大鼠吲哚胺2,3-雙加氧酶（IDO）ELISA試劑盒
大鼠吲哚胺2,3-雙加氧酶（IDO）ELISA試劑盒說明書
大鼠吲哚胺2,3-雙加氧酶（IDO）ELISA試劑盒僅供體外研究使用!
預期應用:ELISA法定量測定大鼠組織勻漿或其它相關(guān)生物液體中吲哚胺2,3-雙加氧酶（IDO）含量,。
實驗原理:用純化的抗體包被微孔板，制成固相載體,，往包被抗IDO抗體的微孔中依次加入標本或標準品、生物素化的抗IDO抗體、HRP標記的親和素,，經(jīng)過*洗滌后用底物TMB顯色。TMB在過氧化物酶的催化下轉(zhuǎn)化成藍色,，并在酸的作用下轉(zhuǎn)化成zui終的黃色,。顏色的深淺和樣品中的IDO呈正相關(guān)。用酶標儀在450nm波長下測定吸光度（OD值）,，計算樣品濃度,。
組成及試劑配制:
1. 酶聯(lián)板：一塊（96孔）
2. 標準品（凍干品）：2瓶，每瓶臨用前以樣品稀釋液稀釋至1ml,，蓋好后靜置10分鐘以上,，然后反復顛倒/搓動以助溶解，其濃度為1,000 IU/ml,，將其稀釋為100 IU/ml后,，再做系列倍比稀釋（注：不要直接在板中進行倍比稀釋）后，分別稀釋成100 IU/ml,，50 IU/ml,，25 IU/ml，12.5 IU/ml,，6.25 IU/ml,，3.12 IU/ml，1.56 IU/ml,，樣品稀釋液直接作為標準濃度0 IU/ml,，臨用前15分鐘內(nèi)配制。如配制50 IU/ml標準品：取0.5ml （不要少于0.5ml ） 100 IU/ml的上述標準品加入含有0.5ml樣品稀釋液的Eppendorf管中,，混勻即可,，其余濃度以此類推。
3. 樣品稀釋液：1×20ml,。
4. 檢測稀釋液A：1×10ml,。
5. 檢測稀釋液B：1×10ml。
6. 檢測溶液A：1×120μl（1:100）臨用前以檢測稀釋液A 1:100稀釋,，稀釋前根據(jù)預先計算好的每次實驗所需的總量配制（100μl/孔）,，實際配制時應多配制0.1-0.2ml。如10μl檢測溶液A加990μl檢測稀釋液A的比例配制,，輕輕混勻,，在使用前一小時內(nèi)配制。
7. 檢測溶液B：1×120μl/瓶（1:100）臨用前以檢測稀釋液B 1:100稀釋。稀釋方法同檢測溶液A,。
8. 底物溶液：1×10ml/瓶,。
9. 濃洗滌液：1×30ml/瓶，使用時每瓶用蒸餾水稀釋25倍,。
10. 終止液：1×10ml/瓶（2N H2SO4）,。
11. 覆膜：5張
12. 使用說明書：1份
自備物品:
1. 蒸餾水或去離子水，全新濾紙
2. 酶標儀（建議參考儀器使用說明提前預熱）
3. 微量加液器及吸頭,，EP管
標本的采集及保存:
1. 其它生物標本：請1000 x g離心20分鐘,，取上清即可檢測，或?qū)吮痉庞?20℃或-80℃保存,，但應避免反復凍融,。
2. 組織勻漿：將動物的組織標本先用PBS洗滌，去除多余血液,，勻漿化后放在20ml PBS中于-20℃放置過夜,，第二天，經(jīng)過二次反復凍融破膜,，將勻漿物5000x g離心5分鐘,，取上清即可檢測。
注：以上標本置4℃保存應小于1周,，-20℃或-80℃均應密封保存,，-20℃不應超過1個月，-80℃不應超過2個月,；標本溶血會影響zui后檢測結(jié)果,，因此溶血標本不宜進行此項檢測。
操作步驟:
實驗開始前,，各試劑均應平衡至室溫（試劑不能直接在37℃溶解）,；試劑或樣品稀釋時，均需混勻,，混勻時盡量避免起泡,。實驗前應預測樣品含量，如樣品濃度過高時,，應對樣品進行稀釋，以使稀釋后的樣品符合試劑盒的檢測范圍,，計算時再乘以相應的稀釋倍數(shù),。
1. 加樣：分別設空白孔、標準孔,、待測樣品孔,。空白孔加樣品稀釋液100μl，余孔分別加標準品或待測樣品100μl,，注意不要有氣泡,，加樣將樣品加于酶標板孔底部，盡量不觸及孔壁,，輕輕晃動混勻,，酶標板加上蓋或覆膜，37℃反應120分鐘,。為保證實驗結(jié)果有效性,，每次實驗請使用新的標準品溶液。
2. 棄去液體,，甩干,，不用洗滌。每孔加檢測溶液A工作液 100μl（在使用前一小時內(nèi)配制）,，酶標板加上覆膜, 37℃反應60分鐘,。
3. 溫育60分鐘后，棄去孔內(nèi)液體,，甩干,，洗板3次，每次浸泡1-2分鐘,，大約400μl/每孔,，甩干（也可輕拍將孔內(nèi)液體拍干）。
4. 每孔加檢測溶液B工作液（同檢測A工作液） 100μl,，酶標板加上覆膜37℃反應60分鐘,。
5. 溫育60分鐘后，棄去孔內(nèi)液體,，甩干,，洗板5次，每次浸泡1-2分鐘,，350μl/每孔,，甩干（也可輕拍將孔內(nèi)液體拍干）,。
6. 依序每孔加底物溶液90μl,，酶標板加上覆膜37℃避光顯色（30分鐘內(nèi)，此時肉眼可見標準品的前3-4孔有明顯的梯度蘭色,，后3-4孔梯度不明顯,，即可終止）。
7. 依序每孔加終止溶液50μl,，終止反應,，此時藍色立轉(zhuǎn)黃色,。終止液的加入順序應盡量與底物液的加入順序相同。為了保證實驗結(jié)果的準確性,，底物反應時間到后應盡快加入終止液,。
8. 用酶聯(lián)儀在450nm波長依序測量各孔的光密度（OD值）。 在加終止液后立即進行檢測,。
注：
1. 試劑準備：所有試劑都必須在使用前達到室溫,，使用后請立即按照說明書要求保存試劑。 實驗操作中請使用一次性的吸頭,，避免交叉污染,。
2. 加樣：加樣或加試劑時，請注意在吸取標本 / 標準品,，酶結(jié)合物或底物時,，*個孔與zui后一個孔加樣之間的時間間隔如果太大，將會導致不同的 “預孵育”時間,，從而明顯地影響到測量值的準確性及重復性,。一次加樣時間（包括標準品及所有樣品）控制在10分鐘內(nèi)，如標本數(shù)量多,，推薦使用多道移液器加樣,。
3. 孵育：為防止樣品蒸發(fā)，試驗時將反應板放于鋪有濕布的密閉盒內(nèi),，酶標板加上蓋或覆膜,，以避免液體蒸發(fā)；洗板后應盡快進行下步操作,，任何時侯都應避免酶標板處于干燥狀態(tài);同時應嚴格遵守給定的孵育時間和溫度,。
4. 洗滌：洗滌過程中反應孔中殘留的洗滌液應在濾紙上充分拍干，勿將濾紙直接放入反應孔中吸水,，同時要消除板底殘留的液體和手指印,，避免影響zui后的酶標儀讀數(shù)。
5. 試劑配制：Detection A及Detection B在使用前請手甩幾下或少時離心處理,，以使管壁或瓶蓋的液體沉積到管底,。標準品、檢測溶液A工作液,、檢測溶液B工作液請依據(jù)所需的量配置使用,，并使用相應的稀釋液配制，不能混淆,。請配置標準品及工作液,，盡量不要微量配置（如吸取檢測溶液A時，一次不要小于10μl）,，以避免由于不準確稀釋而造成的濃度誤差；請勿重復使用已稀釋過的標準品、檢測溶液A工作液或檢測溶液B工作液,。
6. 反應時間的控制：加入底物后請定時觀察反應孔的顏色變化（比如,，每隔10分鐘），如顏色較深,，請?zhí)崆凹尤虢K止液終止反應,，避免反應過強從而影響酶標儀光密度讀數(shù)。
7. 底物：底物請避光保存,，在儲存和溫育時避免強光直接照射,。
建議檢測樣品時均設雙孔測定，以保證檢測結(jié)果的準確性,。如標本中待測物質(zhì)含量過高,，請先稀釋后再測定，計算時請zui后乘以稀釋倍數(shù),。
洗板方法:
1. 自動洗板：如果有自動洗板機,，應在熟練使用后再用到正式實驗過程中。
2. 手工洗板方法：吸去（不可觸及板壁）或甩掉酶標板內(nèi)的液體,；在實驗臺上鋪墊幾層吸水紙,，酶標板朝下用力拍幾次；將推薦的洗滌緩沖液至少0.3ml注入孔內(nèi),，浸泡1-2分鐘,，根據(jù)需要，重復此過程數(shù)次,。
計算:以標準物的濃度為縱坐標（對數(shù)坐標）,，OD值為橫坐標（對數(shù)坐標），在對數(shù)坐標紙上繪出標準曲線,。推薦使用專業(yè)制作曲線軟件進行分析,，如curve expert 1.3，根據(jù)樣品的OD值由標準曲線查出相應的濃度,，再乘以稀釋倍數(shù),；或用標準物的濃度與OD值計算出標準曲線的回歸方程式，將樣品的OD值代入方程式,，計算出樣品濃度,，再乘以稀釋倍數(shù)，即為樣品的實際濃度,。
說明:
1. 在儲存及孵育過程中避免將試劑暴露在強光中,。所有試劑瓶蓋須蓋緊以防止蒸發(fā)和污染，試劑避免受到微生物的污染,，因為蛋白水解酶的干擾將導致出現(xiàn)錯誤的結(jié)果,。
2. 小心吸取試劑并嚴格遵守給定的孵育時間和溫度,。請注意在吸取標本 / 標準品，酶結(jié)合物或底物時,，*個孔與zui后一個孔加樣之間的時間間隔如果太大,，將會導致不同的 “預孵育”時間，從而明顯地影響到測量值的準確性及重復性,。而且,，洗滌不充分將影響試驗結(jié)果。
3. 試劑盒保存：部分試劑保存于-20℃,，部分試劑保存于2-8℃,，具體以標簽上的標示為準。
4. 濃洗滌液會有鹽析出,，稀釋時可在水浴中加溫助溶,。
5. 剛開啟的酶聯(lián)板孔中可能會含有少許水樣物質(zhì)，此為正?，F(xiàn)象,，不會對實驗結(jié)果造成任何影響。
6. 中,、英文說明書可能會有不一致之處,，請以英文說明書為準。
7. 所有的樣品都應管理好,，按照規(guī)定的程序處理樣品和檢測裝置,。
8. 有效期：6個月
9.本試劑盒可同時檢測重組或天然的大鼠IDO，且與其它相關(guān)蛋白無交叉反應,。
