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產(chǎn)品簡介：

Bradford 法測定蛋白質(zhì)濃度是最為常用的蛋白檢測方法之一,，在酸性條件下，考馬斯亮藍(lán)（Coomassie G-250）染料能與蛋白質(zhì)結(jié)合形成復(fù)合物,，其最大吸光值也由 465nm 轉(zhuǎn)移到 595nm,，通過顏色的強(qiáng)弱即可測定蛋白質(zhì)濃度的高低。本產(chǎn)品是基于 Bradford 法蛋白檢測原理開發(fā)的產(chǎn)品,。

產(chǎn)品特點(diǎn)：

1.快速,，10-20 個樣品只需要 10 分鐘即可完成測定,。

2.穩(wěn)定，加樣混勻后 2 分鐘既可測定,，1 小時內(nèi)吸光度變化不超過 10%,。

3.線性范圍在 50～1000µg/mL。

4.最小測量體積為 1-20µL,，最-低測量蛋白量為 0.5µg,。

5.即開即用，不需要單獨(dú)購買每個成分再配制,。

6.有常規(guī)和微量兩種檢測模式,。

7.不受絕大部分樣品中的化學(xué)物質(zhì)的影響。巰基乙醇的濃度可高達(dá) 1M,，二硫蘇糖醇的濃度可高達(dá) 5mM,。

8.受略高濃度的表面活性劑影響，各種蛋白質(zhì)與染料的結(jié)合效率可能有差異,。

9.本產(chǎn)品至少可以按常規(guī)法測 200 次,，按微量法測 1000 次。

10.Bradford 法蛋白定量試劑盒只能用于科研,。

產(chǎn)品參數(shù)：

產(chǎn)品規(guī)格

保存和運(yùn)輸

常溫運(yùn)輸及保存，有效期一年,。

自備試劑

超純水,、分光光度計、定性濾紙（直徑 12.5cm）

使用方法：

一,、制備溶液 A 工作液

1.將試劑盒提供的 Bradford 法蛋白定量溶液 A 與自備超純水按 1：4 比例充分混合即為溶液 A 工作液(例：4mL 溶液 A+16mL 超純水=20mL 溶液 A 工作液),。每次配制多少取決于檢測方法和測試體積，需要預(yù)先按下面手冊計算,。

2.用本試劑盒提供的濾紙過濾溶液 A 工作液,。過濾后的工作液室溫條件下可穩(wěn)

定使用 1-2 星期。注意：不同型號,、規(guī)格的濾紙,，具有不同的孔徑，導(dǎo)致可通過的分子各不相同,。請使用本公司指-定提供的濾紙,，否則會導(dǎo)致不同的測定結(jié)果。

二,、制備 BSA 標(biāo)準(zhǔn)品梯度稀釋液

3.測試開始之前,，應(yīng)首先制備 BSA 標(biāo)準(zhǔn)品梯度稀釋液。本試劑盒使用 BSA 作為標(biāo)準(zhǔn)品。用戶也可以使用自備的其他蛋白質(zhì)濃度測定用標(biāo)準(zhǔn)品,。每個濃度  具體需要多少體積取決于檢測方法和測試體積,，需要預(yù)先按下面的手冊計  算。沒有用完的 BSA 標(biāo)準(zhǔn)品梯度稀釋液可以放-20℃待下次使用,。

如果進(jìn)行常規(guī)檢測,，建議用溶解待測樣品的緩沖液將 BSA（2mg/mL）稀釋成下面的 8 個濃度：

0µg/mL、31.25µg/mL,、62.5µg/mL,、125µg/mL、250µg/mL,、 500µg/mL,、750µg/mL、1000µg/mL

如果進(jìn)行微量檢測,，建議用溶解待測樣品的緩沖液將 BSA（2mg/mL） 稀釋成下面的 6 個濃度：

0µg/mL,、2.5µg/mL、5µg/mL,、7.5µg/mL,、10µg/mL、20µg/mL,。

三,、常規(guī)檢測流程

常規(guī)檢測法在蛋白濃度30-1000µg/mL 范圍內(nèi)呈現(xiàn)R2=0.996 的直線線性回歸，可精確定量蛋白濃度在此范圍內(nèi)的蛋白樣品,。

4.在標(biāo)記的離心管中分別加入 N 個待測蛋白樣品和 8 個 BSA 梯度稀釋液,，然后再在每個離心管中按 1:50 的比例加入溶液 A 工作液。終體積多少取決于比色杯的體積,。

如果用 3mL 比色杯檢測,，則取 100µL 樣品+5mL 溶液 A 工作液； 如果用 1mL 比色杯檢測,，則取 40µL 樣品+2mL 溶液 A 工作液,； 如果用平底透明 96 孔板，則取 20µL 樣品+1mL 溶液 A 工作液,。

5.樣品與溶液 A 工作液混合后,，充分震蕩 30 秒混勻,。

6.室溫放置 5 分鐘,。

7.分光光度計檢測吸光度。波長設(shè)定=595nm,。用 96 孔板測定時,，應(yīng)確保沒有氣泡，否則氣泡會絕對增加吸光度的讀數(shù)。

8.將待測樣品的測定值逐一跟用 BSA 梯度稀釋液測定值繪制的標(biāo)準(zhǔn)曲線比較得到待測樣品的蛋白質(zhì)濃度,。

四,、微量檢測流程

此方法在蛋白濃度 1～20µg/mL 范圍內(nèi)呈現(xiàn) R2=0.992 的直線線性回歸，可精確定量蛋白濃度在此范圍內(nèi)的蛋白樣品,。

9.在標(biāo)記的離心管中分別加入 N 個待測蛋白樣品和 6 個 BSA 梯度稀釋液,，然后再在每個離心管中按 4:1 的比例（注意：不是 1:50）加入溶液 A 工作液。終體積多少取決于比色杯的體積,。

如果用 3mL 比色杯檢測,，則取 4mL 樣品+1mL 溶液 A 工作液； 如果用 1mL 比色杯檢測,，則取 2mL 樣品+0.5mL 溶液 A 工作液,；

10.如果用平底透明 96 孔板，則取 400µL 樣品+100µL 溶液 A 工作液,。樣品與溶液 A 工作液混合后,，充分震蕩 30 秒混勻。

11.室溫放置 5 分鐘,。

12.分光光度計檢測吸光度,。波長設(shè)定=595nm。用 96 孔板測定時,，應(yīng)確保沒有氣泡,，否則氣泡會絕對增加吸光度的讀數(shù)。

13.將待測樣品的測定值逐一跟用 BSA 梯度稀釋液測定值繪制的標(biāo)準(zhǔn)曲線比較得到待測樣品的蛋白質(zhì)濃度,。

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