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如何掌握感受態(tài)細(xì)胞的原理和制備方法

閱讀:468      發(fā)布時(shí)間:2025-2-26
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實(shí)驗(yàn)?zāi)康摹?/span>
    1.掌握用CaCl2法制備感受態(tài)細(xì)胞的原理和方法。
    2.學(xué)習(xí)和掌握質(zhì)粒DNA的轉(zhuǎn)化和重組質(zhì)粒的篩選方法,。
    【實(shí)驗(yàn)原理】
    質(zhì)粒在不同的細(xì)菌之間轉(zhuǎn)移是微生物世界中一種普遍的現(xiàn)象,,一個(gè)細(xì)菌品系通過(guò)吸收另一個(gè)細(xì)菌品系的質(zhì)粒DNA而發(fā)生了遺傳性狀的改變,這種現(xiàn)象叫做轉(zhuǎn)化,,獲得了外源DNA的細(xì)胞稱為轉(zhuǎn)化子,。
    在基因克隆技術(shù)中,,所謂轉(zhuǎn)化是指質(zhì)粒或重組質(zhì)粒被導(dǎo)入受體細(xì)胞,,表達(dá)相應(yīng)的選擇標(biāo)記基因,,并在一定的培養(yǎng)條件下,在選擇性培養(yǎng)基上長(zhǎng)出轉(zhuǎn)化子的過(guò)程,。
    質(zhì)粒必須通過(guò)轉(zhuǎn)化進(jìn)入細(xì)菌細(xì)胞內(nèi),,才能進(jìn)行擴(kuò)增和表達(dá),從而獲得大量的克隆基因,使我們能夠進(jìn)行進(jìn)一步的DNA操作,,如亞克隆等,;或者獲得其表達(dá)產(chǎn)物。轉(zhuǎn)化效率的高低與受體菌的生理狀態(tài)有關(guān),。細(xì)菌吸收外源DNA的能力最高時(shí)的狀態(tài)被稱為感受態(tài)細(xì)胞(competentcell),。
    有些種類的細(xì)菌在其生長(zhǎng)的任一階段都處于感受態(tài),而另一些細(xì)菌只有處于某個(gè)生長(zhǎng)時(shí)期時(shí)(一般為對(duì)數(shù)生長(zhǎng)早,、中期),,才會(huì)處于感受態(tài),如本實(shí)驗(yàn)所用的大腸桿菌。用一定濃度的CaCl2處理對(duì)數(shù)生長(zhǎng)早中期的細(xì)菌可以大大提高細(xì)菌吸收周圍環(huán)境中的DNA分子的能力,。
    對(duì)這種現(xiàn)象的一種解釋是CaCl2能使細(xì)菌細(xì)胞壁的通透性增強(qiáng),,從而提高轉(zhuǎn)化率。這種轉(zhuǎn)化方法稱為“化學(xué)法",。目前還可以使用電激的方法,,通過(guò)瞬間的高壓電流,在細(xì)胞上形成孔洞,,使外源DNA進(jìn)入胞內(nèi),,從而實(shí)現(xiàn)細(xì)胞的轉(zhuǎn)化。
    電激轉(zhuǎn)化的效率往往比化學(xué)法高出1到2個(gè)數(shù)量級(jí),,達(dá)到1X108轉(zhuǎn)化子/μgDNA,,甚至1X109轉(zhuǎn)化子/μgDNA,所以常用于文庫(kù)構(gòu)建時(shí)的轉(zhuǎn)化或遺傳篩選,。
    微生物轉(zhuǎn)化是基因工程的常用技術(shù),,大腸桿菌是基因工程中常用的受體菌,本實(shí)驗(yàn)即是用前面實(shí)驗(yàn)獲得的重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化大腸桿菌細(xì)胞,。
    【試劑與器材】
    <一>試劑
    1.LB液體培養(yǎng)基:參見附錄
    每組配200mL,其中100mL分裝于500mL三角瓶中,,另各取3mL裝于2只大試管中,其余裝于裝于500mL三角瓶中,,121℃高壓蒸汽滅菌20分鐘,。
    2.LB/Amp/IPTG/X-Gal平板(1):
    配1LLB液體培養(yǎng)基,加入20g瓊脂粉和1支攪拌棒,,同上高壓滅菌,,趁熱取出置攪拌器上冷卻,,待冷至55℃左右,加氨芐青霉素(Ampicillin)至終濃度100μg/ml(Amp儲(chǔ)存液一般為100mg/mL),倒平板,每皿倒約15mL,,室溫放置過(guò)夜至冷凝水揮發(fā)干凈,。使用前半小時(shí)在培養(yǎng)基表面加20μL50mg/mLX-gal和100μL0.1mol/LIPTG,涂勻,,待這兩種化合物滲入瓊脂后,,即可用于轉(zhuǎn)化菌的涂布。
    每組制備LB平板2個(gè),,LB/Amp平板5個(gè),,LB/Amp/IPTG/X-Gal平板6個(gè)。
    3.IPTG儲(chǔ)存液(0.1mol/L):1.2gIPTG加水至50ml,,過(guò)濾除菌,,4℃儲(chǔ)存。
    4.X-gal儲(chǔ)存液:50mg/ml溶于二甲基甲酰胺溶劑中,,過(guò)濾除菌,,4℃儲(chǔ)存。
    5.1mol/LCaCl2儲(chǔ)存液,,使用濃度為0.1mol/L,,CaCl2應(yīng)使用分析純,,配100mL,,高壓滅菌,全班用,。
    6.甘油(滅菌),,全班50mL,同上高壓滅菌,。
    7.酸洗無(wú)菌玻璃珠,,涂布平板用,用50mL三角瓶分裝,,同上高壓滅菌,,烘干備用。
    <二>器材
    1.37℃溫箱,、水浴鍋,、恒溫振蕩器等
    2.高速冷凍離心機(jī)
    3.微量移液器等
    <三>菌株
    大腸桿菌DH5α
    【操作方法】
    1、感受態(tài)細(xì)胞的制備(無(wú)菌操作)
    1)從新鮮培養(yǎng)的LB平板上挑單個(gè)DH5α大菌落接種到3mLLB培養(yǎng)液中(2),,37℃劇烈振蕩(210-240r/min)培養(yǎng)過(guò)夜(3),。
    2)取1mL過(guò)夜培養(yǎng)物,接種到含100mLLB培養(yǎng)液的500mL錐瓶中,37℃劇烈振蕩,,直至培養(yǎng)液中細(xì)菌濃度達(dá)到OD600為0.375-0.4(4)
    3)培養(yǎng)物轉(zhuǎn)入2只50mL離心管中,,冰上放置10分鐘,,4,000r/min,4℃離心15分鐘,棄上清(5),。
    4)將菌體懸浮于10~20mL預(yù)冷的0.1mol/LCaCl2溶液中,冰上放置20分鐘(6),。
    5)4,000rpm,4℃,離心10分鐘,棄上清,,然后將細(xì)菌輕輕懸浮在2ml0.1mol/LCaCl2溶液中(7),。若不立即進(jìn)行轉(zhuǎn)化實(shí)驗(yàn),則進(jìn)行第6步操作,,反之,,則進(jìn)入轉(zhuǎn)化操作。
    6)緩慢滴入甘油(滅菌)至終濃度為15%,輕柔混勻,,將細(xì)菌分裝成0.5ml/每管,,立即液氮冷凍,轉(zhuǎn)入-70℃冰箱儲(chǔ)存,,可在2個(gè)月內(nèi)使用(8),。
    2、感受態(tài)細(xì)胞的轉(zhuǎn)化
    1)設(shè)計(jì)好實(shí)驗(yàn)項(xiàng)目,,如正,、負(fù)對(duì)照(參考如下表格,按表格內(nèi)容操作),;
    2)從-80℃冰箱中取出分裝成0.5mL/每管的感受態(tài)細(xì)胞,置冰上5分鐘或緩慢流水淋至剛好解凍(10),,立即分裝到預(yù)冷的1.5mL離心管中,每管體積參見上表,,插入冰上待用,;
    3)對(duì)轉(zhuǎn)化管,加入連接產(chǎn)物DNA溶液,,輕輕混勻,;為保險(xiǎn)起見,也可先加入一半的連接產(chǎn)物DNA溶液,,輕輕混勻,,剩下的一半置-20℃冰箱保存;
    4)冰上放置30分鐘(11),;
    5)放入42℃水浴中,,熱激40秒(12);
    6)迅速插入冰上,,放置5分鐘,;
    7)對(duì)第1、2項(xiàng),加入500μLLB培養(yǎng)基,,其余加入250μLLB培養(yǎng)基,37℃震蕩培養(yǎng)1小時(shí)(13),;
    8)對(duì)第1項(xiàng),各取200μL直接用玻璃珠涂布于2個(gè)LB/Amp/IPTG/X-Gal平板上,;對(duì)第2項(xiàng),,分別取3、30和100μL細(xì)菌培養(yǎng)液,,各加無(wú)菌水至150μL(不超過(guò)200μL)涂LB/Amp/IPTG/X-Gal平板(此步驟的目的是計(jì)算轉(zhuǎn)化率),;對(duì)其余各項(xiàng),分別各取一半涂布于LB/Amp平板上,,余下的轉(zhuǎn)化液置4℃冰箱保存(14),。倒置平板,37℃培養(yǎng)12-14小時(shí),。一般來(lái)說(shuō),,含有活性半乳糖苷酶的細(xì)菌比無(wú)活性酶的細(xì)菌生長(zhǎng)慢,故過(guò)夜培養(yǎng)后可見到毫米大小的陽(yáng)性白色菌落而陰性的蘭色菌落只有針尖大?。?5),。
    9)挑取白色菌落進(jìn)行鑒定(見下一個(gè)實(shí)驗(yàn))。
    【注意事項(xiàng)與提示】
    (1)倒平板時(shí)應(yīng)避免培養(yǎng)基溫度過(guò)高,,若溫度過(guò)高,,則加入的氨芐青霉素會(huì)失效,且培養(yǎng)基凝固后表面及皿蓋會(huì)形成大量冷凝水,,易于造成污染及影響單菌落的形成,。若用手掌感受培養(yǎng)基覺得很燙但尚可忍受時(shí),培養(yǎng)基溫度即為55℃左右,。制備好的LB/Amp平板可于4℃冰箱儲(chǔ)存2個(gè)月,,時(shí)間過(guò)長(zhǎng)氨芐青霉素將會(huì)失效,。加了IPTG/X-Gal的LB/Amp平板最好現(xiàn)用,。
    (2)DH5α在平板上過(guò)夜生長(zhǎng)后,可置冰箱中保存一個(gè)月左右,;接種新鮮的菌落或菌液有利于細(xì)菌細(xì)胞的同步快速生長(zhǎng),,從而使細(xì)菌群體在達(dá)到一定的OD值后(0.375)大部分細(xì)胞都處于感受態(tài)。
    (3)DH5α的生長(zhǎng)需要氧氣,,劇烈振蕩的目的是提高培養(yǎng)基的溶氧量以利于細(xì)菌的生長(zhǎng)
    (4)達(dá)到細(xì)菌對(duì)數(shù)生長(zhǎng)早,、中期,需時(shí)約2.0~2.5小時(shí),,此步驟至為關(guān)鍵,,若超過(guò)此階段,則轉(zhuǎn)化效率急劇下降。
    (5)低溫操作的目的是使細(xì)胞不再生長(zhǎng),,保持其感受態(tài),。
    (6)此步驟的目的是洗滌細(xì)胞。
    (7)此時(shí)細(xì)胞較脆,,懸浮時(shí)動(dòng)作要輕,,可用移液槍輕輕吸打。
    (8)-70℃冰箱儲(chǔ)存的感受態(tài)細(xì)胞在6-8周后,,轉(zhuǎn)化率很快降低,。可用一已知標(biāo)準(zhǔn)及濃度的閉環(huán)質(zhì)粒如pUC18/19鑒定感受態(tài)細(xì)胞的轉(zhuǎn)化能力,。
    (9)實(shí)驗(yàn)中一定要設(shè)計(jì)正負(fù)對(duì)照,,如用無(wú)DNA轉(zhuǎn)化物的感受態(tài)細(xì)菌鋪板,若有菌落生長(zhǎng),,說(shuō)明其中抗生素濃度不夠或感受態(tài)細(xì)胞已被污染,。加樣時(shí)速度要快,但要有條不紊,,切勿加錯(cuò),!加完樣用槍尖稍攪勻。第1項(xiàng)中所加連接產(chǎn)物的量可根據(jù)連接反應(yīng)的終體積而定,,一般加一半或2/3,,其余置-20℃保存。
    (10)從-80℃冰箱中取出冷凍的指管后,,也可用雙手搓指管,,利用掌心的溫度解凍。解凍時(shí)間勿過(guò)長(zhǎng),。
    (11)至少30min,,可延長(zhǎng)至1h左右。
    (12)掌握時(shí)間,,過(guò)長(zhǎng)會(huì)致死細(xì)胞,。在許多實(shí)驗(yàn)方案中,熱激時(shí)間設(shè)為90至120秒,,目前已有實(shí)驗(yàn)證明如此長(zhǎng)的熱激時(shí)間是沒有必要的,,且會(huì)引起轉(zhuǎn)化效率的下降。熱激前加入相當(dāng)于轉(zhuǎn)化液體積1/10的DMSO可提高轉(zhuǎn)化效率10倍左右,,加入DMSO后請(qǐng)勿再劇烈振蕩,。
    (13)此步驟使得細(xì)菌恢復(fù)正常并讓?duì)?內(nèi)酰氨酶基因表達(dá)。
    (14)此步驟可在實(shí)驗(yàn)出現(xiàn)錯(cuò)誤后進(jìn)行補(bǔ)救,。
    (15)培養(yǎng)時(shí)間勿過(guò)長(zhǎng),,以免衛(wèi)星菌落的出現(xiàn)。很多因素都可以影響轉(zhuǎn)化的效率,特別需要注意的有兩點(diǎn),,一是制備感受態(tài)細(xì)胞時(shí)的OD值,,二是所用試劑要分析純以上,并用雙蒸水或超純水(如MiliQ)配制,。
    【實(shí)驗(yàn)安排】
    實(shí)驗(yàn)前兩天挑E.coli菌種在LB平板上劃線,,37℃培養(yǎng)過(guò)夜。實(shí)驗(yàn)前一天各組要將試劑準(zhǔn)備好,,包括培養(yǎng)基的消毒滅菌,。下午臨下課時(shí)從平板上挑新鮮的單菌落接種到3mL液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)過(guò)夜。轉(zhuǎn)化完畢,,次日一早觀察記錄結(jié)果,,并清理余下的菌種試劑等。
    【實(shí)驗(yàn)報(bào)告要求與思考題】
    1.制備感受態(tài)細(xì)胞和轉(zhuǎn)化時(shí),,應(yīng)特別注意哪些環(huán)節(jié),。
    2.轉(zhuǎn)化效率的計(jì)算:轉(zhuǎn)化效率是指每微克質(zhì)粒DNA轉(zhuǎn)化細(xì)胞產(chǎn)生的轉(zhuǎn)化子數(shù)目,請(qǐng)列表表示你的轉(zhuǎn)化結(jié)果并算出轉(zhuǎn)化率(列出計(jì)算公式),。你所做實(shí)驗(yàn)的轉(zhuǎn)化效率(正對(duì)照)是多少,?如果過(guò)低(如低于104cfu/μgDNA),請(qǐng)分析可能的原因,。需要注意的是,,連接產(chǎn)物的轉(zhuǎn)化效率是非常低的,為什么,?
    3.若實(shí)驗(yàn)出現(xiàn)不正常的結(jié)果,,請(qǐng)分析原因。
    附錄:大腸桿菌的高效轉(zhuǎn)化方法
    一,、試劑
    TB溶液:1.512gPIPES,,1.1025gCaCl2,9.31875gKCl,,溶于水,,以5NKOH調(diào)pH6.7,再加入5.44225gMnCl2,,定容至500ml,,0.22?m濾膜過(guò)濾滅菌,4℃保存,。
    SOB培養(yǎng)基:Tryptone20g(OXOID公司);Yeastextract5g(OXOID公司),;NaCl0.5g,,加800ml雙蒸水,加入250mmol/LKCl溶液10ml,用10mol/LNaOH調(diào)pH至7.0,,定容至1,000ml,,高壓滅菌,4℃保存,;使用前加入5ml經(jīng)高壓滅菌的2mol/LMgCl2溶液,。
    SOC培養(yǎng)基:含20mmol/L葡萄糖的SOB培養(yǎng)基,SOB培養(yǎng)基高壓滅菌后,,降溫至60℃或以下時(shí),,加入20ml經(jīng)過(guò)濾除菌的1mmol/L葡萄糖溶液,4℃保存,。
    DMSO
    二,、方法
    (一)感受態(tài)細(xì)胞的制備
    1.將E.coliDH5α,涂布于LB(A-)培養(yǎng)基上,,37℃過(guò)夜,。
    2.挑取2-3個(gè)直徑2-3mm的大菌落,接種到50mlSOB培養(yǎng)基中,。在250ml三角瓶中18℃,,200-250rpm振蕩培養(yǎng),直到OD=0.6,,約需要36-48hr,。
    3.將三角瓶冰浴10分鐘。
    4.轉(zhuǎn)移菌液到50ml離心管,。2,500g,,10min,4℃,。
    5.菌體用16ml冰預(yù)冷的TB溶液懸浮,,冰浴10min。
    6.2,500g,,10min,,4℃。
    7.菌體用4ml冰預(yù)冷的TB溶液懸浮,,加入280ulDMSO,。
    8.菌液于冰浴10分鐘后分裝到凍存管。每管200ul,。液氮冷卻,,保存于液氮中。大月0分鐘后,,轉(zhuǎn)移到-40℃冰箱保存,。
    (二)轉(zhuǎn)化
    1.將LB抗性平板,,SOC培養(yǎng)基,于37℃預(yù)熱,。
    2.室溫溶解感受態(tài)細(xì)胞,。
    3.取200uL菌液加入1.5mL離心管中,放于冰中,。
    4.加入1-5uL質(zhì)粒溶液,,用槍頭混勻,冰浴30min,。
    5.42℃熱激30秒,,冰浴。
    6.加入800uLSOC培養(yǎng)基,,37℃,,250r/min,1hr,。
    7.涂布LB抗性平板,,37℃過(guò)夜。

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