細胞培養(yǎng)也叫細胞克隆技術(shù),,在生物學(xué)中的正規(guī)名詞為細胞培養(yǎng)技術(shù),。不論對于整個生物工程技術(shù),還是其中之一的生物克隆技術(shù)來說,,細胞培養(yǎng)都是一個不可少的過程,,細胞培養(yǎng)本身就是細胞的大規(guī)模克隆,。
細胞培養(yǎng)的步驟
1,、復(fù) 蘇
細胞復(fù)蘇的原則:快速融化
必須將凍存在-196℃液氮中的細胞快速融化至37℃,,使細胞外凍存時的冰晶迅速融化,避免冰晶緩慢融化時進入細胞形成再結(jié)晶,,對細胞造成損害,。
實驗前準備
將水浴鍋提前預(yù)熱至37℃。
細胞實驗室進行常規(guī)消毒,,用75%酒精擦拭紫外線照射40min的超凈工作臺臺面,,保證無菌。
在超凈工作臺中按次序擺放好消過毒的離心管,、吸管,、培養(yǎng)瓶等即將使用的耗材及試劑。
取出凍存管
根據(jù)細胞凍存記錄按標簽找到所需細胞的對應(yīng)編號,。
從液氮罐中取出細胞盒,,取出所需的細胞,同時核對管外的編號,。
迅速解凍
迅速將凍存管投入到已經(jīng)預(yù)熱的水浴鍋中迅速解凍,,并要不斷的搖動,使管中的液體迅速融化,。
約1-2min后凍存管內(nèi)液體溶解,,取出用酒精棉球擦拭凍存管的外壁,再拿入超凈臺內(nèi),。
平衡離心
用架盤天平平衡后,,放入離心機中3000r/min 離心3分鐘。
制備細胞懸液
吸棄上清液,。
向離心管內(nèi)加入適量培養(yǎng)液,,吹打制成細胞懸液。
用培養(yǎng)液懸液混懸沉淀細胞,,細胞計數(shù)調(diào)整細胞濃度,,放入培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
細胞計數(shù)
細胞濃度以5×105/ml為宜,。
培養(yǎng)細胞
將符合細胞計數(shù)要求的細胞懸液分裝入培養(yǎng)瓶內(nèi),,將培養(yǎng)瓶放入37℃,5%CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)2-4h(或者24-48h)后換液繼續(xù)培養(yǎng)培養(yǎng),,換液的時間根據(jù)細胞情況而定,。
記錄復(fù)蘇日期
2、傳 代
01,、傳代密度過高
一旦細胞養(yǎng)太久至融合度過高(>90%)才傳代,,容易使細胞產(chǎn)生老化現(xiàn)象,甚至是堆疊,再消化細胞時不易吹打成單顆細胞,,即便再重新鋪盤傳代,,細胞也無法回到原本的特性了。(如:單層細胞,,沒長滿就發(fā)生堆疊現(xiàn)象),。
解決方案
盡量避免融合度過高,鏡下觀察融合度約達到80%即可傳代分盤,。
細胞融合度:在細胞培養(yǎng)中指的是細胞在培養(yǎng)表面(培養(yǎng)皿/瓶)所占的比例,。
02、傳代密度過低
哺乳動物貼壁培養(yǎng)細胞,,若細胞培養(yǎng)到80-90%密度需要開始傳代,,在傳代接種細胞密度過低,細胞間距離太遠,,就無法在細胞間產(chǎn)生黏附及通信作用,,幫助信號傳導(dǎo)并活化細胞;總體細胞量不足,,分泌的生長因子濃度會不足以產(chǎn)生利于生長的微環(huán)境,,以上皆會造成增殖速度遲緩或細胞死亡。
解決方案
細胞傳代時,,要進行準確的細胞計數(shù),,確保鋪盤的密度。
3,、凍 存
細胞凍存的基本原理:慢凍
手動降溫:將細胞依序放在4℃(30分鐘),、-20℃(1小時)、-80℃(過夜)后移至液氮中保存,。
程序降溫盒:是一般廣泛使用的降溫法,,為一種特制冷凍容器(填充異丙醇或依靠特制金屬導(dǎo)熱),使細胞以每分鐘約-1℃的速度降至-80℃(過夜),,然后移至液氮中保存,。
由此可以看出,程序降溫精準度更高,,優(yōu)于手動降溫,。
部分低溫保護劑在緩慢冷凍過程中雖然會保護細胞,但它們也會引起細胞毒性,,尤其是在室溫下,。因此,在標準的自制凍存液中,,會含有血清,,血清是用來降低細胞毒性的,,但血清也不是完整的,。
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