染色體制備

時間：2022/12/13閱讀：1420

原理

固定阻滯于分裂中期的細胞,，在低滲液中膨脹，將細胞滴在載玻片上,，染色,，觀察 [ Rothfels and Siminovitch，1958,；Rooney and Czepulkowski,，1986 ] 。

材料與儀器

D-PBS 0.25%胰蛋白酶對數(shù)期的培養(yǎng)細胞秋水仙酰胺
低滲溶液醋酸甲醇固定液 Giemsa染液 DPX或Permount封固劑冰
離心管巴斯德吸管載玻片蓋玻片載玻片盒低速離心機渦流混懸器

步驟

1. 將 2× 104~ 5× 104 個細胞 /ml （4× 103~ 1× 104 個細胞 /cm2） 20 ml 在 75 cm2 的培養(yǎng)瓶中培養(yǎng),。

2. 約 3.5 天后,，細胞處于對數(shù)生長期時，將 0.2 ml 的 1×10-5 mol/L 的秋水仙酰胺（用 D-PBSA 配制）加入培養(yǎng)瓶內(nèi)已有的培養(yǎng)基中,，終濃度 1×10-7 mol/L ,。

3. 4~6 小時后，輕輕去掉培養(yǎng)基,，加 5 ml 0.25% 胰蛋白酶,，孵育 10 min。

4. 在胰蛋白酶液中離心細胞,，棄掉上清胰蛋白酶,。

5. 以 5 ml 低滲溶液（0.04 mol/L KCl ; 0.025 mol/L 枸櫞酸鈉）重新混懸細胞,，37℃ 下靜置 20 min 。

6. 加入等量新鮮配制的冰冷的醋酸甲醇（一份冰醋酸加三份無水甲醇或乙醇,，新鮮配置并在冰上保存）,，不停地混合,，然后以 100 g 速度離心 2 min,。

7. 棄掉上清混合物，在渦流混懸器上震蕩細胞團塊,，再慢慢邊混勻邊加新制備的醋酸甲醇,。

8. 細胞在冰上靜置 10 min。

9. 以 100 g 速度離心細胞 2 min ,。

10. 棄掉上清醋酸甲醇,，以 0.2 ml 的醋酸甲醇溶液，重新振蕩混懸細胞團,，直到細胞均勻分散,。

11. 用吸管吸一滴細胞懸液到吸管尖部，從約 12 英寸（30 cm）處滴到?jīng)龅牟Ｆ?，傾斜玻片,，讓液滴流下并鋪開。

12. 將玻片在燒杯沸水上迅速干燥,，然后用相差顯微鏡觀察,。如果細胞均勻鋪展而沒有相互接觸，則以同樣濃度的細胞制備更多片子,。如果細胞成堆重疊出現(xiàn),，則稀釋懸液 2~4 倍之后，再制備一張滴液玻片,。如果滿意,，就制備更多片子，若不滿意,，重復這一步驟進一步稀釋,。

13. 進行 Giemsa 細胞染色：

(a)將玻片放在架子上，架子放在水池上,。

(b)以數(shù)滴純 Giemsa 染液完-全覆蓋玻片,，染色 2 min 。

(c)以約 10 倍體積的水淹沒玻片,。

(d)再靜置 2 min,。

(e)用流動水沖掉稀釋過的染液。

(f) 最后用水逐張沖洗玻片去除染液沉淀,。

(g)顯微鏡下觀察染色情況,，如果滿意,，則將載玻片徹-底干燥，用#00蓋玻片及 DPX 或 Pennoum 封片,。

注意事項

必須倒掉染色液,，因為氧化的染色液浮渣會留在玻片上。即使在平皿中染色,，染液也不能倒掉,，而必須用水從下向上置換掉。

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