產(chǎn)品描述
COSMOSIL Cholester色譜柱是反相體系的HPLC柱,，膽甾醇鍵合硅膠填料,，具有和傳統(tǒng)的烷基鍵合C18、C30硅膠填料一樣的疏水性,，但是在相同的分析條件下,，Cholester對疏水化合物的立體選擇性好。
Cholester與C18柱具有相同的疏水性,。因此使用Cholester代替C18柱或C30柱時,，不需要改變分析條件。與傳統(tǒng)的C18柱相比,，Cholester具有更強的選擇性和分離同分異構(gòu)體或結(jié)構(gòu)類似物的能力,，它可以很好的代替?zhèn)鹘y(tǒng)C18色譜柱。
COSMOSIL Cholester色譜柱
· 膽甾醇基固定相
· 使用條件與C18柱相同
· 提高了立體選擇性和幾何異構(gòu)體的分離度
· 適用于天然物的分離
規(guī)格
| 色譜柱 | 5μm Cholester |
| 內(nèi)徑(mm) | 2.0 | 3.0 | 4.6 | 10 | 20 | 28 |
| 柱長(mm) | ALL | ALL | ALL | 20-150 | 250 | 20-100 | 150-250 | ALL |
| 出廠溶劑 | 乙腈 / 水 = 60 / 40 | 甲醇 / 水 = 70 / 30 | 甲醇 / 水 = 80/ 20 | 甲醇 / 水 = 70 / 30 | 甲醇 / 水 = 80/ 20 |
| 沖洗方法 | 去除色譜柱內(nèi)的緩沖液,，鹽,，酸的方法：使用不含緩沖液，鹽,，酸的流動相沖洗10-15分鐘,。
例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗 沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法,，基線不穩(wěn)時的解決方法
樣本不是蛋白質(zhì)時,，使用甲醇或四氫呋喃沖洗。 樣品是蛋白質(zhì)時,，使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗
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| 保存方法 | 短期（數(shù)日）保存：
使用不含緩沖液,，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘,。保存,。
例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗 長期（1個月以上）保存：
使用后,，先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,，保存,。
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| pH范圍 | pH2～pH7.5 |
| 最大耐壓 | 20MPa | 15MPa |
| 溫度范圍 | 最高可耐60度，建議在20~50度下進行分析。 |
| 可使用的溶劑 | 除堿溶液和強酸溶液（pH1.5以下）以外都可以使用,。（強堿溶液會使硅膠溶化,，強酸溶液會使固定相脫落）
注意點：
溶劑粘度過高會導(dǎo)致壓力上升，請將壓力控制在20Mpa以下,。 使用酸性流動相或凝固點高的溶劑后,，必須清洗色譜柱。 |
| 注意事項 | 一般情況下緩沖液濃度為0.005~0.02 mol/L即可,。 流動相在使用前一定要通過0.5μm以下的濾膜過濾,。 蛋白質(zhì)反相模式分析時，請使用大孔徑色譜柱（孔隙直徑300?) COSMOSIL Protein - R（粒徑5μm）,。
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| 色譜柱 | 2.5μm Cholester |
| 內(nèi)徑(mm) | 2.0 | 3.0 |
| 柱長(mm) | ALL | ALL |
| 出廠溶劑 | 乙腈 / 水 = 50 / 50 |
| 沖洗方法 | 去除色譜柱內(nèi)的緩沖液,，鹽，酸的方法：使用不含緩沖液,，鹽,，酸的流動相沖洗10-15分鐘。
例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時,，就使用甲醇/水 =50/50沖洗 沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法,，基線不穩(wěn)時的解決方法
樣本不是蛋白質(zhì)時，使用甲醇或四氫呋喃沖洗,。 樣品是蛋白質(zhì)時,，使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗
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| 保存方法 | 短期（數(shù)日）保存：
使用不含緩沖液，鹽,，酸的流動相沖洗10-15分鐘,。保存。
例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時,，就使用甲醇/水 =50/50沖洗 長期（1個月以上）保存：
使用后,，先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,，保存,。
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