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Fluo-4 鈣離子檢測試劑盒的關鍵特性與優(yōu)勢

Fluo-4 鈣離子檢測試劑盒是一種基于 Fluo-4 AM 鈣離子熒光探針的細胞內鈣離子濃度檢測工具,。該試劑盒適用于多種檢測方法，包括熒光顯微鏡成像,、熒光酶標儀和流式細胞儀定量檢測,，還支持細胞內鈣離子濃度的動態(tài)變化監(jiān)測。Fluo-4 是 Fluo-3 的衍生物,，將 Cl 離子替換為電子吸引力更強的 F 離子后，其最大激發(fā)波長較 Fluo-3 短約 10 nm,，更接近氬激光器波長,，使得 Fluo-4 在氬激光器激發(fā)下熒光強度更高，檢測靈敏度也相應提升,。

操作步驟詳解

細胞準備與處理

• 細胞培養(yǎng) ：選擇合適的細胞類型進行培養(yǎng),，確保細胞處于良好的生長狀態(tài)。將細胞培養(yǎng)在相應的培養(yǎng)基中,，定期更換培養(yǎng)液,，保證細胞的活力和正常代謝,。

• 細胞計數與濃度調整 ：使用細胞計數板或自動細胞計數儀精確計數細胞，調整細胞濃度至實驗所需范圍,，一般為

  $1 \times 10^5$

  -

  $5 \times 10^6$

  個 / mL,，以確保標記效果和后續(xù)檢測的準確性。

Fluo-4 AM 染料準備

• 染料配制 ：根據試劑盒說明書,，將 Fluo-4 AM 溶于適當的無血清培養(yǎng)基或緩沖液中,，配制成工作液，濃度一般為 1 - 10 μM,。根據細胞類型和實驗需求優(yōu)化濃度,，以避免濃度過高或過低對細胞造成影響或影響標記效果。

• 染料預熱 ：將配制好的 Fluo-4 AM 工作液置于 37℃水浴中預熱 5 - 10 分鐘,，以促進染料更好地穿透細胞膜,，提高標記效率。

細胞標記過程

• 細胞與染料混合 ：將預熱后的 Fluo-4 AM 工作液與細胞懸液按一定比例混合,，輕輕吹打混勻,，使細胞與染料充分接觸。通常 Fluo-4 AM 與細胞的混合比例為 1:1 或根據實驗需求調整,。

• 標記孵育 ：將混合好的細胞與染料置于 37℃,、5% CO? 的細胞培養(yǎng)箱中孵育 30 分鐘至 1 小時，使 Fluo-4 AM 充分進入細胞并被細胞內酯酶轉化為 Fluo-4,。孵育時間不宜過長,，以免細胞因缺氧等原因提前凋亡或影響后續(xù)實驗。

細胞洗滌與后續(xù)操作

• 洗滌去除未結合染料 ：孵育結束后,，用預冷的含有血清的培養(yǎng)基洗滌細胞 2 - 3 次,，以去除未結合的 Fluo-4 AM 染料。洗滌過程中動作要輕柔,，避免細胞聚集或損傷,。

• 細胞重懸與培養(yǎng) ：將洗滌后的細胞重懸于適量的培養(yǎng)基中，調整細胞濃度至合適范圍,，進行后續(xù)實驗,。

結果檢測與分析

熒光顯微鏡檢測

• 顯微鏡設置與觀察 ：在熒光顯微鏡下觀察細胞的熒光標記情況，使用激發(fā)波長為 490 - 510 nm 的藍光激發(fā)細胞,，觀察細胞內綠色熒光的分布和強度,。Fluo-4 標記的細胞在受到刺激導致鈣離子濃度升高時，熒光強度會顯著增強,。

• 動態(tài)變化監(jiān)測 ：通過熒光顯微鏡的時間序列成像功能,，可以實時監(jiān)測細胞內鈣離子濃度的動態(tài)變化。在細胞受到刺激后,，觀察熒光強度的變化情況,，記錄鈣離子濃度的瞬時變化,，分析細胞的信號傳導過程。

熒光酶標儀檢測

• 儀器設置與參數調整 ：使用熒光酶標儀檢測細胞內鈣離子濃度時,，設置激發(fā)波長為 490 - 510 nm,，發(fā)射波長為 520 - 540 nm。根據細胞熒光強度的不同,，可以定量分析細胞內鈣離子濃度的變化,。

• 數據采集與分析 ：將標記好的細胞懸液加入到 96 孔板中，每個孔加入適量的細胞懸液,。在熒光酶標儀上進行檢測,，采集熒光強度數據。通過分析熒光強度的變化,，可以計算細胞內鈣離子濃度的變化情況,，評估細胞的活性和功能狀態(tài)。

流式細胞儀檢測

• 儀器設置與參數調整 ：使用流式細胞儀檢測細胞內鈣離子濃度時,，設置激發(fā)波長為 488 nm,，檢測綠色熒光（FL1 通道）。根據細胞熒光強度的不同,，可以區(qū)分不同鈣離子濃度的細胞群體,。

• 數據采集與分析 ：將標記好的細胞懸液調整至適當濃度，一般為

  $1 \times 10^5$

  -

  $1 \times 10^6$

  個 / mL,，通過流式細胞儀進行檢測,。采集熒光強度數據，通過分析細胞群體的熒光強度分布,，可以評估細胞內鈣離子濃度的異質性和動態(tài)變化,。