實驗試劑
人類胚胎腎（HEK）293T細胞
腺病毒轉移載體質粒
腺病毒包裝載體PLP1,，pLP2（之前），PLP / VSVG
DMEM培養(yǎng)基
青霉素,，鏈霉素-谷氨酰胺（100X）
磷酸鹽緩沖液PBS（-）
胎牛血清
凝聚胺
實驗設備
10-cm的細胞培養(yǎng)皿
50毫升錐形離心管
Steriflip-GP過濾器（0.22微米）
超離心管17.0mL
熒光顯微鏡
生物安全柜
離心機
實驗材料
2.5M氯化鈣溶液：36.75克氯化鈣,，70毫升雙蒸H 2 O，通過0.22μm濾膜過濾,，體積調制100毫升
2X HEPES緩沖：氯化鈉280 mM,，50mM肝素鈉，1.5mM的Na2 HPO4 (pH值7.05）
實驗步驟
腺病毒載體的構建和濃度
第1天： HEK細胞的培養(yǎng)
1．收集預融合的HEK 293T細胞,，細胞培養(yǎng)于*DMEM培養(yǎng)基中（含10％FBS,，50 U/ml的青霉素G和50μg/mL鏈霉素的，pH值7.35）,。
2．將收集的濃度為1×106 的HEK 293T細胞接種于直徑10cm的培養(yǎng)皿中,，加入10mL*DMEM培養(yǎng)基。漩渦震蕩使細胞均勻分布,， 37℃培養(yǎng)24h,。
第2天：轉染
3．觀察第1天培養(yǎng)的細胞，細胞應鋪滿約60％,。
注意：細胞長滿80％會導致收獲病毒時PH偏低,。
4．更換DMEM培養(yǎng)基（10％FBS，10mL）,，繼續(xù)孵育于二氧化碳培養(yǎng)箱30min,。
5．將10µg腺病毒轉移載體與10µg包裝混合物混合,，用無菌ddH2 O稀釋質粒至總體積450μL。
6．向質粒中加入50μL 2.5 M氯化鈣混勻,，然后加入500μl 2xHEPES緩沖液,，渦旋。
7．將所有的轉染混合物加入（散開）培養(yǎng)板,，輕輕震蕩,，繼續(xù)培養(yǎng)于5％二氧化碳培養(yǎng)箱過夜（16h）。
第3天：觀察細胞和更換培養(yǎng)基
8．觀察細胞
注意：細胞不能達到飽和狀態(tài),，應該有供細胞分裂生長的空間,，因為細胞鋪滿后培養(yǎng)基的pH值會迅速下降。
9．吸出培養(yǎng)基,，加入5mL預熱的PBS（-）洗兩次細胞,，然后加入9.5mL新鮮培養(yǎng)液的DMEM培養(yǎng)基， 5％CO 2 培養(yǎng)箱繼續(xù)培育,，37℃過夜,。
第4天：收獲細胞和濃縮病毒顆粒
10．轉染40h后收集上清液。
注意：收集時培養(yǎng)基顏色應該是紅色的（酚紅的顏色）,，（pH值7.20或更高）在這個pH值內病毒培養(yǎng)較好,，因此，不要使用從第二次收獲的細胞,。為了獲得優(yōu)先轉染膠質細胞的腺病毒載體,，應使用病毒轉染后2d或3d的細胞。此外,，最好使用充足胎牛血清培養(yǎng)的細胞,。
11．通過0.22微米的過濾器過濾，清除上清液中的細胞碎片,。
12．超速離心濃縮病毒顆粒,。4℃，用吊桶式轉頭離心上清120000xg,，1.5h,。將2個培養(yǎng)板（約18mL）的上清濃縮于一管。
13．倒掉上清液,，沉淀幾乎看不見,。
14．用90μL PBS（-）重懸病毒顆粒。病毒懸浮液,，可用于在體外和體內實驗：但是,，如果需要純凈級的質量，可通過如下步驟純化病毒,。
腺病毒載體滴度的測定
腺病毒載體的滴度通過HeLa細胞的轉染來測定,。雖然滴度可以在13步后就可以計算，但為了縮短整個過程我們通常從第3天開始計算,。
第3天：HeLa細胞播種
15．將 1×105 的的HeLa細胞接種于含1mLDMEM培養(yǎng)基（10％FBS）的12孔板,，添加聚凝胺至濃度為6 µg/ml。在5％CO2 培養(yǎng)箱孵育,，37℃過夜,。
第4天：腺病毒載體的感染HeLa細胞
16．用PBS 10倍梯度稀釋的病毒（稀釋從10 -3 到10 -6 ）。實際測試的范圍將取決于病毒制劑的濃度,。17．將每個梯度稀釋的病毒加入單層生長的HeLa細胞,，輕輕搖勻， 337℃培養(yǎng),。
第5-8天：腺病毒載體的滴度測定
18．細胞再生長3天（感染后總88h）,，綠色熒光蛋白染色后48h可見。然而,，這個時間根據(jù)滴定用腺病毒載體和細胞株不同而有所不同,。
19．檢測標記細胞百分比：如果標記是綠色熒光蛋白，計數(shù)綠色熒光蛋白表達的細胞,。
20．如前所述計算生物滴度（TU/ml,，轉染單位）。
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