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(1)復制方法 健康雄性大鼠,體重為230~260g,。采用改進的Feeney自由落體硬膜外撞擊方法,。損傷裝置由底板、固定支架,、垂直導桿,、下落和聚乙烯撞擊圓錐組成。撞擊圓錐頭端直徑為4mm,、高為2.5mm,。經腹腔注射水合氯醛(按350~400mg/kg體重的劑量)或戊丨巴丨比丨妥丨鈉(按50~60mg/kg體重的劑量)麻醉,。將其頭部固定于立體定向儀上,剪去頂部毛發(fā),,手術區(qū)域皮膚消毒,。沿中線左側切開頭皮,分離骨膜,,用牙科鉆于中線旁2mm,、緊挨冠狀縫后開一直徑5mm的圓形窗,硬膜保持完整,。用20g砝碼于10cm和30cm高處通過一金屬導桿墜落,,撞擊置于硬膜上的圓錐上致輕、中型損傷,,另用40g砝碼于25cm高處墜落致重型損傷,。輕、中,、重三型損傷的致傷沖擊力分別為200g·cm,、600g·cm和1000g·cm,用鋅汀粉封閉骨窗,,縫合頭皮,,置鼠籠喂養(yǎng),。
(2)檢測指標
1)腦含水量測定 動物斷頭處死后,,30s內取出大腦,用濾紙吸盡腦表面血丨漬后,,銳性分離左側頂葉皮質約100mg,,用電子分析天平稱濕重后,置于110℃恒溫干燥箱內烤干(24h),,稱干重,。用Elliot公式計算各部位腦含水量百分率:
腦含水量(%)=[(濕重-干重)/濕重]×比率
2)血腦屏障定量測定 動物于損傷前1h注射2%伊文斯藍(3ml/kg體重)。在取腦組織前,,為清除血液中染料,,可用生理鹽水經左心室灌注至右心室流出清亮液體為止。取損傷側皮質分別稱重,,加入二倍體積的二甲基甲酰胺,,50℃水浴中孵育72h,1500g離心,,離心10min,,取上清液。應用分光光度計在伊文斯藍大吸收光譜635mm處檢測吸光度,,從標準曲線上查得伊文斯藍含量,,結果以μg/g腦組織表示,。
3)病理學觀察 損傷后24h再次麻醉,經升主動脈快速灌注生理鹽水150ml,,繼之快速灌注冰冷的4%多聚甲醛200ml,,隨后再用其300ml在2h內慢速灌注,取腦組織浸入4%多聚甲醛內4℃后固定48h,,常規(guī)乙醇脫水,,石蠟包埋,行5μm冠狀切片,,作HE染色及尼氏小體染色,,光鏡下觀察。若采用透射電鏡觀察者,,灌注液為4%多聚甲醛和2%戊二醛/0.1MPB(pH7.4),,隨后浸入2%戊二醛/0.1MPB(pH7.4)內,4℃固定過夜,。常規(guī)脫水,,環(huán)氧樹脂包埋,超薄切片,,醋酸鉛鈾染色,,透射電鏡觀察。
(3)模型特點
1)腦含水量變化 輕型腦損傷傷后30min,,傷側腦皮質含水量開始升高,,3h顯著升高,24h達高峰,,為80%左右,。72h含水量有所降低,至損傷后168h腦含水量恢復正常,。中型腦損傷傷后15min,,傷側皮質含水量即已升高,30min顯著升高,,6h達高峰,,也為80%左右,持續(xù)至24h,。至168h含水量基本恢復正常,。重型腦損傷傷后其傷側皮質含水量于傷后15min明顯升高,傷后3~6h達高峰,,持續(xù)至72h,。傷后168h腦含水量仍高于正常對照值。
2)血腦屏障定量測定 腦損傷后血腦屏障通透性明顯增高,并隨損傷程度的加重而加重,。在損傷15min后,,損傷側皮質伊文斯藍含量就明顯增高,輕,、中型于6h達高峰,,重型者3h達高峰,24h開始下降,。
3)組織學和超微結構改變
①光鏡觀察 輕型損傷后24h光鏡觀察,,見神經細胞周圍出現(xiàn)水腫,尼氏小體染色變淺,,微血管外間隙擴大,;中型損傷后24h,神經細胞周圍水腫,,微血管外間隙增大更為明顯,;重型損傷后24h,皮質神經細胞周圍水腫明顯,,尼氏小體染色明顯變淺,,微血管內皮細胞腫脹,管腔狹窄更加明顯,。
②透射電鏡觀察 輕型損傷傷后24h,,傷側皮質神經細胞線粒體明顯腫脹,內質網輕度擴張,。神經細胞周圍神經氈腫脹,,微血管內皮細胞胞飲小泡增多、腫脹,、管腔狹窄,。膠質細胞出現(xiàn)水腫改變,,特征同神經細胞,,但改變較輕微;中型損傷后24h神經細胞線粒體及神經氈空泡樣變,,微血管內皮細胞腫脹及管腔狹窄明顯,;重型損傷傷后24h,絕大部分神經細胞及膠質細胞內可見到空泡樣變的少數(shù)線粒體及高度擴張的內質網,。細胞核染色質邊聚,,染色變淡,核膜皺縮,。神經氈空泡樣變,。微血管內皮細胞腫脹更加明顯,胞飲增多,管腔明顯狹窄,。
(4)比較醫(yī)學 此模型為自由落體腦損傷,,屬機械性損傷,類似臨床上的加速傷,。由于損傷部位局限,,所造成的局部腦損傷性質與臨床上見到的腦挫裂傷相似。該模型具有以下優(yōu)點:①損傷機制單一便于定性研究,。②方法簡單,,條件易于控制,采用自由落體打擊法,,可根據(jù)需要控制高度和重量,。③致傷程度較一致,重復性好,。④腦水腫性質與臨床上創(chuàng)傷性腦水腫相似,,定量準確。⑤實驗對象采用大鼠,,價廉,、抗病、便于大批定量研究和長時間觀察,。
此方法也可采用小鼠和新西蘭白兔,。小鼠:將小鼠固定在自由落體腦損傷裝置的底部平臺上,用直徑約4mm的撞頂在小鼠顱骨矢狀面左側2~4mm處,,取50g砝碼,,從15cm高處自由落下,通過撞造成閉合性腦外傷模型動物,。兔子:于頭頂部正中矢狀位切開至顱骨表面,,分離兩旁軟組織,微型鉆頭在右頂骨上四點鉆孔,。線鋸鋸開骨橋,,在右頂骨上形成直徑為1.5cm×1.5cm的方形骨窗。置入打擊墊于硬膜外,,用800g·cm的打擊能量使腦組織造成挫裂傷,。還納骨瓣,骨縫用醫(yī)用EC膠封閉,,縫合頭皮,。
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