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偏光技術(shù)在食品中的應用
調(diào)料九里香保衛(wèi)細胞壁與新鮮馬鈴薯塊莖新局部化淀粉粒的顯微偏振測定分析
偏振光顯微鏡（PLM）已經(jīng)成為地質(zhì)學和材料學領域的常用工具,，它通過使用典型的石英楔補償器,、云母1/4波片和Sénarmont補償，在礦物組成和復合材料（如纖維）結(jié)構(gòu)的測定方面有著舉足輕重的作用[1],。上述設備更復雜的組合方式,，或涉及利用定量偏振（借助Berek補償器或Br?ce-K?hler補償器）測定單個各向異性晶體或材料的雙折射?；蛘?，可以通過對參照Michel Lévy色表觀察到的消光帶和光譜進行比較，（事先推斷延遲點的樣品厚度）用紅I（λ）波片測定透射光波的延遲量（以闡明上述結(jié)構(gòu)的雙折射）[2],。
盡管如此,，目前PLM在生物結(jié)構(gòu)分析和亞細胞器研究應用上的相對重要性已經(jīng)下降。相反,，基于熒光顯微鏡技術(shù)的方法在生物科學領域的相對重要性得以提高,，因為人們充分認識到反射熒光技術(shù)（又稱超分辨率顯微鏡技術(shù)）在突破阿貝分辨率極限上的作用，而且標記物在熒光蛋白組學成像中廣泛應用,、使用方便,。在本篇短文（希望它短小精悍）中，我們嘗試評估顯微偏振測定法（傳統(tǒng)定量PLM的外推方法）在闡明與鑒別保衛(wèi)細胞壁超微結(jié)構(gòu)和淀粉粒形態(tài)（所述淀粉粒從新鮮馬鈴薯塊莖樣品中分離）方面的應用,。我們還希望,，此后顯微偏振測定法作為一種分析技術(shù)的優(yōu)勢將得到認識，并隨著生物科學和生物影像信息學領域的發(fā)展而進一步增強,?？梢韵胂螅@微偏振測定法與反射熒光技術(shù)結(jié)合,，將在這種背景下形成共振,，因為可以通過偏振鏡納米測量技術(shù)[自行設計但非?？扇〉脑坏鞍踪|(zhì)組學分析的概念，通過整合定量偏振光顯微鏡（qtPLM）和當今的（或未來的增強版）超分辨率光學納米顯微鏡技術(shù)平臺可能會實現(xiàn)]的解釋實現(xiàn)外推,。
材料與方法
以新局部化淀粉粒新鮮樣品（從馬鈴薯塊莖橫切面中分離）為本次評估的陽性對照,，源于其來源豐富、易于制備[對于透射明視野（BF）和PLM技術(shù)而言],、雙折射程度高且結(jié)構(gòu)充分表征的特點,。將其與新鮮制備的調(diào)料九里香（M. koenigii）下表皮（本文稱為遠端表皮）載玻片（通過反射PLM觀察）進行對比，并以市售骨骼肌原纖維載玻片（雙折射程度極低,，一般無法通過Berek和de Sénarmont補償進行解析）為qtPLM的陰性對照（本文不包括該載玻片的觀察結(jié)果）,。以HC PL Fluotar 50X/0.80 BD物鏡（徠卡產(chǎn)品代碼：566504）結(jié)合旋轉(zhuǎn)分析器和聚光鏡集成偏振片（用于投射偏振）或者對應的入射光偏振片和史密斯反射立方體（用于反射偏振），進行樣品的各向異性鑒別,。由于所分析的樣品大體具有高度雙折射特點,，因此利用傳統(tǒng)的Berek補償器進行偏振度定量分析和對象延遲量測定，不過樣品的對象延遲量（Γobj）以另外一種方法予以量化（與利用單色光測定Γobj的傳統(tǒng)方法相反）,。（但是）本短文中de Sénarmont和Br?ce-K?hler補償方法并未用于Γobj或雙折射率量化,。
結(jié)果
A |
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B |
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圖1：透射明視野偏振光下未使用補償器（A）及使用相應Berek補償器（B）獲得的馬鈴薯塊莖淀粉類圖像。淀粉粒存在明顯的雙折射現(xiàn)象,，其Γobj=168.12nm,。
A |
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B |
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圖2：A：反射明視野偏振光下未使用相應Berek補償器獲得的調(diào)料九里香保衛(wèi)細胞（具有內(nèi)陷氣孔）圖像。保衛(wèi)細胞纖維素細胞壁出現(xiàn)橙色和黃色多色性（分別以藍圈和綠圈標出）,，背景為綠黃色的細胞溶質(zhì)（Γobj=52.69nm）*注：有趣的是,，斯托克斯位移拉曼散射和磷光可能被視為解釋這種現(xiàn)象的替代假說，在后者中,，已經(jīng)發(fā)現(xiàn)纖維素具有自發(fā)熒光現(xiàn)象,，在λ=420～430nm處出現(xiàn)最大發(fā)射值[3]）。B：Berek補償PLM成像的保衛(wèi)細胞細胞壁立體圖,。在細胞壁外圍觀察到比中部切片更密的纖維素微纖維分布（比如,，是標藍圈的保衛(wèi)細胞對的57%/40%=1.425倍）。
討論
正如我們所料,，結(jié)果表明馬鈴薯淀粉粒和保衛(wèi)細胞纖維素細胞壁在雙折射上存在差異,。纖維素和直鏈淀粉（在其被分析的結(jié)構(gòu)中）均以雙折射型多糖大纖維的形式出現(xiàn)；各微纖維的空間排列負責使E光相對于O光移相的距離（Γobj）,，因此對所形成的E矢量場的旋度（?×E）產(chǎn)生影響,，如下面等式?和?所示（假設一個呈正弦曲線形式變化的常數(shù)B）。
假如從樣品發(fā)出的E光和O光振幅（A）相同,，其E場分別表示為y軸和z軸,。那么，明確具有雙折射特點的樣品[常數(shù)λ和外部補償（若有）為Γcomp]：
其中x表示偏振波在途中經(jīng)過樣品時移動的距離,，Γoc=Γobj+Γcomp,。
這樣一來,，（利用自行設計且與背景相關的（但具有廣義性）、用于在R3.5中確定雙折射率的公式）可以推導出?×E,，如下所示：
其中可以假定光子的量子空間跳躍分別從y1和z1到y(tǒng)2和z2（其中y1→y0+,，z1→z0+，y2→y0-,，z2→z0-,，Ay或Az=A）。
從上面的等式?可知,，在R3.5中?×E的圖是一個曲線超平面,，Γoc在?×E中沿著w軸引入相前平移。正如我們所料,，這在視覺上表現(xiàn)為被分析的透射光波（具有不同的Γoc）的交替放大/消光,；因此，隨后從?×E圖獲得的w截面可確定dim（?×E）且Γcomp已知的Γobj,。但是,，如果λ和Γoc可變（常見的例子是在qtPLM下觀察其結(jié)構(gòu)具有不同雙折射率的多色照明樣品，比如圖1和圖2分別顯示的淀粉粒和保衛(wèi)細胞纖維素細胞壁）,，那么我們可以推測,，對于λ1..n中確定的λa及Γcomp1..n中確定的Γcompa,，Γcompa處的dim（?×E）,，這樣便可解釋樣品中觀察到的多色性（負衰減的結(jié)果）。
此外,，通過單獨測定Γobj和量化圖2中觀察到的多向色分布,，或許可以推斷，被評估的保衛(wèi)細胞纖維素細胞壁中主要β（1→4）-糖苷鍵的相對順序與氣孔長軸相平行（與皮層微管一樣）,，表明這些細胞里纖維素合成酶GT結(jié)構(gòu)域的取向[4]在一定程度上與氣孔短軸相垂直,。這與使用顯微偏振測定法確定圖1中淀粉粒α（1→4）-糖苷鍵徑向取向形成鮮明對比（這里直鏈淀粉為主要成分）。
結(jié)論
文獻表明,，上個世紀五十年代至七十年代開展的大量研究中,，均涉及顯微偏振測定法在生物分析方面的應用[5],[6]。然而,，過去幾十年偏振光顯微鏡技術(shù)（作為促進生物學研究的要素）的相對重要性已經(jīng)減弱,，而熒光顯微鏡技術(shù)作為一種生物成像平臺正在興起，并隨著超分辨率光學顯微鏡技術(shù)和SIM等的發(fā)展而進一步發(fā)展,。但與需要特定熒光生物標記（如共聚焦激光掃描顯微鏡技術(shù)和目前的光學納米顯微鏡技術(shù)中所應用的）和/或掃描/光場技術(shù)的情形不一樣,，生物PLM為了解未解析分子結(jié)構(gòu)中可能存在的異常提供了一個途徑。不過,，創(chuàng)建含有關鍵熱點蛋白質(zhì)（如p53和PrPSc[7]等）新雙折射值的數(shù)據(jù)庫,，可能需要掌握大量的專業(yè)知識和進行大量的工作,。因此，在這方面,，透射和反射PLM的復興將相得益彰,，其中顯微偏振測定法可用作傳統(tǒng)qtPLM方法的外推法。
參考文章