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PCR和凝膠電泳實(shí)驗(yàn)常見(jiàn)問(wèn)題及原因分析

閱讀:537      發(fā)布時(shí)間:2024-6-17
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PCR和凝膠電泳實(shí)驗(yàn)常見(jiàn)問(wèn)題及原因分析

為了排除某些因素對(duì)PCR結(jié)果的影響,PCR實(shí)驗(yàn)需要對(duì)照實(shí)驗(yàn),。PCR的陽(yáng)性對(duì)照是Marker,,推測(cè)PCR產(chǎn)物長(zhǎng)度,判斷PCR產(chǎn)物是否是目的

片段,。PCR的陰性對(duì)照是PCR的空白管,,除了模板不加之外,其成分與其他管一樣,,證明沒(méi)有其他模板污染,。




由于目前所用的PCR儀器自動(dòng)化程度較低,操作步驟較為繁雜,,人為因素大,,這就不可避免地會(huì)出現(xiàn)不同程度的誤差。輕微的污染

,、加量的誤差等均可導(dǎo)致結(jié)果較大的差異,,甚至陽(yáng)性和陰性出現(xiàn)兩種迥然不同的結(jié)果。在分析測(cè)定工作中系統(tǒng)誤差產(chǎn)生的原因主要有:

方法誤差,、儀器誤差,、人員誤差、環(huán)境誤差,、試劑誤差等,。本期我給大家搜集了一些平時(shí)經(jīng)常性遇到的一些問(wèn)題,希望對(duì)大家有所幫助,。




要分析遇到的問(wèn)題,,除了考慮必要的儀器外,需要明確PCR(聚合酶鏈反應(yīng))的基本要素:




引物:這些是特別設(shè)計(jì)的短DNA序列,,作為DNA合成的起始點(diǎn),,針對(duì)目標(biāo)DNA的兩端進(jìn)行互補(bǔ)配對(duì)。引物長(zhǎng)度一般在20到30個(gè)核苷酸之間,。




DNA聚合酶:以Taq聚合酶為代表的酶類(lèi),,負(fù)責(zé)新DNA鏈的合成。Taq聚合酶能夠在引物附著的地方開(kāi)始工作,通過(guò)逐一添加核苷酸來(lái)延長(zhǎng)

DNA鏈,。這種聚合酶能夠耐受PCR過(guò)程中必需的高溫條件,,這是因?yàn)樗鼇?lái)源于能在熱水環(huán)境中生存的微生物。




脫氧核苷酸三磷酸(dNTPs):這些分子提供了新DNA鏈合成的原料,,包括四種類(lèi)型:dATP,、dCTP、dGTP和dTTP,。在PCR過(guò)程中,,

Taq聚合酶利用這些dNTPs來(lái)逐步構(gòu)建新的DNA鏈。




目標(biāo)DNA提?。簩?shí)驗(yàn)開(kāi)始之前,,首先需要從樣本中提取出所要研究的DNA片段。




緩沖溶液:提供適宜的反應(yīng)環(huán)境,,確保PCR反應(yīng)能夠有效進(jìn)行,。




氯化鎂(MgCl2):作為T(mén)aq聚合酶活性的輔助因子,對(duì)于酶的功能至關(guān)重要,。




1.耗材選擇不當(dāng)對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果造成很大的影響


PCR耗材一般都是聚丙烯(PP)材質(zhì),,因其為生物學(xué)惰性材料,表面不易于粘附生物分子,,且有著良好的化學(xué)耐性,,及溫度耐受性

(可121℃高壓滅菌,也可以承受熱循環(huán)過(guò)程中的溫度變化),。這些材料通常會(huì)與試劑或者樣品直接接觸,,因而在生產(chǎn)制備過(guò)程中需要選用

高質(zhì)量的材料和良好的加工工藝。




PCR管的體積大多數(shù)都可以滿足PCR反應(yīng)要求,。但是在滿足實(shí)驗(yàn)要求的基礎(chǔ)上,,優(yōu)先推薦選用低容管。因?yàn)榈腿莘磻?yīng)管有著較小的上方空間,,

可提高熱傳導(dǎo)率并降低蒸發(fā),。而且在加樣時(shí),需要避免加樣過(guò)量或過(guò)少,。過(guò)量會(huì)導(dǎo)致熱傳導(dǎo)率下降,,溢出及交叉污染,而加樣過(guò)少可能會(huì)

造成樣品蒸發(fā)損失,。




2.假陰性(無(wú)擴(kuò)增產(chǎn)物)——現(xiàn)象:陽(yáng)性對(duì)照有條帶,,而樣品則無(wú)


原因:模板含有抑制物,含量低,;緩沖液(Buffer)對(duì)樣品不合適,;引物設(shè)計(jì)不當(dāng)或者發(fā)生降解;反應(yīng)條件:退火溫度太高,延伸時(shí)間太短,。




對(duì)策:純化模板或者使用試劑盒提取模板DNA或加大模板的用量;更換Buffer或調(diào)整濃度,;重新設(shè)計(jì)引物(避免鏈間二聚體和鏈內(nèi)二級(jí)結(jié)構(gòu))

或者換一管新引物,;降低退火溫度、延長(zhǎng)延伸時(shí)間,。




3.非特異性擴(kuò)增 ——條帶與預(yù)計(jì)的大小不一致或者非特異性擴(kuò)增帶


原因:引物的特異性不強(qiáng),、提取模板DNA中可能會(huì)有非靶基因性同源序列;模板或引物濃度過(guò)高,;酶量過(guò)多,;Mg2+濃度偏高;

退火溫度偏低,;循環(huán)次數(shù)過(guò)多,。




對(duì)策:重新設(shè)計(jì)引物;適當(dāng)降低模板或引物濃度,;適當(dāng)減少酶量,;降低鎂離子濃度;適當(dāng)提高退火溫度則減少與同源性非靶DNA的互補(bǔ)程度,;

減少循環(huán)次數(shù),。




4.拖尾——產(chǎn)物在凝膠上呈模糊不清狀態(tài)(彌散)


原因:模板不純;引物濃度不夠優(yōu)化,;Buffer不合適,;退火溫度偏低;.酶量過(guò)多,;dNTP,、Mg2+濃度偏高;循環(huán)次數(shù)過(guò)多,。




對(duì)策:純化模板,;對(duì)引物進(jìn)行梯度稀釋?zhuān)桓鼡QBuffer;適當(dāng)提高退火溫度,;適量用酶,;適當(dāng)降低dNTP和鎂離子的濃度;減少循環(huán)次數(shù),。




5.假陽(yáng)性——空白對(duì)照出現(xiàn)目的擴(kuò)增產(chǎn)物


原因:出現(xiàn)假陽(yáng)性最大的可能性是污染有非樣品性靶基因,,特別是進(jìn)行大量檢測(cè)或經(jīng)常性針對(duì)同一種靶基因的擴(kuò)增試驗(yàn)時(shí),如稍不慎重,,

就會(huì)導(dǎo)致樣品間的交叉污染及實(shí)驗(yàn)室的“隨帶性"污染,。出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果的另一種可能是樣品中存在有靶基因的同源序列,

這在基因組DNA中擴(kuò)增特異片段時(shí)應(yīng)特別注意,對(duì)于樣品間的交叉污染,,實(shí)驗(yàn)室的隨帶污染,、避免假陽(yáng)性關(guān)鍵在于提高警惕慎重操作。




對(duì)策:操作時(shí)應(yīng)小心輕柔,,防止將靶序列吸入加樣槍內(nèi)或?yàn)R出離心管外,;除酶及不能耐高溫的物質(zhì)外,所有試劑或器材均應(yīng)高壓消毒,。

所用離心管及加樣槍頭等均應(yīng)一次性使用,;各種試劑最好先進(jìn)行分裝,然后低溫貯存 ,。


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