1. 脂質體轉染法操作（以 6 孔板為例）

稀釋核酸和脂質體：分別取適量核酸和脂質體轉染試劑,，用 Opti - MEM 培養(yǎng)基稀釋,。一般而言，DNA 用量在 0.5 - 2μg,，脂質體用量在 1 - 4μL,，具體比例依試劑說明書和預實驗優(yōu)化。例如,，某實驗中,，將 4μg 質粒用 200μl Opti - MEM 稀釋為 A 液，10μl lipo2000 用 200μl Opti - MEM 稀釋為 B 液,。

混合孵育：將稀釋后的核酸和脂質體輕輕混合,，室溫孵育 15 - 20 分鐘，促使核酸和脂質體形成復合物,。如上述例子,，將 B 液加入 A 液中，輕輕混勻,，室溫靜置 20 分鐘,。

更換培養(yǎng)基：吸除培養(yǎng)細胞的原培養(yǎng)基，用無血清培養(yǎng)基或 Opti - MEM 培養(yǎng)基輕柔洗滌細胞 1 - 2 次,，然后添加適量無血清培養(yǎng)基,。

加入轉染復合物：將孵育好的核酸 - 脂質體復合物緩慢加入培養(yǎng)孔，輕輕晃動培養(yǎng)板,，使復合物均勻分布于細胞表面,。

培養(yǎng)：將細胞置于 37℃、5% CO?培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng),，4 - 6 小時后更換為（血清）細胞培養(yǎng)基,，維持細胞正常生長。

2. 電穿孔轉染法操作

細胞準備：收集對數(shù)生長期細胞,，用 PBS 洗滌后,，使用電轉緩沖液重懸細胞，調整細胞密度至合適范圍,。

電轉參數(shù)設置：根據細胞類型和轉染核酸類型,，設置適宜的電脈沖參數(shù)，如電場強度,、脈沖時間,、脈沖次數(shù)等,。例如，某些細胞可能需要 1000V/cm 電場強度,，20ms 脈沖時間,，1 次脈沖。

轉染操作：將核酸與細胞懸液混合,，轉移至電轉杯中,，進行電穿孔操作。電脈沖在細胞膜上形成電勢差,，誘導產生暫時的小孔,，使核酸進入細胞。

細胞恢復：電轉后,，將細胞迅速轉移至含（血清）細胞培養(yǎng)基的培養(yǎng)器皿中,，置于 37℃、5% CO?培養(yǎng)箱培養(yǎng),，使細胞恢復生長,。

2. 檢測轉染效率

報告基因檢測：若使用帶有報告基因（如綠色熒光蛋白 GFP）的質粒進行轉染,，可在轉染后 24 - 48 小時,，通過熒光顯微鏡觀察報告基因表達情況，統(tǒng)計熒光陽性細胞比例,，評估轉染效率,。

分子生物學檢測：采用 qPCR、Western blot 等技術,，檢測目的基因 mRNA 或蛋白表達水平變化,，判斷轉染后基因的表達情況。例如,，通過 qPCR 檢測轉染前后目的基因 mRNA 表達量，計算相對表達倍數(shù),。


ZETA LIFE 解決方案

ZETA LIFE 產品優(yōu)勢

Zeta Life 公司專注于細胞培養(yǎng)產品研發(fā)生產,，其轉染試劑等產品具備顯著優(yōu)勢。產品在安全性上表現(xiàn)優(yōu)秀,，生產過程遵循嚴格標準,，最大限度降低對細胞的毒性。生產流程自動化且經過驗證,，符合 GMP 標準,，保障了產品一致性,，不同批次間產品質量穩(wěn)定可靠。在性能方面,，針對多種難轉染細胞系,，如 RAW264.7 細胞，能有效提高轉染效率,。

• RAW264.7 細胞轉染方案

• 質粒 DNA 準備：確保質粒 DNA 濃度為 700ng/ul,，溶解于無菌雙蒸水或超純水，且無內毒素,?？墒褂?QIAGEN 試劑盒去除內毒素。

• 細胞接種與轉染時機：先將細胞接種到細胞培養(yǎng)板,，待細胞匯合度達 70% 左右時進行轉染,。

• 復合物制備：將質粒 DNA 與 Zeta Life 公司 Advanced DNA RNA 轉染試劑（貨號 AD600150）按照 1:1（如 12ug:12ul）比例直接混合，用移液器吹吸 10 - 15 次混勻,，室溫靜止 10 - 15 分鐘,。

• 轉染操作：將復合物加入含（血清）細胞培養(yǎng)基的細胞培養(yǎng)板，輕輕混勻,，放入培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng),。不建議將復合物加入無血清培養(yǎng)基。

• 后續(xù)培養(yǎng)與檢測：轉染 24 小時后對細胞正常換液,，質粒 DNA 轉染 48 小時后通過熒光檢測轉染效率,。

• 其他細胞系轉染參考：對于不同細胞系，Zeta Life 產品可依據細胞特性,，在核酸與轉染試劑比例,、細胞接種密度、轉染時間等方面進行優(yōu)化調整,。例如,，對于某些生長緩慢的原代細胞，可適當降低細胞接種密度,，延長轉染時間,，同時調整核酸與轉染試劑比例，以達到最佳轉染效果,。在進行正式實驗前,，建議開展預實驗，摸索適合特定細胞系的轉染條件,。