慢,,組織在其內(nèi)可以滯留12~24小時(shí),但毒性較大,。

(3)香柏油:用為透明劑,,效果很好,有高度透明作用,,能與醇和二甲苯混合,,香柏油對(duì)組織的硬化及收縮程度比任何其他透明劑都要小,但透明的速度較慢,,3mm以下厚度的組織塊需12小時(shí)以上,。香柏油與石蠟不易融合,即香柏油不易被石蠟取代,因此經(jīng)香柏油透明以后,,可經(jīng)過(guò)二甲苯短時(shí)間媒浸,,再進(jìn)行石蠟包埋。肌肉,、皮膚,、血管、膀胱,、垂體及腎上腺等用香柏油效果較好,。

3.二甲苯的步驟:兩次透明

4.注意事項(xiàng)

(1)時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng),否則組織會(huì)變脆,;

(2)組織塊脫水必*,。

(三)浸蠟、包埋(石蠟包埋法)

1.浸蠟

(1)浸蠟的目的

置換組織中的透明劑,,為包埋做準(zhǔn)備,。

(2)浸蠟的步驟

在60度恒溫蠟箱中放置3個(gè)蠟杯,分別編號(hào)1(52℃~54℃),、2(52℃~54℃,,或54℃~56℃)、3(56℃~58℃),,其中分別盛軟蠟,、軟蠟、硬蠟,,取透明好的組織塊放入軟蠟中各1小時(shí),,迅速取出放入硬蠟,,同樣放置1小時(shí),。如果時(shí)間來(lái)及包埋,可以將已經(jīng)完成浸蠟的組織塊取出放在溫箱外,,第二天繼續(xù),。

(3)注意事項(xiàng)

溫箱中的溫度必須嚴(yán)格控制在60℃的范圍,不能超過(guò)60℃,;浸蠟時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng),。浸蠟溫度過(guò)高或時(shí)間過(guò)長(zhǎng)使組織收縮過(guò)度收縮和脆變。

2.包埋

(1)步驟

①準(zhǔn)備包埋蠟:一般應(yīng)用硬蠟(56~58℃或60~62℃)為好,,所用的石蠟要求透明無(wú)雜質(zhì),,新的石蠟要反復(fù)熔凝,并有一定的粘韌性,,可以加一些蜂蠟,。蠟的熔點(diǎn)應(yīng)與組織的硬度相適應(yīng)。包埋用過(guò)的石蠟可以反復(fù)使用。

②準(zhǔn)備包埋框:可以用金屬的,,也可以用硬紙摺疊,。

③點(diǎn)燃酒精燈,準(zhǔn)備好無(wú)齒尖鑷子,,需作標(biāo)記應(yīng)先寫好標(biāo)簽,。

④在金屬框中倒入硬蠟,然后用無(wú)齒鑷子取組織塊放入石蠟中,,置好方向,。可室溫下冷卻,。

⑤包埋框或紙盒內(nèi)的蠟逐漸凝結(jié),,若表面已凝結(jié)形成一層固體狀,即可放入冷水中,,加速其凝固,。

⑥待蠟塊*凝固以后,便可拆卸包埋框架,, 或拆開紙盒,,取出蠟塊。

(2)注意事項(xiàng)

①包埋時(shí)夾取組織的鑷子,,用酒精燈隨時(shí)燒熱,,以免石蠟?zāi)Y(jié)后粘附在鑷子上,造成蠟塊凝固不均勻,。

②包埋操作要迅速,,組織從浸蠟杯中取出置入包埋框中的時(shí)間應(yīng)盡量縮短。

③包埋后的蠟塊應(yīng)呈均質(zhì)半透明狀,,如果出現(xiàn)白色混濁狀,,一般出現(xiàn)在組織周圍或組織的底部,應(yīng)考慮這樣幾個(gè)方面的問(wèn)題:a. 脫水不*,。b.包埋蠟溫度低了,,組織進(jìn)行包埋時(shí),包埋框中的蠟已成凝結(jié)狀,。c.組織內(nèi)還殘留有較多的透明劑,,d.石蠟不純。

④包埋箱中的溫度必須保持恒定,。

⑤如包埋得不好,,可將蠟塊溶化,重新浸蠟和包埋,。

⑥較小的組織可在脫水透明時(shí)開始用伊紅染色

 

六,、石蠟切片制備

(一)石蠟切片前的準(zhǔn)備

1.切片刀。傳統(tǒng)的切片刀在使用之前,一定要在顯微鏡下檢查刀口的損傷程度,,然后進(jìn)行磨刀?,F(xiàn)在也可以使用一次性刀片,可省去磨刀,。

2.修整蠟塊:切去組織周圍過(guò)多的石蠟,,一般情況下在組織周圍留有約1~2mm的石蠟邊,兩邊必須平行,。

3.蠟塊固定:修整好的蠟塊先固定在事先準(zhǔn)備好的小方木塊或者金屬塊上,,固定方法是把蠟鏟先在酒精燈上加熱,再將蠟塊底部烙熔,,迅速烙粘在小方木塊或金屬塊底座上,。

4.載玻片擦洗干凈后,在其表面涂上粘附劑(蛋白甘油,、APES或多聚賴氨酸),,根據(jù)染色方法選擇不同的粘附劑。

5.準(zhǔn)備好毛筆,、鑷子,、染色架。

6.調(diào)好展片器內(nèi)水的溫度(45℃),,有時(shí)也可以加些酒精到水中,。

(二)石蠟切片

1.將切片刀裝在刀片機(jī)的刀架上并固定緊,固定蠟塊底座或蠟塊,,調(diào)整蠟塊與刀至合適位置,,刀刃與蠟塊表面呈5度角。

2.切片多使用輪轉(zhuǎn)式切片機(jī),,切片時(shí),,左手執(zhí)毛筆,右手轉(zhuǎn)切片機(jī)轉(zhuǎn)輪,,先修出組織塊,。

3.調(diào)整切片機(jī)上的切片厚度為4~7µm,,然后切片,。

4.切片可以是單張,也可以是連續(xù)切片形成蠟帶

5.展片和撈片:

(1)直接展片法:在載玻片上滴加幾滴蒸餾水,,然后把切片鋪在小滴上面,,用酒精燈在載玻片下面加熱,待*展平,,傾斜載玻片,,倒棄多余水分,同時(shí)擺正切片。

(2)溫水漂浮法:此法用展片機(jī)或者用恒溫水浴箱,,先使水溫保持在45~50℃,,用左手拿毛筆輕輕托起切片,用右手用眼科鑷子夾起切片的一角,,正面向上輕輕平鋪放置于展片器的水面上,,動(dòng)作要輕快,切好的石蠟切片漂浮在溫水中受熱后及在表面張力的作用會(huì)自然平整地展開,,必要時(shí)可用眼科鑷輕輕拔開,,然后撈片,并及時(shí)編號(hào),。

6.展好的切片在室溫下稍微干燥后,,放在40℃恒溫烤箱中,小片組織30分鐘即可,,大的需12~24小時(shí),,烤干備用。

(三)注意事項(xiàng)

1.切片刀刃傾斜過(guò)大或過(guò)小都不能正常進(jìn)行切片,。

2.修整蠟塊時(shí)要細(xì)心,,看清楚組織在蠟塊中的位置,以免將需要的組織修掉,。

3.連續(xù)轉(zhuǎn)動(dòng)切片機(jī)的轉(zhuǎn)輪時(shí),,速度一定要均勻,不能時(shí)快時(shí)慢,,以免切片厚薄不一,。

4.使用輪轉(zhuǎn)式切片機(jī)切片時(shí),是由下向上切,,為得到定然整的切片,,防止組織出現(xiàn)刀紋裂縫,應(yīng)將組織硬,、脆難切的部分放在上端,,如皮膚應(yīng)將表皮部分向上,腸胃等組織應(yīng)將漿膜面面朝上,。

5.用展片器展片時(shí),,水溫應(yīng)根據(jù)使用的石蠟熔點(diǎn)進(jìn)行了調(diào)整,一般低于石蠟熔點(diǎn)10~15℃,;撈片的時(shí)候動(dòng)作要輕,、稍快。動(dòng)作太大容易出現(xiàn)氣泡,。如果沒(méi)有展片器可以用溫水浴鍋來(lái)代替,。

6.單個(gè)切片要擺到載玻片的1/3與2/3交界處,;連續(xù)切片的粘片順序一般是從左到右,組織切片較小是,,可以并列粘貼2~3條蠟帶,。

7.烤片的溫度不宜過(guò)高;烤片的時(shí)間要合適,。腦組織要待稍微晾干一些后,,才能烤片,否則容易產(chǎn)生氣泡影響染色和觀察,。

 

七,、H-E染色

(一)步驟

1.脫蠟

二甲苯I             10分鐘

二甲苯II             5分鐘

2.水化

100%酒精I(xiàn)            5分鐘

100%酒精I(xiàn)I           5分鐘

95%酒精I(xiàn)             5分鐘

95%酒精I(xiàn)I            5分鐘

85%酒精              3分鐘

75%酒精              2分鐘

蒸餾水沖洗           1分鐘

3.染色

蘇木精染色           5分鐘

自來(lái)水洗

鹽酸酒精分化         15秒

自來(lái)水洗(鏡檢)

自來(lái)水洗             15分鐘

蒸餾水洗              2分鐘

75%酒精              2分鐘

85%酒精              2分鐘

0.5%伊紅染色         1分鐘

95%酒精I(xiàn)             5分鐘

95%酒精I(xiàn)I            5分鐘

100%酒精I(xiàn)            5分鐘

100%酒精I(xiàn)I           5分鐘

二甲苯I               5分鐘

二甲苯II              5分鐘

4.封片

中性樹膠封片

上述處理好的玻片,取中性樹膠滴入載玻片的組織上,,取蓋玻片從一端逐步蓋下去,,避免發(fā)生氣泡

(二)注意事項(xiàng)

1.染色之前一定要了解清楚所用的染色液的配制方法,不同的染色液染色后的處理是不一樣的,。

2.染色過(guò)程中所用的時(shí)間要根據(jù)染色時(shí)的室內(nèi)溫度,、染液的新鮮程度及實(shí)驗(yàn)室的實(shí)際情況等靈活掌握。在室溫高,、切片,、染色液又是新配制的,染色時(shí)間就要短,,反之時(shí)間就長(zhǎng),。

3.伊紅有水溶的和醇溶的,如果用的是水溶的,,應(yīng)該在脫水前進(jìn)行染色,,如果是醇溶的,應(yīng)使用與溶解伊紅等濃度的酒精開始脫水,。

4.在二甲苯脫蠟之前可以先在60℃烤箱內(nèi)0.5~1小時(shí),,這樣可以使切片粘附更牢固不易脫片,也有利于脫蠟,。

5.二甲苯在HE染色中有脫蠟,、透明的作用。二甲苯脫蠟的好壞主要取決于切片在二甲苯內(nèi)放置的時(shí)間和脫蠟時(shí)的溫度以及二甲苯的使用次數(shù),。染好的切片必須經(jīng)過(guò)透明,,有利于顯微鏡觀察,同時(shí)并為封片起到了橋梁作用,。

6.用梯度酒精脫水時(shí),,在低濃度酒精中時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng),到高濃度時(shí)逐步延長(zhǎng)脫水時(shí)間,。以免脫水不*,,影響二甲苯透明的效果。

7.在酸性分化液內(nèi)停留的時(shí)間不要過(guò)長(zhǎng),,分化不可過(guò)度,,避免使細(xì)胞核內(nèi)該染上色的結(jié)構(gòu)脫色。不需分化處理的蘇木精染色時(shí)要注意掌握染色時(shí)間,,以防止組織切片染色背景過(guò)深或細(xì)胞核,、胞質(zhì)染色不足。

 

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