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更新時(shí)間:2020-05-11 14:55:04瀏覽次數(shù):1874次
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酵母雙雜交檢測(cè)實(shí)驗(yàn)技術(shù)服務(wù)
隨著分子生物學(xué)研究尤其是人類基因組計(jì)劃的迅速發(fā)展,,為適應(yīng)對(duì)眾多基因或蛋白進(jìn)行功能研究的發(fā)展趨勢(shì),已出現(xiàn)了很多新技術(shù),。其中酵母雙雜交技術(shù)以其簡(jiǎn)便,,靈敏,高效以及能反映不同蛋白質(zhì)之間在活細(xì)胞內(nèi)的相互作用等特點(diǎn)在基因功能的研究中得到了廣泛的應(yīng)用,。
蛋白的酵母雙雜交實(shí)驗(yàn)是以酵母的遺傳分析為基礎(chǔ),,研究反式作用因子之間的相互作用對(duì)真核基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控影響的實(shí)驗(yàn),同以往研究蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)之間相互作用的實(shí)驗(yàn)手段相比,,酵母雙雜交系統(tǒng)具有其*優(yōu)勢(shì),。
1、融合體蛋白之間的相互作用是在真核酵母細(xì)胞內(nèi)進(jìn)行,,蛋白質(zhì)保持天然的折疊狀態(tài),,這是其他離體生化檢驗(yàn)方法所缺乏的,它所證實(shí)的蛋白質(zhì)間相互作用將更接近于體內(nèi)的真實(shí)水平,。
2,、雙雜交系統(tǒng)的敏感度非常高,蛋白質(zhì)之間結(jié)合常數(shù)低至1mmol/L時(shí)都可以被偵測(cè),。
3,、在篩選cDNA 文庫(kù)時(shí),雙雜交系統(tǒng)能夠簡(jiǎn)捷地得到編碼相互作用蛋白的基因序列,,它只需構(gòu)建質(zhì)粒而不必準(zhǔn)備抗體或純化蛋白,,省略了其它體外檢測(cè)蛋白之間相互作用方法所必須的蛋白抽提、純化等繁瑣步驟,。
酵母雙雜交實(shí)驗(yàn)原理:
以Gal4系統(tǒng)為例,,BD和AD分別由Gal4蛋白上不同的兩個(gè)結(jié)構(gòu)域(1-147aa與768-881aa)構(gòu)成。在利用GAL4系統(tǒng)篩選cDNA文庫(kù)或研究蛋白間的相互作用時(shí),,DNA結(jié)合結(jié)構(gòu)域與靶蛋白即"誘餌"相結(jié)合,,轉(zhuǎn)錄活化結(jié)構(gòu)域與文庫(kù)蛋白或要驗(yàn)證的蛋白相結(jié)合。一般情況下,,單獨(dú)的BD可以與GAL4上游活化序列(GAL UAS)結(jié)合但不能引起轉(zhuǎn)錄,,單獨(dú)的AD則不能與GAL UAS結(jié)合;只有當(dāng)BD與AD分別表達(dá)的融合蛋白由于相互作用而導(dǎo)致兩者在空間上相互靠近時(shí),,BD與AD才能與GAL UAS結(jié)合并且引起報(bào)道基因的轉(zhuǎn)錄,,從而激活下游報(bào)告基因,通過(guò)這一系列實(shí)驗(yàn)來(lái)驗(yàn)證兩個(gè)蛋白之間的相互作用,。
★ 酵母單/雙雜交檢測(cè)服務(wù)項(xiàng)目列表
服務(wù)項(xiàng)目 | 說(shuō)明 | 周期 | 服務(wù)報(bào)價(jià) |
酵母單雜交文庫(kù)構(gòu)建技術(shù)服務(wù) | 基于重組方法的文庫(kù)構(gòu)建方案(請(qǐng)參考本頁(yè)詳細(xì)說(shuō)明) | 4-6周 |
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酵母單雜交文庫(kù)篩選技術(shù)服務(wù) | DNA—蛋白質(zhì)相互作用(請(qǐng)參考本頁(yè)詳細(xì)說(shuō)明) | 12-15周 | |
核蛋白體系酵母雙雜交文庫(kù)篩選技術(shù)服務(wù) | 基于pDEST22或pGADT7系統(tǒng) | 14-16周 | |
膜蛋白體系酵母雙雜交文庫(kù)篩選技術(shù)服務(wù) | 基于分離的泛素介導(dǎo)的膜蛋白酵母雙雜交系統(tǒng) | 14-16周 |
服務(wù)一,、酵母單雜交文庫(kù)構(gòu)建服務(wù)
酵母單雜交體系能在一個(gè)簡(jiǎn)單實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,識(shí)別與DNA特異結(jié)合的蛋白質(zhì),,同時(shí)可直接從基因文庫(kù)中找到編碼蛋白的DNA序列,,而無(wú)需分離純化蛋白,實(shí)驗(yàn)簡(jiǎn)單易行,。為了獲得良好的酵母單雜交篩選實(shí)驗(yàn)結(jié)果,,構(gòu)建酵母單雜的文庫(kù)至關(guān)重要,我們可以依據(jù)不同的實(shí)驗(yàn)需要及物種特性,,選擇不同的體系建庫(kù)方法,,我們的技術(shù)專家可以熟練的應(yīng)用Clonetech的SAMRT方法和life的gateway方法建立,同時(shí),,我們的技術(shù)專家也開(kāi)發(fā)出了基于同源重組原理的建庫(kù)方法,。
★ 酵母單雜交文庫(kù)構(gòu)建實(shí)驗(yàn)流程:
1. RNA提取
2. mRNA提取
3. cDNA的酶促法合成
4. cDNA連接接頭
5. cDNA按長(zhǎng)度分離
6. cDNA與酵母單雜交文庫(kù)載體pGADT7進(jìn)行all-direct重組
7. 重組產(chǎn)物電轉(zhuǎn)化
8. 文庫(kù)檢測(cè)以及質(zhì)粒提取
★ 酵母單雜交文庫(kù)構(gòu)建實(shí)驗(yàn)材料要求:
客戶構(gòu)建的酵母單雜交cDNA文庫(kù),由客戶提供組織,、細(xì)胞或總RNA給我們即可:
細(xì)胞樣本:細(xì)胞數(shù)量大于1*10^7,;
動(dòng)物樣本:大于1g;
植物樣本:大于2g,;
總RNA:大于200ug。
★ 產(chǎn)品質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn):
原始文庫(kù)庫(kù)容量大于1*10^7CFU,;
平均插入片段大于1000bp ;
克隆陽(yáng)性率大于95%,。
服務(wù)二,、酵母單雜交文庫(kù)篩選技術(shù)服務(wù)
在研究DNA—蛋白質(zhì)相互作用中,酵母單雜交體系主要有以下3種用途:
①確定已知DNA—蛋白質(zhì)之間是否存在相互作用,;②分離結(jié)合于目的順式調(diào)控元件或其他短DNA結(jié)合位點(diǎn)蛋白的新基因,;③定位已經(jīng)證實(shí)的具有相互作用的DNA結(jié)合蛋白的DNA結(jié)合結(jié)構(gòu)域,以及準(zhǔn)確定位與DNA結(jié)合的核苷酸序列,。
客戶僅提供用于篩選的誘餌質(zhì)粒信息,我們完成雜交篩選相關(guān)工作:
1. 誘餌載體的構(gòu)建
2. 誘餌質(zhì)粒的自激活檢測(cè)
3. 文庫(kù)質(zhì)粒和誘餌質(zhì)粒共轉(zhuǎn)酵母感受態(tài)細(xì)胞
4. 文庫(kù)篩選和3AT優(yōu)化
5. 文庫(kù)篩選結(jié)果測(cè)序分析
6. 篩選結(jié)果回轉(zhuǎn)驗(yàn)證
7. 詳細(xì)報(bào)告的整理和數(shù)據(jù)發(fā)送
試驗(yàn)完成后提供完整的實(shí)驗(yàn)報(bào)告,,包含實(shí)驗(yàn)原始圖片,,陽(yáng)性克隆,測(cè)序鑒定結(jié)果,,質(zhì)粒及菌株等,。
服務(wù)三、核蛋白體系酵母雙雜交文庫(kù)篩選技術(shù)服務(wù)
艾柏森生物的核蛋白體系酵母雙雜交服務(wù)可以選擇使用life的pDEST22和clonetech的pGADT7兩套系統(tǒng)進(jìn)行篩選,,篩選文庫(kù)可以使用預(yù)制商業(yè)化文庫(kù)或者本公司定制構(gòu)建的酵母雜交文庫(kù),。
需要指出的是,融合體蛋白必須轉(zhuǎn)運(yùn)至核內(nèi)才能活化轉(zhuǎn)錄,因此對(duì)于胞外配體-受體作用以及需要核外修飾或受磷酸化等翻譯后修飾過(guò)程介導(dǎo)的蛋白質(zhì)間相互作用而言,,該系統(tǒng)的應(yīng)用受到一些限制,。在進(jìn)行文庫(kù)篩選時(shí),假陽(yáng)性結(jié)果常常干擾實(shí)驗(yàn)的準(zhǔn)確性,,除某些文庫(kù)編碼的蛋白質(zhì)本身含有轉(zhuǎn)錄活化成分外,細(xì)胞內(nèi)的其它無(wú)關(guān)蛋白也可能有類似作用,,因此雙雜交系統(tǒng)檢測(cè)的結(jié)果必須通過(guò)其它蛋白間相互作用的實(shí)驗(yàn)來(lái)進(jìn)一步驗(yàn)證。
客戶只需提供用于篩選的誘餌質(zhì)粒信息,,我們完成雜交篩選相關(guān)工作:
1. 誘餌載體的構(gòu)建
2. 誘餌質(zhì)粒的自激活檢測(cè)
3. 文庫(kù)質(zhì)粒和誘餌質(zhì)粒共轉(zhuǎn)酵母感受態(tài)細(xì)胞
4. 文庫(kù)篩選和3AT優(yōu)化
5. 文庫(kù)篩選結(jié)果測(cè)序分析
6. 篩選結(jié)果回轉(zhuǎn)驗(yàn)證
7. 詳細(xì)報(bào)告的整理和數(shù)據(jù)發(fā)送
服務(wù)四,、膜蛋白體系酵母雙雜交文庫(kù)篩選技術(shù)服務(wù)
該系統(tǒng)的原理是利用連接有泛素(ubiquitin)的蛋白能夠被泛素特異性的蛋白酶(UBPs)識(shí)別并切割下泛素,而這種特異性切割只在泛素能夠正確折疊的前提下發(fā)生,。在正常情況下,,泛素?cái)嗔殉蓛刹糠趾笤隗w內(nèi)能自發(fā)結(jié)合成可被 UBPs識(shí)別的重構(gòu)泛素,而當(dāng)有突變發(fā)生時(shí),,即泛素的N端發(fā)生Ile13/Gly13的突變,這種斷裂泛素的重構(gòu)就無(wú)法進(jìn)行,。 只有當(dāng)與斷裂的泛素的兩部分分別連接一個(gè)蛋白,且兩個(gè)蛋白之間存在相互作用,斷裂泛素的重組又得以恢復(fù),。斷裂泛素重組的發(fā)生能將連接在泛素C端的轉(zhuǎn)錄因子切割并進(jìn)入細(xì)胞核內(nèi)激活報(bào)告基因的轉(zhuǎn)錄表達(dá),,通過(guò)報(bào)告基因是否表達(dá),可以檢測(cè)兩個(gè)蛋白之間是否存在相互作用
基于分離的泛素(split-ubiquitin)介導(dǎo)的膜蛋白酵母雙雜交系統(tǒng),區(qū)別于傳統(tǒng)的核蛋白互作分析,,可用于研究膜蛋白間及膜蛋白與胞質(zhì)蛋白間的互作,。在酵母細(xì)胞中,泛素可以分成兩部分表達(dá),,即其N端部分(NubI)和C端部分(Cub),,后者融合有能啟動(dòng)核內(nèi)報(bào)告基因表達(dá)的LexA蛋白。NubI和Cub-LexA在細(xì)胞中組成可分離的泛素蛋白體系
客戶只需提供用于篩選的誘餌質(zhì)粒信息,,我們完成雜交篩選相關(guān)工作:
1. 誘餌載體的構(gòu)建
2. 誘餌質(zhì)粒的自激活檢測(cè)
3. 文庫(kù)質(zhì)粒和誘餌質(zhì)粒共轉(zhuǎn)酵母感受態(tài)細(xì)胞
4. 文庫(kù)篩選和3AT優(yōu)化
5. 文庫(kù)篩選結(jié)果測(cè)序分析
6. 篩選結(jié)果回轉(zhuǎn)驗(yàn)證
7. 詳細(xì)報(bào)告的整理和數(shù)據(jù)發(fā)送
客戶案例1——
★ 酵母雜交文庫(kù)構(gòu)建服務(wù)案例(限于篇幅,,我們只選取了實(shí)驗(yàn)報(bào)告中部分步驟,如果需要了解更多的實(shí)驗(yàn)信息,,請(qǐng)聯(lián)系客服人員)
一,、試劑、耗材(略)
二,、儀器設(shè)備(略)
三,、試劑及配制 (略)
四、酵母雜交文庫(kù)構(gòu)建實(shí)驗(yàn)流程
1,、Trizol法RNA的提取
2,、使用Oligotex mRNA Kits(Qiagen)分離純化樣本的mRNA,mRNA質(zhì)量可以滿足文庫(kù)要求,,mRNA總量為6.9 ug
3,、酵母雙雜交文庫(kù)構(gòu)建
3.1,、di一鏈cDNA合成
3.2、cDNA第二鏈的合成
3.3,、加5’接頭(3個(gè)讀碼框,,每個(gè)讀碼框連接一份,共3份)
3.4,、cDNA長(zhǎng)度分離, 使用低熔點(diǎn)瓊脂糖電泳cDNA,,切膠回收1 Kbp以上的條帶,乙醇沉淀后溶于14 ul水中,。
3.5,、使用Infusion重組反應(yīng)體系連接cDNA與載體pGADT7
3.6、電轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞
4,、酵母雙雜交文庫(kù)的構(gòu)建質(zhì)量鑒定
4.1,、庫(kù)容量的鑒定
取轉(zhuǎn)化后細(xì)菌原液10 uL稀釋100倍后,從中取出10 uL涂布LB平板(含氨芐抗性),,第二天計(jì)數(shù),。
CFU/mL=平板上的克隆數(shù)/10 uL×100倍×1×103 uL
文庫(kù)總CFU= CFU/mL×文庫(kù)菌液總體積(mL)
4.2、插入片段大小鑒定
從轉(zhuǎn)化平板上隨機(jī)挑取24個(gè)單克隆菌落,,經(jīng)PCR擴(kuò)增后,,用電泳檢測(cè)PCR產(chǎn)物大小。
五,、文庫(kù)擴(kuò)增及質(zhì)粒提取
將轉(zhuǎn)化后原始文庫(kù)菌液涂布氨芐抗性培養(yǎng)基平板擴(kuò)增培養(yǎng),,第二天用液體培養(yǎng)基從平板上洗脫菌苔,取其中2/3體積用Qiagen大抽試劑盒抽提質(zhì)粒DNA,,剩余1/3體積中加入25%無(wú)菌甘油混合均勻后灌裝保種管,,凍存于-80℃冰箱。
六,、文庫(kù)菌保存和文庫(kù)篩選
凍存于-80℃冰箱內(nèi),,可以保存2年以上,文庫(kù)質(zhì)??梢灾苯佑糜诮湍肝膸?kù)篩選,,pGADT7 酵母雙雜交文庫(kù)菌的抗性為氨芐抗性(50 ug/mL)
備注:
1. 文庫(kù)構(gòu)建使用的引物序列,雙雜交文庫(kù)擴(kuò)增檢測(cè)引物:
F:5′-TAATACGACTCACTATAGGGCGAGCGCCGCCATG-3′
R:5′-GTGAACTTGCGGGGTTTTTCAGTATCTACGATT-3′
如果需要對(duì)文庫(kù)中的克隆質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序,,請(qǐng)使用以下引物:
T7:TAATACGACTCACTATAGGGC
ADR:GTGAACTTGCGGGGTTTTTC
客戶案例2——
★ 酵母雙雜交文庫(kù)篩選ORF1的相互作用蛋白服務(wù)案例
一,、試劑、耗材(略)儀器設(shè)備(略)試劑及配制(略)
二,、誘餌載體構(gòu)建pGBKT7- ORF1的構(gòu)建與鑒定(此步驟為常規(guī)的實(shí)驗(yàn)方法,,可以通過(guò)酶切、測(cè)序等方法鑒定酵母雜交誘餌載體正確性,此處略)
三,、ORF1自激活檢測(cè)
1,、酵母轉(zhuǎn)化反應(yīng)
將各種質(zhì)粒轉(zhuǎn)入受體菌AH109中,觀察檢測(cè)結(jié)果,。
Reaction | AD plasmid | BD plasmid | 涂板種類 | 備注 |
1 | pGADT7-largeT | pGBKT7-p53 | SD-TL | 陽(yáng)性對(duì)照 |
2 | pGADT7-largeT | pGBKT7-laminC | SD-TL | 陰性對(duì)照 |
3 | pGADT7 | pGBKT7- ORF1 | SD-TL | 自激活檢測(cè) |
4 | - | pGBKT7- ORF1 | SD-T | 篩庫(kù)備用 |
2,、酵母轉(zhuǎn)化方法
1. 從YPDA平板挑取AH109單菌落接種于YPDA液體培養(yǎng)基4 ml,30℃,,225 rpm,,振蕩培養(yǎng)18-20 h(過(guò)夜),至OD600>1.5,,一般為4左右,。
2. 轉(zhuǎn)接YPDA液體培養(yǎng)基,培養(yǎng)體積為50 ml,,使初始OD600=0.2,30℃,,225 rpm,,振蕩培養(yǎng)4-5h,至OD600=0.6,。
3. 離心收菌,,室溫,4000 rpm,,5 min,。
4. 用20 ml無(wú)菌水重懸菌體,混勻,,離心收菌,,室溫,4000 rpm,,5 min,,棄上清。
5. 用5 ml 0.1 M LiAc重懸菌體,,混勻,,離心收菌,室溫,,4000 rpm,,5 min,棄上清,。
6. 用500 ul 0.1 M LiAc重懸菌體,,混勻,分裝至1.5 ml離心管,每個(gè)50 ul(每個(gè)轉(zhuǎn)化),,備用,。
7. 每個(gè)1.5 ml離心管中依次加入相應(yīng)試劑,用槍頭吹打混勻,,或劇烈振蕩1 min左右,,至*混勻。
8. 30℃水浴孵育,,30 min,。
9. 42℃水浴熱激,25 min,。
10. 30℃水浴復(fù)蘇,,30 min。
11. 離心收菌,,室溫,,4000 rpm,5 min,,棄上清,。
12. 每個(gè)轉(zhuǎn)化用200 ul無(wú)菌水懸浮菌體,盡量溫和地混勻,,涂布相應(yīng)的缺陷型篩選平板,。
13. 30℃恒溫培養(yǎng)4天。
3,、ORF1自激活檢測(cè)結(jié)果
pGBKT7-ORF1 + pGADT7共轉(zhuǎn)化AH109長(zhǎng)出的酵母轉(zhuǎn)化子隨機(jī)挑取了6個(gè)菌落進(jìn)行自激活檢測(cè),。包括HIS3、ADE2和LacZ共3個(gè)報(bào)告基因的檢測(cè),。
HIS3和ADE2的檢測(cè)采用點(diǎn)板培養(yǎng)的方法,,將轉(zhuǎn)化子點(diǎn)板至SD-TLHA平板,30℃恒溫培養(yǎng)4天,,觀察其生長(zhǎng)狀態(tài),。
LacZ報(bào)告基因的檢測(cè)方法如下:
1. 從轉(zhuǎn)化平板隨機(jī)挑取6個(gè)菌落于濾紙片上。
2. 將濾紙*浸于液氮中90 s,,取出常溫放置2 min晾干,。
3. 在培養(yǎng)皿中加入新鮮配制的顯色液,一般9 cm培養(yǎng)皿用2-3 ml顯色液,。
4,、將顯色液加入培養(yǎng)皿中,再放入一張干凈的濾紙,,讓其*浸濕,,將凍溶后的濾紙放在上面,,使顯色液浸透表層,蓋上皿蓋,。30℃避光培養(yǎng),,20 min后開(kāi)始觀察,一般2 h后可開(kāi)始看到顏色變化,。4-5h拍照記錄結(jié)果,。
對(duì)照菌株在SD-TL缺陷平板上都能正常生長(zhǎng),而僅有陽(yáng)性對(duì)照可在SD-TLHA缺陷平板生長(zhǎng),。pGBKT7-ORF1 +pGADT7轉(zhuǎn)化子中隨機(jī)挑選的6個(gè)菌落在SD-TLHA缺陷平板上不能生長(zhǎng),,生長(zhǎng)狀態(tài)同陰性對(duì)照,LacZ檢測(cè)中結(jié)果也與陰性對(duì)照相同,,因此不存在自激活,。
自激活檢測(cè)結(jié)論:ORF1誘餌克隆沒(méi)有自激活作用。
四,、文庫(kù)篩選
用含有正確pGBKT7-ORF1誘餌質(zhì)粒的AH109酵母轉(zhuǎn)化子作為受體菌制備感受態(tài),,將文庫(kù)質(zhì)粒pGADT7-酵母雙雜-cDNA轉(zhuǎn)入其中,涂SD-Trp-Leu-His+ 5 mM 3AT平板,。
五,、影印清除
為了消除背景生長(zhǎng)菌落的干擾,在培養(yǎng)到第3天時(shí),,用絨布對(duì)篩庫(kù)平板進(jìn)行影印清除后,繼續(xù)培養(yǎng)7-14天,。分批挑取再次長(zhǎng)出的轉(zhuǎn)化子菌落進(jìn)行下一步檢測(cè),。
六、陽(yáng)性克隆鑒定
至影印清除后繼續(xù)培養(yǎng)7-14天,,從篩庫(kù)平板中挑取長(zhǎng)出的陽(yáng)性克隆單菌落,,共挑取到20個(gè)初始陽(yáng)性克隆轉(zhuǎn)化子轉(zhuǎn)接到SD-TL缺陷型平板中繼續(xù)培養(yǎng)2-3天。
1. 陽(yáng)性克隆His和Ade報(bào)告基因的檢測(cè)
將上述SD-TL缺陷型平板上長(zhǎng)出的20個(gè)初始陽(yáng)性克隆轉(zhuǎn)化子分別用無(wú)菌水稀釋后點(diǎn)種至SD-TL和SD-TLHA缺陷平板,,30℃恒溫培養(yǎng)3-4天,。
陽(yáng)性克隆檢測(cè)結(jié)果顯示:在20個(gè)初始陽(yáng)性克隆中,有13個(gè)能在SD-TLHA生長(zhǎng)的是激活了ADE2和HIS3報(bào)告基因,。
2. 陽(yáng)性克隆LacZ報(bào)告基因檢測(cè)
將20個(gè)初始陽(yáng)性克隆用無(wú)菌水重懸后點(diǎn)于濾紙片上進(jìn)行LacZ報(bào)告基因檢測(cè),。結(jié)果如下圖所示:
七、酵母陽(yáng)性克隆DNA提取和測(cè)序比對(duì)
通過(guò)測(cè)序比對(duì),,可以將重復(fù)的陽(yáng)性給克隆子去除,,本實(shí)驗(yàn)案例中,有多個(gè)克隆子為重復(fù)的陽(yáng)性克隆,,經(jīng)過(guò)篩除后,,我們可以確認(rèn)獲得了6個(gè)*不同的陽(yáng)性克隆子,。
八、回轉(zhuǎn)驗(yàn)證
用含有正確pGBKT7-ORF1誘餌質(zhì)粒的AH109酵母轉(zhuǎn)化子作為受體菌制備感受態(tài),,將6種陽(yáng)性克隆質(zhì)粒DNA分別轉(zhuǎn)化其中,,分別回轉(zhuǎn)驗(yàn)證His和Ade報(bào)告基因的檢測(cè)和LacZ報(bào)告基因檢測(cè)。
實(shí)驗(yàn)結(jié)論:
本項(xiàng)目以O(shè)RF1基因cDNA克隆為誘餌,,篩選cDNA酵母雙雜交文庫(kù),,在篩選到的20個(gè)初始陽(yáng)性中,經(jīng)過(guò)鑒定結(jié)果顯示有13個(gè)能激活A(yù)DE2,、HIS3和LacZ報(bào)告基因,。經(jīng)過(guò)對(duì)這些陽(yáng)性克隆質(zhì)粒進(jìn)行DNA測(cè)序和BLAST比對(duì)分析,結(jié)果表明它們分別屬于6種不同蛋白的編碼基因,。
通過(guò)對(duì)這6種陽(yáng)性克隆的回轉(zhuǎn)驗(yàn)證檢測(cè),,結(jié)果顯示所有陽(yáng)性克隆都能通過(guò)對(duì)ADE2、HIS3和LacZ報(bào)告基因的回轉(zhuǎn)驗(yàn)證,。
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