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★CQ★現(xiàn)象描述:
我昨天早上傳的代,,晚上看還是好好的,培養(yǎng)基顏色正常,,今天早上9點鐘左右,,培養(yǎng)基就變渾濁了,顯微鏡下觀察細(xì)胞好多都已經(jīng)漂起來了,,明顯是污染了,,但我的培養(yǎng)液里明明加了雙抗了啊,?
這個問題等同于,,
明明有免疫系統(tǒng)的我們
為什么還是感冒了呢
★CQ★解答一
>> 加雙抗只是有一定的預(yù)防作用,但不能避免污染
現(xiàn)在很多細(xì)菌對雙抗都有耐藥性,,所以加了也不一定就能殺死,;雙抗的保存方式的問題,青霉素在37℃下很快就會分解掉,;污染的細(xì)菌是不是在抗菌譜中,;如果是真菌的話雙抗就沒有什么卵用的;
★CQ★解答二
>> 養(yǎng)細(xì)胞要從源頭做起,,杜絕各種污染
剛買來的或借來的細(xì)胞株,,一般都會在培養(yǎng)基中添加抗生素,待通過污染測試后,,大量培養(yǎng)時則不要加抗生素,;
還有就是無血清培養(yǎng)時建議zuihao不加雙抗,因為沒有血清的保護,,細(xì)胞此時是比較脆弱的,,很容易受到雙抗的毒副作用影響。
加雙抗并不是*除菌的方法,。要防止污染除了使用雙抗,,還要注意污染源大多來自換液和消化時的操作不正規(guī),,如果你在處理細(xì)胞得操作過程不規(guī)范,即便加入雙抗也很難避免污染,。就像抵抗力再強的漢紙,,如果任由自己在寒風(fēng)中、雨雪天氣里任性,,像一顆海草隨風(fēng)飄搖的話,,終有崩潰的一天。所以保證細(xì)胞處理過程或培養(yǎng)基配制過程中的無菌操作才是關(guān)鍵,。
★CQ★解答三
>> 不是所有的細(xì)胞污染都用相同的解決辦法
很多實驗室在遇到細(xì)胞污染,,準(zhǔn)確的說是懷疑細(xì)胞受到污染(原因不明導(dǎo)致的細(xì)胞狀態(tài)不好)時,都會選擇一種處理方式——扔掉,!害怕他會傳染到其他的細(xì)胞,,但是往往你們?nèi)拥舻氖?ldquo;受害者”,而沒找到“真兇”,。
并不是所有的細(xì)胞污染都能用扔掉解決,,也并不是所有的細(xì)胞污染都可以用同一種試劑解決,。
辨別細(xì)胞狀態(tài),,找到根源,“對癥下藥”才是關(guān)鍵,。
(1)細(xì)菌污染
狀態(tài):細(xì)菌在普通倒置顯微鏡下為黑色細(xì)沙狀,,根據(jù)感染細(xì)菌的不同,可有不同的外形,,培養(yǎng)液一般會渾濁變黃,,對細(xì)胞生長影響明顯。
解決方法:
1.仔細(xì)檢查一下器皿的滅菌情況,,是否在高壓滅菌時放氣時間和壓力足夠,!尤其是和儲存培養(yǎng)液接觸的移液管等物品,連續(xù)兩次污染的話有可能造成儲存液污染,,一定要檢查培養(yǎng)液是否存在渾濁現(xiàn)象,!
2.可在培養(yǎng)液或血清中加支原體預(yù)防劑,以及的細(xì)菌清除劑,。
(2)霉菌及真菌污染
狀態(tài):肉眼觀察培養(yǎng)基,,發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)基顏色基本無變化,不渾濁,,但是培養(yǎng)基中由絮狀漂浮物,,顯微鏡下觀察,若感染真菌可看到分叉細(xì)絲狀的結(jié)構(gòu)(不同種類結(jié)構(gòu)不同),,若感染霉菌,,顯微鏡下可看到片狀的結(jié)構(gòu),不透明,,真菌及霉菌對影響細(xì)胞的生長影響不大,。
解決方法:
1.保證細(xì)胞房的干凈整潔,干燥的環(huán)境(潮濕的環(huán)境利于霉菌及真菌的生長),。
2.控制外來人員進(jìn)出實驗室,。
3.對實驗室及培養(yǎng)箱進(jìn)行*消毒,推薦使用專門針對細(xì)胞培養(yǎng)環(huán)境的抑菌劑,。
4.若細(xì)胞非常珍貴,,且不易獲得,可以對污染的細(xì)胞采取如下操作,。
懸浮細(xì)胞:收集細(xì)胞并離心,,用PBS漂洗,重復(fù)此操作數(shù)次,。貼壁細(xì)胞:用PBS輕輕沖洗細(xì)胞,,重復(fù)此操作數(shù)次。加入殺滅真菌
(3)支原體感染
狀態(tài):顯微鏡下很難捕捉,,培養(yǎng)液一般不會渾濁,,國內(nèi)血清很多沒做支原體陰性檢測,而支原體是牛血清中zui常見的微生物之一,。而且它不能用過濾的辦法除去,。支原體感染細(xì)胞以后,細(xì)胞病變不很明顯,,只是生長緩慢,,直至慢慢凋亡。
解決方法:
>>預(yù)防:實驗室新購買的血清及培養(yǎng)基需檢測是否含有支原體,,引進(jìn)的新品種細(xì)胞需做支原體檢測,,向培養(yǎng)基中添加支原體預(yù)防劑。
>>補救:將支原體去除劑與*培養(yǎng)液按1:800~1000比例稀釋,,加入細(xì)胞正常培養(yǎng),;并根據(jù)細(xì)胞污染的嚴(yán)重程度,處理3~6次即可*清除細(xì)胞支原體污染問題,。
(4)黑膠蟲污染
狀態(tài):可以穿透濾膜,,也可以通過空氣傳播,低倍下為黑色點狀,,高倍鏡下可看見黑色的小蟲游來游去,,培養(yǎng)液不渾濁,一般不會太影響,,細(xì)胞還可以用,。常??稍谕慌柕难屦B(yǎng)的細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)類似現(xiàn)象。
解決方法:
加入黑膠蟲去除劑,,改變培養(yǎng)基的品牌,。血清凍融采取逐級凍融等方法。
(5)桿菌污染
狀態(tài):類芽孢桿菌(Paenibacillus Ash,Priest&Collin,1994)呈桿狀,,革蘭氏染色陽性,、陰性或可變,以周生鞭毛運動,。當(dāng)細(xì)胞出現(xiàn)類芽孢桿菌污染,,會在顯微鏡下看到一些桿狀游動的小蟲子.
解決方法:
a. 發(fā)現(xiàn)細(xì)胞有桿菌污染,棄掉培養(yǎng)基,,用PBS清洗3遍,;
b. 然后按1:2000 比例加入類芽孢桿菌去除劑,即:邊加邊搖勻,;
c. 每天處理一次,,類芽孢桿菌去除劑連續(xù)處理3-4天,即可*清除桿菌污染,。
除以上污染源外,,配液消毒問題、操作問題也是污染原因之一,。關(guān)于培養(yǎng)基的無菌狀況,,取培養(yǎng)基至培養(yǎng)瓶中(不加細(xì)胞),37℃試培養(yǎng)一段時間后觀察,,如果沒有細(xì)菌生長就是操作及細(xì)胞培養(yǎng)箱環(huán)境的問題,。
★CQ★細(xì)胞培養(yǎng),尤其是細(xì)胞系的培養(yǎng),,就細(xì)胞消化而言,,多做、善于總結(jié),,就可以把細(xì)胞養(yǎng)的越來越好,。
★CQ★絕大部分細(xì)胞消化只要用胰酶潤洗一遍即可:
吸去胰酶后,殘留的那些無法計算體積的附著在細(xì)胞表面的微量胰酶在37度一般不到2min足夠消化細(xì)胞(絕大部分1min不到),。對于這些細(xì)胞原則上不要用胰酶孵育細(xì)胞,,連續(xù)這樣傳代,對細(xì)胞傷害很大,。簡單的程序是PBS潤洗吸去,,胰酶潤洗吸去,然后37度消化。
★CQ★什么算是消化好了呢,?
不需要把細(xì)胞全部消化成間隔分布很離散的單個圓形才算消化好了,,一般你肉眼觀察貼壁細(xì)胞層,只要能移動了,,多半呈沙壯移動,,其實已經(jīng)可以了。
一般能移動了,,說明細(xì)胞與培養(yǎng)基質(zhì)材料的附著已經(jīng)消失了,細(xì)胞之間的附著也已經(jīng)消失了,,細(xì)胞已經(jīng)獨立分布了(雖然沒有呈現(xiàn)很廣的離散分布),。這個時候應(yīng)該停止消化,不要等到看到鏡下所有細(xì)胞都分離得非常好,,間隙很大,,才停止。
細(xì)胞就是*成單個細(xì)胞懸液,,之后在貼壁的過程中仍然會聚集,,這個是貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞,尤其是腫瘤細(xì)胞的一個特性,,你可以嘗試,,準(zhǔn)備100%的單個細(xì)胞懸液,貼壁后觀察細(xì)胞,,仍然是幾個幾個細(xì)胞聚集在一起,。
一些懸浮培養(yǎng)細(xì)胞也是如此,容易聚集,,不要過幾個小時就拿出來吹打成單細(xì)胞懸液,。細(xì)胞只要能從基質(zhì)上脫離下來,即使是成片的(比如Calu-3細(xì)胞),,吹打不超過20次(一般10次即可),,成小規(guī)模聚集(10個細(xì)胞左右)是正常的,不要再去延長消化時間,,等待單細(xì)胞懸液出現(xiàn),。
★CQ★比較難消化的細(xì)胞:
潤洗方法5min還不能消化,以結(jié)腸癌細(xì)胞為例,,比如HCT15,、LS411和KM12細(xì)胞,胰酶消化,,一般10 cm 培養(yǎng)皿,,一次zui多加入300ul-500ul就足夠了。即使這樣難消化的細(xì)胞,一般不超過5min,,即可見細(xì)胞成片移動,,就應(yīng)該停止消化。一些正常細(xì)胞也會有難消化的時候,,比如tsDC細(xì)胞,,用胰酶孵育,3min左右即可看到成片沙狀移動,。
★CQ★常規(guī)的細(xì)胞實驗,,受消化影響不是很大:
如果不用胰酶去孵育而使用潤洗的方法消化的話(難消化細(xì)胞例外)。但少數(shù)實驗,,比如病毒包裝,,對細(xì)胞代數(shù),對細(xì)胞狀態(tài)要求*,。這個時候,,胰酶消化,就是潤洗,,都會對細(xì)胞包裝病毒的能力有影響,,傳代次數(shù)一多,細(xì)胞包裝能力就會逐漸下降,。這個時候都不用胰酶消化,,用一些鹽溶液(不是EDTA液)即可。這些鹽溶液通過影響細(xì)胞外基質(zhì)相關(guān)酶的活性,,來使得細(xì)胞脫離基質(zhì)附著表面,,但不切割任何蛋白。
★CQ★EDTA的作用:
許多人不用胰酶,,只用EDTA,,或者用胰酶/EDTA聯(lián)合作用。這里要明白,,胰酶切割細(xì)胞外基質(zhì)的一些負(fù)責(zé)粘連和附著的蛋白,,而EDTA通過螯合Ca離子,作用于整聯(lián)蛋白的活性,,所以EDTA的作用更加溫和,。有的人在胰酶里添加一些EDTA,或者對付特別難消化的細(xì)胞,,添加多一些EDTA,,就是這個道理。一般不要試圖延長消化時間(如果10min還消化不*的話),,而應(yīng)該想其它辦法,。
★CQ★PBS洗滌:
消化之前用PBS洗滌,,是常見的操作,因為血清中含有抑制胰酶的蛋白,。對于一些難消化細(xì)胞,,可以配制不含Ca,Mg離子的PBS,,因為這些離子也會抑制胰酶的活性,。但對于絕大部分細(xì)胞用胰酶或者EDTA溶液潤洗即可消化,不需要配制不含Ca,,Mg離子的溶液,。
每段時間定期對細(xì)胞房、培養(yǎng)箱&水盤,、水浴鍋,、廢液桶等容易染菌的個角落細(xì)菌、真菌等微生物的清除,,每次操作完都整理好細(xì)胞房,,帶好手套,、口罩,、鞋套,防止人為因素污染,。一旦發(fā)現(xiàn)污染,,及時處理。
★CQ★細(xì)胞培養(yǎng),,尤其是細(xì)胞系的培養(yǎng),,就細(xì)胞消化而言,多做,、善于總結(jié),,就可以把細(xì)胞養(yǎng)的越來越好。
★CQ★絕大部分細(xì)胞消化只要用胰酶潤洗一遍即可:
吸去胰酶后,,殘留的那些無法計算體積的附著在細(xì)胞表面的微量胰酶在37度一般不到2min足夠消化細(xì)胞(絕大部分1min不到),。對于這些細(xì)胞原則上不要用胰酶孵育細(xì)胞,連續(xù)這樣傳代,,對細(xì)胞傷害很大,。簡單的程序是PBS潤洗吸去,胰酶潤洗吸去,,然后37度消化,。
★CQ★什么算是消化好了呢?
不需要把細(xì)胞全部消化成間隔分布很離散的單個圓形才算消化好了,,一般你肉眼觀察貼壁細(xì)胞層,,只要能移動了,多半呈沙壯移動,其實已經(jīng)可以了,。
一般能移動了,,說明細(xì)胞與培養(yǎng)基質(zhì)材料的附著已經(jīng)消失了,細(xì)胞之間的附著也已經(jīng)消失了,,細(xì)胞已經(jīng)獨立分布了(雖然沒有呈現(xiàn)很廣的離散分布),。這個時候應(yīng)該停止消化,不要等到看到鏡下所有細(xì)胞都分離得非常好,,間隙很大,,才停止。
細(xì)胞就是*成單個細(xì)胞懸液,,之后在貼壁的過程中仍然會聚集,,這個是貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞,尤其是腫瘤細(xì)胞的一個特性,,你可以嘗試,,準(zhǔn)備100%的單個細(xì)胞懸液,貼壁后觀察細(xì)胞,,仍然是幾個幾個細(xì)胞聚集在一起,。
一些懸浮培養(yǎng)細(xì)胞也是如此,容易聚集,,不要過幾個小時就拿出來吹打成單細(xì)胞懸液,。細(xì)胞只要能從基質(zhì)上脫離下來,即使是成片的(比如Calu-3細(xì)胞),,吹打不超過20次(一般10次即可),,成小規(guī)模聚集(10個細(xì)胞左右)是正常的,不要再去延長消化時間,,等待單細(xì)胞懸液出現(xiàn),。
★CQ★比較難消化的細(xì)胞:
潤洗方法5min還不能消化,以結(jié)腸癌細(xì)胞為例,,比如HCT15,、LS411和KM12細(xì)胞,胰酶消化,,一般10 cm 培養(yǎng)皿,,一次zui多加入300ul-500ul就足夠了。即使這樣難消化的細(xì)胞,,一般不超過5min,,即可見細(xì)胞成片移動,就應(yīng)該停止消化,。一些正常細(xì)胞也會有難消化的時候,,比如tsDC細(xì)胞,,用胰酶孵育,3min左右即可看到成片沙狀移動,。
★CQ★常規(guī)的細(xì)胞實驗,,受消化影響不是很大:
如果不用胰酶去孵育而使用潤洗的方法消化的話(難消化細(xì)胞例外)。但少數(shù)實驗,,比如病毒包裝,,對細(xì)胞代數(shù),對細(xì)胞狀態(tài)要求*,。這個時候,,胰酶消化,就是潤洗,,都會對細(xì)胞包裝病毒的能力有影響,,傳代次數(shù)一多,細(xì)胞包裝能力就會逐漸下降,。這個時候都不用胰酶消化,,用一些鹽溶液(不是EDTA液)即可。這些鹽溶液通過影響細(xì)胞外基質(zhì)相關(guān)酶的活性,,來使得細(xì)胞脫離基質(zhì)附著表面,,但不切割任何蛋白。
★CQ★EDTA的作用:
許多人不用胰酶,,只用EDTA,,或者用胰酶/EDTA聯(lián)合作用,。這里要明白,,胰酶切割細(xì)胞外基質(zhì)的一些負(fù)責(zé)粘連和附著的蛋白,而EDTA通過螯合Ca離子,,作用于整聯(lián)蛋白的活性,,所以EDTA的作用更加溫和。有的人在胰酶里添加一些EDTA,,或者對付特別難消化的細(xì)胞,,添加多一些EDTA,就是這個道理,。一般不要試圖延長消化時間(如果10min還消化不*的話),,而應(yīng)該想其它辦法。
★CQ★PBS洗滌:
消化之前用PBS洗滌,,是常見的操作,,因為血清中含有抑制胰酶的蛋白。對于一些難消化細(xì)胞,,可以配制不含Ca,,Mg離子的PBS,,因為這些離子也會抑制胰酶的活性。但對于絕大部分細(xì)胞用胰酶或者EDTA溶液潤洗即可消化,,不需要配制不含Ca,,Mg離子的溶液。
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>> 加雙抗只是有一定的預(yù)防作用,,但不能避免污染
現(xiàn)在很多細(xì)菌對雙抗都有耐藥性,,所以加了也不一定就能殺死;雙抗的保存方式的問題,,青霉素在37℃下很快就會分解掉,;污染的細(xì)菌是不是在抗菌譜中;如果是真菌的話雙抗就沒有什么卵用的,;
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還有就是無血清培養(yǎng)時建議zuihao不加雙抗,,因為沒有血清的保護,,細(xì)胞此時是比較脆弱的,很容易受到雙抗的毒副作用影響,。
加雙抗并不是*除菌的方法,。要防止污染除了使用雙抗,還要注意污染源大多來自換液和消化時的操作不正規(guī),,如果你在處理細(xì)胞得操作過程不規(guī)范,,即便加入雙抗也很難避免污染。就像抵抗力再強的漢紙,,如果任由自己在寒風(fēng)中,、雨雪天氣里任性,,像一顆海草隨風(fēng)飄搖的話,終有崩潰的一天,。所以保證細(xì)胞處理過程或培養(yǎng)基配制過程中的無菌操作才是關(guān)鍵,。
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很多實驗室在遇到細(xì)胞污染,準(zhǔn)確的說是懷疑細(xì)胞受到污染(原因不明導(dǎo)致的細(xì)胞狀態(tài)不好)時,,都會選擇一種處理方式——扔掉,!害怕他會傳染到其他的細(xì)胞,但是往往你們?nèi)拥舻氖?ldquo;受害者”,,而沒找到“真兇”,。
并不是所有的細(xì)胞污染都能用扔掉解決,也并不是所有的細(xì)胞污染都可以用同一種試劑解決,。
辨別細(xì)胞狀態(tài),,找到根源,“對癥下藥”才是關(guān)鍵,。
(1)細(xì)菌污染
狀態(tài):細(xì)菌在普通倒置顯微鏡下為黑色細(xì)沙狀,,根據(jù)感染細(xì)菌的不同,可有不同的外形,,培養(yǎng)液一般會渾濁變黃,,對細(xì)胞生長影響明顯。
解決方法:
1.仔細(xì)檢查一下器皿的滅菌情況,,是否在高壓滅菌時放氣時間和壓力足夠,!尤其是和儲存培養(yǎng)液接觸的移液管等物品,連續(xù)兩次污染的話有可能造成儲存液污染,,一定要檢查培養(yǎng)液是否存在渾濁現(xiàn)象,!
2.可在培養(yǎng)液或血清中加支原體預(yù)防劑,以及的細(xì)菌清除劑,。
(2)霉菌及真菌污染
狀態(tài):肉眼觀察培養(yǎng)基,,發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)基顏色基本無變化,,不渾濁,,但是培養(yǎng)基中由絮狀漂浮物,顯微鏡下觀察,,若感染真菌可看到分叉細(xì)絲狀的結(jié)構(gòu)(不同種類結(jié)構(gòu)不同),,若感染霉菌,顯微鏡下可看到片狀的結(jié)構(gòu),,不透明,,真菌及霉菌對影響細(xì)胞的生長影響不大。
解決方法:
1.保證細(xì)胞房的干凈整潔,,干燥的環(huán)境(潮濕的環(huán)境利于霉菌及真菌的生長),。
2.控制外來人員進(jìn)出實驗室,。
3.對實驗室及培養(yǎng)箱進(jìn)行*消毒,推薦使用專門針對細(xì)胞培養(yǎng)環(huán)境的抑菌劑,。
4.若細(xì)胞非常珍貴,,且不易獲得,可以對污染的細(xì)胞采取如下操作,。
懸浮細(xì)胞:收集細(xì)胞并離心,,用PBS漂洗,重復(fù)此操作數(shù)次,。貼壁細(xì)胞:用PBS輕輕沖洗細(xì)胞,,重復(fù)此操作數(shù)次。加入殺滅真菌
(3)支原體感染
狀態(tài):顯微鏡下很難捕捉,,培養(yǎng)液一般不會渾濁,,國內(nèi)血清很多沒做支原體陰性檢測,而支原體是牛血清中zui常見的微生物之一,。而且它不能用過濾的辦法除去,。支原體感染細(xì)胞以后,細(xì)胞病變不很明顯,,只是生長緩慢,,直至慢慢凋亡。
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(4)黑膠蟲污染
狀態(tài):可以穿透濾膜,,也可以通過空氣傳播,低倍下為黑色點狀,,高倍鏡下可看見黑色的小蟲游來游去,,培養(yǎng)液不渾濁,一般不會太影響,,細(xì)胞還可以用,。常常可在同一批號的血清養(yǎng)的細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)類似現(xiàn)象,。
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(5)桿菌污染
狀態(tài):類芽孢桿菌(Paenibacillus Ash,Priest&Collin,1994)呈桿狀,,革蘭氏染色陽性,、陰性或可變,以周生鞭毛運動,。當(dāng)細(xì)胞出現(xiàn)類芽孢桿菌污染,,會在顯微鏡下看到一些桿狀游動的小蟲子.
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除以上污染源外,,配液消毒問題、操作問題也是污染原因之一,。關(guān)于培養(yǎng)基的無菌狀況,,取培養(yǎng)基至培養(yǎng)瓶中(不加細(xì)胞),37℃試培養(yǎng)一段時間后觀察,,如果沒有細(xì)菌生長就是操作及細(xì)胞培養(yǎng)箱環(huán)境的問題,。
★CQ★TIPs:細(xì)胞操作及細(xì)胞培養(yǎng)箱環(huán)境問題如何解決?
1,、提高細(xì)胞操作技巧,,禁止交叉使用槍頭,在酒精燈火焰5公分距離內(nèi)操作,。
2,、定期對細(xì)胞培養(yǎng)箱消毒,培養(yǎng)箱水盤中的水也要定期更換,,并使用無菌水,。
3、進(jìn)入細(xì)胞房之前及在無菌操作臺操作細(xì)胞實驗之前需使用紫外燈照射30min,。定期使用細(xì)胞房除菌劑對細(xì)胞房空間進(jìn)行處理,。
4、每次開培養(yǎng)箱之前需用酒精消毒雙手,。
5,、用培養(yǎng)箱除菌劑和水盤抑菌劑定期對培養(yǎng)箱進(jìn)行消毒。
6,、配制的培養(yǎng)基需驗證無菌后方可進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)。