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當前位置:深圳市安培生物科技有限公司>>技術文章>>大腸桿菌質(zhì)粒DNA的提取
實驗方法原理 | 堿法提取主要是利用共價閉合環(huán)狀質(zhì)粒與線性染色質(zhì)在拓撲學上的差異來分離它們,。在堿性pH環(huán)境,DNA變性,,當恢復中性并在高鹽離子濃度時,絕大多數(shù)質(zhì)粒DNA可以準確復性,,留在上清中,;而線性染色體DNA不能準確復性,相互交聯(lián)纏繞附著在細胞壁碎片上與蛋白質(zhì)發(fā)生沉淀,。離心后獲得大量質(zhì)粒的上清液,,利用親水性有機溶劑(乙醇、異丙醇,、PEG8000)使質(zhì)粒DNA脫水,,離心后收集。 |
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實驗材料 | 含質(zhì)粒的大腸桿菌 |
試劑,、試劑盒 | 葡萄糖 EDTA Tris-HCl NaOH SDS KAc 異戊醇 |
儀器,、耗材 | 臺式高速離心機 恒溫振蕩搖床 高壓滅菌鍋 振蕩器 微量移液器 1.5ml離心管 |
實驗步驟 | 一、試劑配制 1. LB液體培養(yǎng)基,。 2. 100 mg/ml氨芐西林儲存液:稱取25g的氨芐西林粉末,,加去離子水至250ml,,全部溶解后過濾、分裝,,20℃保存,。 3. 溶液Ⅰ:50 mmol/L葡萄糖溶液,25 mmoi/L Tris-鹽酸(pH 8.0),,10 mmol/L EDTA(pH 8 0),。1 mol/L Tris-鹽酸(pH 8.0)12.5ml,0 5 mol/L EDTA(pH8.0)10ml,,葡萄糖4.730g,;加去離子水至500ml,高壓滅菌,,貯存于4℃,。 4. 溶液Ⅱ:0.2moI/L 氫氧化鈉溶液,1% SDS(10 N 氫氧化鈉20 μl,,10%SDS 100μl,,加去離子水至1ml),使用前臨時配制,。 5. 溶液Ⅲ(pH 4.8):5 mol/L 醋酸鉀300ml,,冰醋酸57.5ml,加去離子水至500ml,,4℃保存,。 6. 苯酚:氯仿(1:1,V/V)(酚和氯仿均有很強的腐蝕性操作時應戴手套?。?。 7. 無水乙醇。 8. 70%乙醇,。 9. RNase A(20 mg/ml)溶液:100 mg RNA酶干粉加5ml超純水溶解,,然后在沸水煮 15min,分裝,,20℃保存,。 10. TE緩沖液:10 mmol/L Tris-鹽酸(pH8.0),1 mmol/L EDTA(pH8.O),。 二,、實驗方法 1. 挑取LB固體培養(yǎng)基上生長的單菌落,接種于2.0ml LB(含Amp 100 μg/ml)液體培養(yǎng) 基中,。37℃,、250 r/min振蕩培養(yǎng)過夜(約12——14h)。 2. 取1.5ml細菌培養(yǎng)液倒入離心管中,,4℃,、6000轉(zhuǎn)離心30s,,棄上清,將離心管倒置于紙巾上,,去除殘留液體,。 3. 菌體沉淀重懸于100μl用冰預冷的溶液Ⅰ中,劇烈振蕩,,使菌體分散混勻,,室溫下放置5 min。 4. 加入200μl新配制的溶液Ⅱ,,蓋緊管口,快速溫和顛倒離心管5——10次,,以混勻內(nèi)容 物,,冰浴5min。 5. 加入150μl預冷的溶液Ⅲ,,蓋緊管口,,溫和顛倒5——10次混勻,冰浴3——5min,,4℃,、6000轉(zhuǎn)離心5min。轉(zhuǎn)移上清到一個新的1.5ml Ep管中,。 6. 加入等體積的酚一氯仿抽提劑,,振蕩混勻,4℃,、6000轉(zhuǎn),,離心2 rain。 7. 小心移出上清于1.5ml Ep管中,;加入2倍體積用冰預冷的無水乙醇于室溫沉淀雙鏈 DNA,,混勻,室溫放置2--5rain,,4℃,、6000轉(zhuǎn)離心5min。 8. 棄上清,,將離心管倒置于紙巾上使所有液體流出,,加入1ml 70%乙醇,蓋緊離心管顛倒數(shù)次,,4℃,、6000轉(zhuǎn),離心2min,。 9. 去除所有的乙醇溶液,,將管倒置于紙巾上使液體流盡,,室溫干燥5——10min,直到乙醇都揮發(fā)干凈,。 10.將質(zhì)粒DNA沉淀溶于50 μl TE緩沖液(含20 μg/ml RNaseA)中,,溫和振蕩數(shù)秒,-20℃儲存?zhèn)溆谩?/p> |
注意事項 | 1. 溶液Ⅰ與溶菌液充分搖勻,,用力適當,。因為此時細菌還沒有與堿和SDS作用,染色體DNA尚未釋放,,不必擔心其分子斷裂,,一般可用力振蕩幾次。 2. 加入SDS后則要注意不能過分用力振蕩,,溫和混勻,,但又必須讓它反應充分。 3. 加入溶液Ⅱ混勻之后,,一定要在冰上放置,,不要搖動,對于溶液Ⅲ同樣處理,。 |
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