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分離培養(yǎng)細胞的操作步驟

時間:2021/11/12閱讀:3934
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材料與儀器

活檢組織塊
Ham F12 FBS D-PBSA
手術刀 長剪刀 Petri 培養(yǎng)皿 離心管 血細胞計數板

實驗步驟


一、材料


無菌 


1. 轉運培養(yǎng)液:Ham F12(Seromed 08101),,不含 NaHCO3,,含有 20 mmol/LHEPES(Serva 25245),75 ml


2. 生長培養(yǎng)液: Ham F12, 添加 20%FBS(Gibco 011-06290),200 ml 


3. 鏈霉菌蛋白酶液:0.15% 鏈霉菌蛋白酶(Sigma P-6911),、0.03% EDTA(Merck 8418),、20IU/ml 青霉素和 20ug/ml 鏈霉素(0.4%Eurobio PES300),用 Ham F12 或 D-PBSA 配制 100 ml 


4. D-PBSA:100 ml


5. 尼龍網:孔徑為 100um


6. 手術刀 


7. 鋒利的長剪刀 


8. Petri 培養(yǎng)皿:直徑為 90 mm,,用于切組織塊 


9. 培養(yǎng)皿:25 cm2,,4 個 


10. 20 ml 離心管或一般容器,5 只 


非滅菌 


1. 血細胞計數板 


二,、操作步驟:


1. 分離:用手術刀切除活檢組織塊上的非肌性組織,,然后用 D-PBSA 浸洗。


2. 稱重前,,與肌纖維平行將切除活檢組織切成片,,用 D-PBSA 沖洗。


3. 將組織片平行放入 Petri 培養(yǎng)皿蓋內,,切成較薄的柱狀組織塊,,然后切成 1 mm3小塊。不要擠壓組織,。也可在試管內用長剪刀將組織簡稱小塊,,應避免擠壓組織。


4. 用 D-PBSA 浸洗組織塊,,靜置后吸取上清液,。


5. 在 37℃ 條件下,用鏈霉菌蛋白酶液消化組織塊 1 h,。每 1~3 mg 組織塊用 15 ml 鏈霉菌蛋白酶液,。每間隔 10~15 min 輕輕搖晃試管。


6. 孵育后用吸管研磨組織塊,。由于越來越多的細胞分離下來,,培養(yǎng)液會逐漸變得渾濁。


7. 讓組織塊沉到試管的底部,,形成沉降的組織塊(P1)和上清液(S1),。


8. 用孔徑為 100um 的尼龍網將 S1 濾入 20 ml 離心管。輕輕搖晃或用吸管吹打上清液,,使細胞混懸,。


9. 離心(350 g,8~10 min)后,,吸取上清液,。


10. 準確加入 10 ml 生長培養(yǎng)液,,用帶有橡皮吸頭的吸管很輕微地混懸細胞。然后,,用血細胞計數板計數細胞,。


11. 用生長培養(yǎng)液稀釋細胞懸液,以約 1.5x104個/ml 的細胞密度將細胞接種于培養(yǎng)瓶,。從 1 g 健康供體活檢組織約獲得 1~2x105 個細胞,。


12. 將 15 ml 消化液加入 P1,在 37℃ 水浴中孵育組織塊 30 min,,并定時搖晃,。


13. 用吸管吹打細胞懸液,使細胞分散,。然后,,用尼龍網過濾細胞懸液。用 20 ml 生長培養(yǎng)液浸洗濾網,。


14. 離心(350 g,,8~10 min)后,計數細胞,,按上述方法接種細胞,。


15. 將培養(yǎng)瓶移入濕潤的培養(yǎng)箱,在 37℃ 和 5%CO2 的條件下培養(yǎng)細胞,,


安全提示
在扔入垃圾前,應該用次氯酸鹽處理剩余組織和使用過的試管,、吸管,、培養(yǎng)皿。

 

維持培養(yǎng) 


16. 接種后 24 h 很輕微地換培養(yǎng)液,,以后每 3~4d 換液 1 次,。細胞主要向著分化生長。人成肌細胞的生長分 3 期,,培養(yǎng)后 4~6d 增殖達高峰,;8d 作用排列成 行;10~12d 細胞融合形成肌管增多,。然而,,必須記住一些細胞可能分化較早,絕大多數細胞分化時一些細胞仍處于增殖狀態(tài),。


傳代培養(yǎng) 


17. 將少量 EDTA 輕輕注在細胞上面后立即吸取,。


18. 加入 0.25% 胰蛋白酶液,足以在細胞上面形成一薄層,。


19. 當細胞去附著時,,加入 5~10 ml *生長培養(yǎng)液,,用吸管很輕微地吹打細胞,然后離心(350 g,,10 min),。


20. 計數細胞,按一定密度種植細胞,。



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