植物清除活性氧

注意：正式測定之前選擇 2-3 個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)測定,。

測定意義：

APX 是植物清除活性氧的重要抗氧化酶之一，也是抗壞血酸代謝的關(guān)鍵酶之一,。APX 具有多種同功酶,，分別定位于葉綠體、胞質(zhì),、線粒體,、過氧化物和乙醛酸體，以及過氧化體和類囊體膜上,。APX 催化 H2O2 氧化 AsA,，是植物 AsA 的主要消耗者,。APX 的活性直接影響到 AsA 的含量，APX 與 AsA 具有一定的負(fù)相關(guān)性,。

測定原理：

APX  催化催化 H2O2 氧化 AsA,，通過測定 AsA 氧化速率，來計算得 APX 活性,。

自備儀器用品：

低溫離心機(jī),、紫外分光光度計、1mL 石英比色皿,、移液槍,、研缽、冰和蒸餾水,。

試劑組成和配制：

試劑一：液體 90mL×1 瓶,，4℃保存。

試劑二：粉劑×1 瓶,，4℃保存,。臨用前加 5 mL 蒸餾水充分溶解。

試劑三：液體 5mL×1 支,，4℃保存,。

粗酶液提取：

按照組織質(zhì)量（g）：試劑一體積(mL)為 1：5~10 的比例（建議稱取約 0.1g 組織,，加入 1mL 試劑一）進(jìn)行冰浴勻漿,。13000g,，4℃離心 20min,，取上清置冰上待測。

測定：

1. 分光光度計預(yù)熱 30 min,，調(diào)節(jié)波長到 290nm,，用蒸餾水調(diào)零。

2. 試劑一在 25℃中預(yù)熱 30min,。

3. 依次在 1mL 石英比色皿中加入 100μL 上清液,、700μL 預(yù)熱的試劑一、100μL 試劑二和

100μL 試劑三,，迅速混勻后在 290nm 測定 10 s 和 130 s 光吸收 A1 和 A2,，△A=A1-A2。

APX 活性計算公式：

(1) 按樣本蛋白濃度計算

活性單位定義：每毫克蛋白每分鐘氧化 1μmol AsA 為 1 個酶活單位,。

APX(μmol/min/mg prot) = △A÷(ε×d）×V 反總×10⁶÷(Cpr×V 樣)÷T

=1.79×△A÷ Cpr

（2）按樣本質(zhì)量計算

活性單位定義：每 g 組織每分鐘氧化 1μmol AsA 為 1 個酶活單位,。 APX(μmol/min/g 鮮重 ) = △A÷(ε×d）×V 反總×10⁶÷(W×V 樣÷V 樣總)÷T

=1.79×△A ÷W

ε：AsA 在 290nm 處摩爾吸光系數(shù)為 2.8×10³ L/mol/cm；d：比色皿光徑（cm）,，1 cm,；V 反總：反應(yīng)體系總體積（L）,，1000μL=1×10^-3 L；10⁶：1mol=1×10⁶μmol,；V 樣：加入反應(yīng)體系中上清液體積（mL）,，100μL=0.1 mL；V 樣總：加入提取液體積,，1mL,；Cpr：上清液蛋白質(zhì)濃度（mg/mL），需要另外測定,，建議使用本公司 BCA 蛋白質(zhì)含量測定試劑盒,；W：樣本質(zhì)量，g,；T：催化反應(yīng)時間（min），2min,。

注意事項：

配制好的試劑二 4℃保存，并且 3 天內(nèi)使用完,。

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