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參考價 | 32000 |
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1L
1L | 32000元 | 999L可售 |
更新時間:2024-12-12 11:18:54瀏覽次數(shù):1136評價
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(N30210-1L)Ni NTA Beads 6FF(鎳填料)
存儲條件:4-30℃
Buffer 可使用下列推薦Buffer,,也可根據(jù)自己的使用習(xí)慣配置不同的緩沖液體系,,基本原理就是低咪唑上樣,高咪唑洗脫,,或者高pH上樣,,低pH洗脫。Buffer 在使用前最好用0.22μm 或者0.45μm濾膜過濾除菌,。因為Ni NTABeads FF可以用于可溶蛋白和包涵體蛋白的純化,,兩種方法所需Buffer 不同,具體配置方法見下表:
(N30210-1L)Ni NTA Beads 6FF(鎳填料)可溶性組an酸標(biāo)簽蛋白純化所需緩沖液及配方:
名稱 | 體積 | 配方 |
Lysis Buffer | 1L | 8 M Urea (480.50 g urea) 100 mM NaH2PO4 (15.60 g NaH2PO4·2H2O) 100 mM Tris·HCl (15.76 g Tris·HCl) 使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 8.0,, 使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過濾除菌,。 |
Wash Buffer | 1L | 8 M Urea (480.50 g urea ) 100 mM NaH2PO4 (15.60 g NaH2PO4·2H2O) 100 mM Tris·HCl (15.76 g Tris·HCl) 使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 6.3, 使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過濾除菌,。 |
Elution Buffer | 1L | 8 M Urea(480.50 g urea) 100 mM NaH2PO4(15.60 g NaH2PO4·2H2O) 100 mM Tris·Cl(15.76 g Tris·Cl) 使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 4.5,, 使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過濾除菌。 |
包涵體組an酸標(biāo)簽蛋白純化所需緩沖液及配方:
名稱 | 體積 | 配方 |
Lysis Buffer | 1L | 8 M Urea (480.50 g urea) 100 mM NaH2PO4 (15.60 g NaH2PO4·2H2O) 100 mM Tris·HCl (15.76 g Tris·HCl) 使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 8.0,, 使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過濾除菌,。 |
Wash Buffer | 1L | 8 M Urea (480.50 g urea ) 100 mM NaH2PO4 (15.60 g NaH2PO4·2H2O) 100 mM Tris·HCl (15.76 g Tris·HCl) 使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 6.3, 使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過濾除菌,。 |
Elution Buffer | 1L | 8 M Urea(480.50 g urea) 100 mM NaH2PO4(15.60 g NaH2PO4·2H2O) 100 mM Tris·Cl(15.76 g Tris·Cl) 使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 4.5,, 使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過濾除菌,。 |
1、挑取單菌落到LB 培養(yǎng)基中,,根據(jù)載體使用說明加入相應(yīng)濃度的誘導(dǎo)劑誘導(dǎo)相應(yīng)的時間,。
2、表達結(jié)束后,,將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移到離心杯中,,7,000rpm,離心15min 收集菌體,,然后加入1/10 體積的 Lysis Buffer 和 PMSF,,PMSF在破碎前加入,最終濃度為1mM,。加入溶jun酶(工作濃度為0.2-0.4mg/ml,,如果表達的宿主細(xì)胞內(nèi)含pLysS 或pLysE,可以不加溶jun酶),,(同時也可加入其他蛋白酶抑制劑,,但不能影響目的蛋白與樹脂的結(jié)合)。
3,、將菌體沉淀懸浮起來,,(如果菌液濃度高,也可考慮加入10μg/ml RNase A 和5μg/ml DNase I),,混勻,,放置于冰上,然后冰上超聲破碎細(xì)胞,,至菌液基本保持澄清,。
4,、將澄清的破碎液轉(zhuǎn)移至離心管中,,10,000rpm 下,4 度離心 20-30 分鐘,。取上清,,置于冰上備用或-20度保存。
1,、將細(xì)胞培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移至離心杯,5000rpm 下,,離心10min,,收集菌體得上清,如上清中不含EDTA,、組an酸和還原劑等物質(zhì),,即可直接加入柱子使用,;如含有EDTA、組an酸和還原劑等物質(zhì),,需用1×PBS 4℃下透析才能加入柱子,。
2、對于大量體積的上清,,需加入硫酸氨沉淀濃縮后,,蛋白還需用1XPBS 4℃透析后才能加入柱子。
1,、將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移到離心杯中,,7,000rpm,離心15min 收集菌體,,去掉上清,。
2、按照菌體:Lysis buffer=1:10(W/V)將菌體懸浮起來,,混勻,,冰浴超聲破碎。
3,、將破碎液轉(zhuǎn)移至離心管中,,10,000rpm下,4 度離心20-30 分鐘,。去掉上清,,步驟2)和 3)可以重復(fù)一次。
4,、按照菌體:Lysis buffer(含8M 尿素)=1:10(W/V)將包涵體懸浮起來,。
5、變性條件下進行His 標(biāo)簽蛋白純化,,具體緩沖液配方見表4,。
Ni NTA Beads 6FF 被廣泛應(yīng)用于工業(yè)純化,因此,,涉及到各種中壓色譜層析柱的填裝,,下面介紹使用 Ni NTA Beads 6FF 填裝層析柱的方法。
1,、用去離子水沖洗層析柱底篩板與接頭,,確保柱底篩板上無氣泡,關(guān)閉柱底出口,,并在柱底部留出1-2cm 的去離子水,。
2、將樹脂懸浮起來,小心的將漿液連續(xù)地倒入層析柱中,。用玻璃棒沿著柱壁倒入漿液可減少氣泡的產(chǎn)生,。
3、如果使用儲液器,,應(yīng)立即在層析柱和儲液器中加滿水,,將進樣分配器放置于漿液表面,連接至泵上,,避免在分配器或進樣管中產(chǎn)生氣泡,。
4、打開層析柱底部出口,,開起泵,,使其在設(shè)定的流速下進行。最初應(yīng)讓緩沖液緩慢流過層析柱,,然后緩慢增加至最終流速,,這樣可避免液壓對所形成柱床的沖擊,也可以避免柱床形成的不均勻,。如果達不到推薦的壓力或流速,,可以用你所使用泵的最大流速,這樣也可以得到一個很好的裝填效果,。(注意:在隨后的色譜程序中,,不要超過最大裝柱流速的75%)當(dāng)柱床高度穩(wěn)定后,在最后的裝柱流速下至少再上3倍柱床體積的去離子水,。標(biāo)上柱床高度,。
5、關(guān)閉泵,,關(guān)閉層析柱出口,。
6、如果使用儲液器,,去除儲液器,,將分配器至于層析柱中。
7,、將分配器推向柱子至標(biāo)記的柱床高度處,。允許裝柱液進入分配器,鎖緊分配器接頭,。
8、將裝填好的層析柱連接至泵或色譜系統(tǒng)中,,開始平衡,。如果需要可以重新調(diào)整分配器。
Ni NTA Beads 6FF裝填好后,可以用各種常規(guī)的中壓色譜系統(tǒng),,以ÄKTA 儀器使用為例介紹其使用方法,。
1、將泵管道中注滿去離子水,。去掉上塞子,,將層析柱連接至色譜系統(tǒng)中,打開下出口,,將預(yù)裝柱接到色譜系統(tǒng)中,,并旋緊。
2,、用3-5 倍柱體積的去離子水沖洗出儲存緩沖液,。
3、使用至少5 倍柱床體積的Lysis Buffer 平衡色譜柱,。
4,、利用泵或注射器上樣。注:樣品的粘度增加使得即使上樣體積很少,,也會導(dǎo)致層析柱很大的反壓,。上樣量不要超過柱子的結(jié)合能力。大量的樣品體積也可能造成很大的反壓,,使得進樣器更難使用,。
5、用Wash Buffer 沖洗柱子,,直到紫外吸收達到一個穩(wěn)定的基線(一般至少10-15個柱體積),。注:在樣品和結(jié)合緩沖液中加入咪唑可以提高樣品純度。
6,、用Elution Buffer 采用一步法或線性梯度洗脫,。一步洗脫中,通常 5 倍柱體積洗脫液就足夠了,??梢杂靡粋€小的梯度,例如 20 倍柱體積或更多,,來分離不同結(jié)合強度的蛋白質(zhì),。
將使用純化產(chǎn)品得到的樣品(包括流出組分、洗雜組分和洗脫組分)以及原始樣品使用SDS-PAGE 檢測純化效果,。
當(dāng)填料使用過程中發(fā)現(xiàn)反壓過高或者填料上面出現(xiàn)明顯的污染時,需要進行在位清洗操作(Cleaning-in-Place,,CIP),。在位清洗前,,先把 Ni2+脫掉(參見3.填料再生),清洗結(jié)束后,,將填料保存在 20%乙醇中,,后者重新掛鎳再保存在20%乙醇中。建議按照下面操作去除填料上殘留的污染物,,如沉淀蛋白,、疏水蛋白和脂蛋白等。
通過使用30%異丙醇清洗 5-10 個柱體積,,接觸時間為15-20分鐘可以去除此類污染物。然后,,再使用 10 倍柱體積的去離子水清洗,。也可以選擇使用含有去污劑的酸性或堿性溶液, 清洗填料 2 倍柱體積,。例如,,含有 0.1–0.5% 非離子去污劑的 0.1 M 醋酸溶液,接觸時間為 1–2 小時,。去污劑處理后,,需要使用70%的乙醇清洗 5 個柱體積,以徹di去除去污劑,。最后使用10倍柱體積的去離子水清洗,。
使用1.5M NaCl 溶液接觸時間為10-15分鐘清洗。然后再使用去離子水清洗10個柱體積,。
組an酸標(biāo)簽蛋白親和純化填料所帶的鎳離子不需要經(jīng)常螯合去除和重新掛鎳離子。當(dāng)填料使用過程中發(fā)現(xiàn)反壓過高,,填料上面出現(xiàn)明顯的污染,,或者填料載量明顯變低時,需要進行對填料進行鎳離子剝離和重新掛鎳離子,,也就是填料再生,。將填料裝填在合適的層析柱內(nèi),按照下面操作流程進行鎳離子剝離和重新掛鎳離子,。
3.1使用0.2 M 醋酸溶液(含6 M GuHCl)清洗 2 倍柱體積,;
3.2使用去離子水清洗5 倍柱體積;
3.3使用2% SDS 清洗 3 倍柱體積,;
3.4使用去離子水清洗5 倍柱體積,;
3.5使用乙醇清洗5 倍柱體積;
3.6使用去離子水清洗5 倍柱體積,;
3.7使用100 mM EDTA (pH 8.0)清洗 5 倍柱體積,;
3.8使用去離子水清洗5 倍柱體積,;
3.9使用100 mM NiSO4 清洗 5 倍柱體積,;
3.10使用去離子水清洗10 倍柱體積,;
填料再生后,可以立即使用,,也可以保存在20%的乙醇中,,置于 4°C 保存。
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