人非小細胞肺癌裸鼠原位種植轉移模型的建立:(1)探討肺癌遠處轉移和阻斷其遠處轉移的研究,;(2)模擬晚期非小細胞肺癌轉移的自然發(fā)生過程,;(3)在活體動物的完整器官內評估瘤細胞播散和腫瘤的生長。
實驗方法原理
將表達GFP的質粒pRNAT-U6/Neo轉染人肺腺癌細胞A549,,G418篩選獲得穩(wěn)定表達GFP細胞,,對比轉染前后細胞的生長活性和成瘤性。將轉染后細胞原位種植裸鼠預定標準處死,。HE染色和免疫組化檢測轉移灶的位置和數(shù)目,。利用KODAK IS2000MM系統(tǒng)檢測腫瘤播散情況。
實驗材料
BALB c nu nu裸鼠腺癌細胞株A549
試劑,、試劑盒
小牛血清RPMI-1640培養(yǎng)液pRNAT-U6 Neo磷酸鈣即用型SP超敏 感免疫組化染色試劑盒DAB Kit 顯色試劑盒甲醛EDTA
儀器,、耗材
熒光顯微鏡光學顯微鏡
實驗步驟
一、實驗材料準備
1. BALB/c nu/nu裸鼠40只,,雄性,,4-6周齡,體重18-20 g,,無特定病原體(SPF)級飼養(yǎng),。
2. 肺腺癌細胞株A549,用含10%小牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)基(美國Gibcobrl公司),,5% CO237℃培養(yǎng),,常規(guī)傳代。
3. 質粒和篩選藥物質粒pRNAT-U6/Neo(美國Genscript公司),,攜帶Neomycin耐藥基因供篩選,,在CMV啟動子控制下編碼cGFP作為轉染標記物。G418(美國Promega公司)800 μg/ml初篩后200 μg/ml維持篩選,。
二,、細胞的轉染
1. 哺乳動物磷酸鈣轉染系統(tǒng)(美國Promega公司),按照操作指南將質粒pRNAT-U6/Neoo轉入A549細胞,轉染后24~48 h熒光顯微鏡下觀察轉染效率,。
2. 后培養(yǎng)液內加G418篩選獲得穩(wěn)定轉染,。
3. 利用平板克隆形成試驗測定細胞克隆形成率>10%后,有限稀釋法獲得表達GFP陽性細胞,。
4. 1月后收獲轉染細胞,,常規(guī)傳代培養(yǎng),培養(yǎng)液中加G418(200 μg/ml)維持篩選,。
5. 測定轉染后A549細胞增殖動力學指標,,對比轉染前后A549細胞生長曲線,檢測轉染后細胞的生長活性是否受轉染的影響,。
6. 待細胞增殖達一定數(shù)量后,,裸鼠皮下注射轉染前后細胞,記錄成瘤時間,,用公式V=1/2×長×寬 計算腫瘤體積,,對比轉染前后兩組裸鼠的瘤體大小以檢測成瘤性是否有差別。
三,、人肺腺癌A549裸鼠原位種植模型的建立
1. 取轉染后細胞,,用不含血清的RMPI 1640培養(yǎng)液沖洗2次并調整細胞最終濃度為5×106/0.2 ml備用。
2. 用0.5%的麻醉50 mg/kg)(中國醫(yī)藥上?;瘜W試劑公司)腹腔注射麻醉裸鼠,,用26號針頭吸取細胞懸液0.2 ml注射入裸鼠左側胸腔,注射過程中注意控制刺入針頭的深度,。
3. 整個操作過程在細胞收獲后半小時內完成,,嚴格遵循無菌原則。
4. 注射后在KODAK IS2000MM下確認原位種植成功,,注射部位為胸腔,。
5. 注射后繼續(xù)飼養(yǎng),隔天觀察一次并記錄體重,。
6. 當裸鼠出現(xiàn)精神萎靡,、呼吸短促、弓背并明顯消瘦,,體重較注射Et減輕20%時,,頸椎脫位術處死裸鼠。
7. 開胸觀察,,取出器官,,用10%甲醛固定保存。
四,、檢查項目
1. 轉染后細胞熒光顯微鏡成像轉染后24~48 h熒光顯微鏡下觀察,,確認轉染成功。單克隆化過程中鏡下觀察細胞克隆生長情況。
2. 活體GFP標記成像檢測應用KODAK IS2000MM進行活體熒光成像,,確認注射部位為胸腔,,后間斷應用以活體確認瘤細胞的遠處轉移。
3. 解剖學與組織學檢查處死的裸鼠均經(jīng)
詳細解剖學檢查,,取出器官,、固定包埋后,以4 tun厚度連續(xù)切片,,切片嚴格編號,,奇數(shù)號行HE染色,光鏡觀察,,以初步確定轉移灶。
4. 免疫組織化學染色
選擇肺臟,、肝臟和腦作為主要研究器官,,在HE染色確定轉移灶位置的基礎上,取相鄰偶數(shù)號碼的切片進行免疫組化檢測,,CEA鼠抗人單克隆抗體(ZM-0062),,LRP鼠抗人單克隆抗體(ZM.0335)工作液,即用型SP超敏感免疫組化染色試劑盒(sP-9000),、抗原修復液,、DAB Kit顯色試劑盒(zU一9032)均購自北京中杉金橋生物技術有限公司。
五,、統(tǒng)計學處理
細胞的生長活性和腫瘤體積x±s表示,,數(shù)值的比較采用方差分析。HE檢測結果和活體成像檢測結果的比較用x2檢驗,。采用SPSSl3.0軟件進行統(tǒng)計分析,。
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