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翌圣生物科技（上海）股份有限公司
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12203ES08一步法DNA建庫試劑盒
| 參考價: | 面議 |
具體成交價以合同協(xié)議為準(zhǔn)- 12203ES08 產(chǎn)品型號
- Yeasen/翌圣生物 品牌
- 生產(chǎn)商 廠商性質(zhì)
- 上海市 所在地
訪問次數(shù)：2076更新時間：2022-02-09 17:04:33
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產(chǎn)品簡介
| 供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 8 T |
|---|---|---|---|
| 貨號 | 12203ES08 | 應(yīng)用領(lǐng)域 | 生物產(chǎn)業(yè) |
產(chǎn)品介紹
Hieff NGS® OnePot DNA Library Prep Kit for Illumina®
“一步法”DNA建庫試劑盒
產(chǎn)品信息
產(chǎn)品名稱 | 產(chǎn)品編號 | 規(guī)格 | 價格（元） |
Hieff NGS® OnePot DNA Library Prep Kit for Illumina® “一步法”DNA建庫試劑盒 | 12203ES08 | 8 T | 3683.00 |
12203ES24 | 24 T | 7583.00 | |
12203ES96 | 96 T | 28663.00 |
產(chǎn)品描述
Hieff NGS® OnePot DNA Library Prep Kit for Illumina®是針對Illumina®高通量測序平臺專業(yè)開發(fā)設(shè)計的新一代酶切法建庫試劑盒。與傳統(tǒng)的建庫法比較,，本品采用高質(zhì)量的片段化酶,，擺脫了繁瑣的超聲過程,，同時簡化了操作流程,，將片段化模塊與末端修復(fù)模塊合二為一，極大的降低了建庫的時間和成本,。本試劑盒具有優(yōu)xiu的文庫轉(zhuǎn)化率,，可應(yīng)用于常規(guī)動植物基因組、微生物基因組等樣本,，同時能兼容FFPE DNA樣本的建庫,。經(jīng)測序驗證，不同GC含量的樣本,，均可獲得優(yōu)異的測序結(jié)果,，文庫覆蓋度高，均一性好,，偏好性低,，使建庫變得更加簡單高效。
- 適用500 pg-1 μg的基因組DNA,、全長cDNA等樣本
- 高質(zhì)量片段化酶,，可隨機切割雙鏈DNA，酶切片段無偏好性
- 片段化,、末端修復(fù)/加A一步完成
- 強擴增效率的高保真酶,，顯著提高文庫質(zhì)量及產(chǎn)量
- 適用于FFPE DNA樣本
- 嚴(yán)格的批次性能與穩(wěn)定性質(zhì)控
產(chǎn)品組分
運輸與保存方法
冰袋運輸。所有組分-20°C保存,，有效期1年,。
注意事項
一、關(guān)于操作
1. 為了您的安全和健康,，請穿實驗服并戴一次性手套操作,。
2. 請于使用前將試劑盒各組分置于室溫解凍。解凍后上下顛倒數(shù)次充分混勻,，短暫離心后置于冰上待用,。
3. 配制各步驟反應(yīng)液時推薦使用移液器吹打混勻或輕輕振蕩，劇烈振蕩可能會造成文庫產(chǎn)出下降,。
4. 為避免樣品交叉污染,，推薦使用帶濾芯的槍頭，吸取不同樣品時請更換槍頭。
5. 推薦在帶熱蓋的PCR儀中進行各步驟反應(yīng),，使用前應(yīng)預(yù)熱PCR儀至反應(yīng)溫度附近,。
6. PCR產(chǎn)物因操作不當(dāng)極容易產(chǎn)生氣溶膠污染，進而影響實驗結(jié)果準(zhǔn)確性,。推薦將PCR反應(yīng)體系配制區(qū)和PCR產(chǎn)物純化檢測區(qū)進行強制性的物理隔離,；使用的移液器等設(shè)備；并定時對各實驗區(qū)域進行清潔（使用0.5%次氯酸鈉或10%漂白劑進行擦拭清理）,，以保證實驗環(huán)境的潔凈度,。
二、關(guān)于DNA///片段化
1. 本試劑盒兼容范圍為500 pg – 1 μg Input DNA,。應(yīng)盡可能使用A260/A280 = 1.8-2.0的高質(zhì)量Input DNA,。
2. 若Input DNA中引入高濃度金屬離子螯合劑或其他鹽，可能會影響后續(xù)實驗,，建議將DNA稀釋在ddH2O或不含EDTA的10 mM Tris Buffer (pH 7.5-8.0)中進行片段化,。
3. 對于常規(guī)的高質(zhì)量基因組DNA，酶切時間參考表5,，本試劑盒片段化偏好低,，耐受各種GC含量的模板。對于不同降解程度的FFPE樣本,，酶切時間參考表6,。以上為推薦時間，需客戶在自己的實驗體系中進行微調(diào),，以達到*效果,。
4.為保證優(yōu)質(zhì)精確的片段化效果，片段化反應(yīng)配制過程請于冰上操作,。
5. 針對FFPE DNA建庫,，若樣本質(zhì)量不佳，客戶對當(dāng)前建庫產(chǎn)量不滿意,，可選購我公司的FFPE DNA Repair Reagent (Cat#12606)對FFPE DNA進行修復(fù),，具體使用方法可參考此產(chǎn)品說明書。該試劑可與片段化末修加A過程同時進行,，無需額外的操作,。
三、關(guān)于接頭連接（Adapter Ligation）
1. 針對Illumina®測序平臺,，Yeasen提供48種Barcoded Adapters: Hieff NGS® Complete Adapter Kit for Illumina®, Set 1~Set 4（Cat#12615~Cat#12618）,；單端 96種 Index Primers: Hieff NGS® 96 Single Index Primers Kit for Illumina® , Set 1~Set 2 （Cat#12611~Cat#12612）；雙端 384 種 Index Primers: Hieff NGS® 384 Dual Index Primers Kit for Illumina® , Set 1~Set 2 （Cat#12613~Cat#12614）,。
2. Adapter的質(zhì)量和使用濃度直接影響連接效率及文庫產(chǎn)量,。Adapter用量過高可能會產(chǎn)生較多Adapter Dimer,；用量較低可能會影響連接效率及文庫產(chǎn)量。表1列舉了使用本試劑盒,，不同Input DNA量推薦的Adapter使用量,。
表1 500 pg-1 μg Input DNA推薦的Adapter使用濃度
Input DNA | Adapter : Input DNA摩爾比 | Input DNA | Adapter : Input DNA摩爾比 |
1 μg | 10:1 | 50 ng | 100:1 |
500 ng | 20:1 | 25 ng | 200:1 |
250 ng | 40:1 | 1 ng | 200:1 |
100 ng | 100:1 | 500 pg | 400:1 |
【注】：Input DNA摩爾數(shù)（pmol）≈ Input DNA質(zhì)量(ng)/ [0.66 × Input DNA平均長度（bp）]。
四,、關(guān)于磁珠純化與分選（Bead-based Clean Up and Size Selection）
1. DNA///片段長度分選步驟可選擇在末端修復(fù)/dA尾添加之前,，或接頭連接后，或文庫擴增后進行,。
2. 當(dāng)Input DNA質(zhì)量≥50 ng,，您可選擇在接頭連接后分選；如Input DNA質(zhì)量<50 ng,，建議您在文庫擴增后進行分選,。
3. Ligation Enhancer中包含高濃度的PEG，會對雙輪分選產(chǎn)生顯著影響,。因此，如在接頭連接后進行長度分選,，必須先進行純化步驟,，再進行雙輪分選步驟；如在末端修復(fù)/dA尾添加之前或文庫擴增后進行長度分選,，可直接進行雙輪磁珠分選步驟,。
4. 磁珠使用前應(yīng)先平衡至室溫，否則會導(dǎo)致得率下降,、分選效果不佳,。
5. 磁珠每次使用前都應(yīng)充分振蕩混勻或使用移液器上下吹打充分混勻。
6. 轉(zhuǎn)移上清時,，請勿吸取磁珠,，即使微量殘留都將影響后續(xù)文庫質(zhì)量。
7. 磁珠漂洗使用的80%乙醇應(yīng)現(xiàn)用現(xiàn)配,，否則將影響回收效率,。
8. 進行長度分選時，初始樣品體積應(yīng)盡量≥100 μL,，不足時請用超純水補齊,。以防因樣品體積太小導(dǎo)致移液誤差增大。
9. 產(chǎn)物洗脫前應(yīng)將磁珠置于室溫干燥,。干燥不充分容易造成無水乙醇?xì)埩粲绊懞罄m(xù)反應(yīng),；過分干燥又會導(dǎo)致磁珠開裂進而降低純化得率。通常情況下,，室溫干燥3-5 min足以讓磁珠充分干燥,。
10. DNA純化或長度分選產(chǎn)物如需保存,，可使用TE Buffer洗脫，產(chǎn)物可于4°C可保存1-2周,，-20°C可保存1個月,。
五、關(guān)于文庫擴增（Library Amplification）
文庫擴增步驟需要嚴(yán)格控制擴增循環(huán)數(shù),。循環(huán)數(shù)不足,，將導(dǎo)致文庫產(chǎn)量低；循環(huán)數(shù)過多,，又將導(dǎo)致文庫偏好性增加,、重復(fù)度增加、嵌合產(chǎn)物增加,、擴增突變積累等多種不良后果,。表2列舉了使用本試劑盒，獲得1 μg文庫的推薦循環(huán)數(shù),。
表2 500 pg-1 μg Input DNA獲得1 μg產(chǎn)物擴增循環(huán)數(shù)推薦表
Input DNA（ng） | Number of cycles required to generate |
1 μg | |
1 μg | 3 - 5** |
500 ng | 4 - 6 |
200 ng | 5 - 7 |
50 ng | 7 - 9 |
1 ng | 13 - 15 |
500 pg | 14 - 16 |
【注】：**如果使用了不完整的接頭,，需要擴增1-3個循環(huán)，形成完整的接頭,。建庫過程中若進行片段分選,，擴增時請參照較高循環(huán)數(shù)擴增。
六,、關(guān)于文庫質(zhì)檢（Library Quality Analysis）
1. 通常情況下,，構(gòu)建好的文庫可通過長度分布檢測和濃度檢測來進行質(zhì)量評價。
2. 文庫濃度檢測可使用：基于雙鏈DNA熒光染料的方法,，如Qubit®,、PicoGreen®等；基于qPCR定量的方法,。
3. 文庫濃度檢測不可使用：基于光譜檢測的方法,，如NanoDrop®等。
4. 推薦使用qPCR方法進行文庫濃度檢測：Qubit®,、PicoGreen®等基于雙鏈DNA熒光染料的濃度測定方法時,，無法有效區(qū)分單端連接Adapter的產(chǎn)物、兩端均未連接Adapter的產(chǎn)物以及其他不完整雙鏈結(jié)構(gòu)產(chǎn)物,；qPCR定量基于PCR擴增原理,，僅定量樣品中兩端Adapter完整的文庫（即可測序的文庫），可排除單端或雙端都不連接Adapter的不可測序文庫干擾,。
5. 文庫長度分布檢測,，可通過Agilent Bioanalyzer 2100等基于毛細(xì)管電泳或微控流原理的設(shè)備進行檢測。
使用方法
一,、自備材料
1. 純化磁珠：Cat#12601,，Hieff NGS® DNA Selection Beads或Cat#A63880,，AMPure XP Beads或其他等效產(chǎn)品。
2. DNA質(zhì)控：Agilent Technologies 2100 Bioanalyzer或其他等效產(chǎn)品,。
3. DNA Adapter：Yeasen提供48種Barcoded Adapters: Hieff NGS® Complete Adapter Kit for Illumina®, Set 1~Set 4（Cat#12615~Cat#12618）,；單端 96種 Index Primers: Hieff NGS® 96 Single Index Primers Kit for Illumina® , Set 1~Set 2 （Cat#12611~Cat#12612）；雙端 384 種 Index Primers: Hieff NGS® 384 Dual Index Primers Kit for Illumina® , Set 1~Set 2 （Cat#12613~Cat#12614）,?；蚱渌刃Мa(chǎn)品。
4. 其他材料：無水乙醇,、滅菌超純水,、TE Buffer（10 mM Tris-HCl，pH 8.0-8.5+0.1 mM EDTA）,、低吸附EP管,、PCR管、磁力架,、PCR儀等,。
二、操作流程
圖1 OnePot DNA建庫試劑盒操作流程
三,、操作步驟
3.1 DNA///片段化/末端修復(fù)/dA尾添加（DNA Fragment/End Preparation/dA-Tailing）
該步驟將基因組DNA///片段化,，同時進行末端修復(fù)及dA尾添加。
1. 將表3中各試劑解凍后,，顛倒混勻，置于冰上備用,。
2. 于冰上配制表3反應(yīng)體系,。
表3 DNA///片段化/末端修復(fù)/dA尾添加 PCR反應(yīng)體系
名稱 | 體積（μL） |
Input DNA | x |
Smearase® Mix | 10 |
ddH2O | Up to 60 μL |
3. 使用移液器輕輕吹打或低速振蕩混勻，并短暫離心將反應(yīng)液離心至管底,。
4. 將上述PCR管置于PCR儀,，設(shè)置表4所示反應(yīng)程序，進行DNA///片段化,，末端修復(fù)及dA尾添加反應(yīng),。
表4 DNA///片段化/末端修復(fù)/dA尾添加 PCR反應(yīng)程序
溫度 | 時間 |
熱蓋105°C | On |
4 °C | 1 min* |
30 °C | 3-20 min** |
72 °C | 20 min |
4 °C | Hold |
【注】：*DNA///片段化過程為有效控制片段化效果，避免過度酶切,，反應(yīng)程序可預(yù)先設(shè)置4°C,，待模塊溫度降至4°C時，將PCR管放入PCR儀即可,。**對于完整的基因組DNA,，酶切時間參考表5；對于質(zhì)量不一的FFPE DNA樣本,，酶切時間參考表6,。
表5 常規(guī)基因組DNA///片段化時間選擇表 表6 FFPE DNA///片段化時間選擇表
【注】：*DIN為DNA Integrity Number,，是用Agilent 2200來定義FFPE DNA降解程度的一種方法，詳見圖2,。
圖2 Agilent 2200定義不同降解程度樣本的DIN值
3.2 接頭連接（Adapter Ligation）
該步驟將3.1步驟的產(chǎn)物末端,，連接特定的Illumina®接頭。
1. 根據(jù)Input DNA量按表1稀釋Adapter至合適濃度,。
2. 將表7中各試劑解凍后顛倒混勻,，置于冰上備用。
3. 于3.1步驟PCR管中配制表7所示反應(yīng)體系,。
表7 Adapter Ligation PCR體系
名稱 | 體積（μL） |
dA-tailed DNA（3.1步驟產(chǎn)物） | 60 |
Ligation Enhancer | 30* |
Fast T4 DNA Ligase | 5 |
DNA Adapter | 5** |
【注】：*Ligation Enhancer比較粘稠,，請上下顛倒、振蕩,，充分混勻并瞬時離心后使用,。
**本公司接頭濃度與常規(guī)商業(yè)化試劑盒一致，皆為15 μM,。
【接頭添加計算舉例】：當(dāng)Input DNA為100 ng,，Input DNA長度為300 bp時，接頭應(yīng)該添加多少,？
第—步：計算Input DNA摩爾數(shù),。公式：Input DNA摩爾數(shù)（pmol）≈ Input DNA質(zhì)量(ng)/ [0.66 × Input DNA平均長度（bp）]；
Input DNA摩爾數(shù)（pmol）=100÷（0.66×300）=0.5 pmol,；
第二步：計算接頭添加摩爾數(shù),。根據(jù)注意事項三表1查詢接頭添加比例；
根據(jù)表1,，查得Input DNA 100 ng時接頭添加比例100:1,，則接頭添加摩爾數(shù)=100×0.5 pmol=50 pmol；
第三步：計算接頭添加體積,。接頭濃度=15 μmol/L（如使用其他接頭,，濃度需要依據(jù)其他接頭濃度參數(shù)）；
接頭添加體積=接頭添加摩爾數(shù)（50 pmol）÷接頭濃度（15 μmol/L）=3.34 μL（注：15 μmol/L=15 pmol/μL）
綜上,，接頭可添加3.4 μL,，加1.6 μL水補齊至5 μL。（注：接頭大加入體積不超過5 μL）,。
4. 使用移液器輕輕吹打或振蕩混勻,，并短暫離心將反應(yīng)液收集至管底。
5. 將PCR管置于PCR儀中,，設(shè)置表8所示反應(yīng)程序,，進行接頭連接反應(yīng)。
表8 Adapter Ligation PCR反應(yīng)程序
溫度 | 時間 |
熱蓋105°C | Off |
20°C | 15 min |
4°C | Hold |
【注】：當(dāng)Input DNA量較低,，實驗效果不理想時,，可嘗試將連接時間延長一倍,。
3.3 連接產(chǎn)物磁珠純化（Post Ligation Clean Up）
該步驟使用磁珠對3.2步驟的產(chǎn)物進行純化或分選。純化可除去未連接的Adapter或Adapter Dimer等無效產(chǎn)物,。
3.3.1 純化操作步驟：
1. 準(zhǔn)備工作：將Hieff NGS® DNA Selection Beads磁珠由冰箱中取出,，室溫平衡至少30 min。配制80%乙醇,。
2. 渦旋振蕩或充分顛倒磁珠以保證充分混勻,。
3. 吸取60 μL Hieff NGS® DNA Selection Beads（0.6×，Beads:DNA=0.6:1）至Adapter Ligation產(chǎn)物中,，室溫孵育5 min,。
4. 將PCR管短暫離心并置于磁力架中分離磁珠和液體，待溶液澄清后（約5 min）,，小心移除上清,。
5. 保持PCR管始終置于磁力架中，加入200 μL新鮮配制的80%乙醇漂洗磁珠,，室溫孵育30 sec后,，小心移除上清。
6. 重復(fù)步驟5,，總計漂洗兩次,。
7. 保持PCR管始終置于磁力架中，開蓋空氣干燥磁珠至剛剛出現(xiàn)龜裂（不超過5 min）,。
8. 將PCR管從磁力架中取出,，進行洗脫：
1）如產(chǎn)物無需進行片段分選，直接加入21 μL ddH2O,，渦旋振蕩或使用移液器輕輕吹打至充分混勻,，室溫靜置5 min?！咀ⅲ喝缂兓a(chǎn)物如需保存，可使用TE Buffer洗脫】,。將PCR管短暫離心并置于磁力架中靜置,，待溶液澄清后（約5 min），小心移取20 μL上清至新PCR管中,，切勿觸碰磁珠,。
2）如產(chǎn)物需進行雙輪分選，加入102 μL ddH2O,，渦旋振蕩或使用移液器輕輕吹打至充分混勻,，室溫靜置5 min?！咀ⅲ喝缂兓a(chǎn)物如需保存,，可使用TE Buffer洗脫】,。將PCR管短暫離心并置于磁力架中靜置，待溶液澄清后（約5 min）,，小心移取100 μL上清至新PCR管中,，切勿觸碰磁珠。
3.3.2 雙輪分選操作步驟：
1. 準(zhǔn)備工作：將Hieff NGS® DNA Selection Beads磁珠由冰箱中取出,，室溫平衡約30 min,。配制80%乙醇。
2. 請渦旋振蕩或充分顛倒磁珠以保證混勻,。
3. 根據(jù)DNA///片段長度要求,，參考表9向上述100 μL DNA上清中加入第—輪分選磁珠，渦旋混勻或移液器吹打10次混勻,。
表9 磁珠文庫分選推薦比例
DNA文庫插入片段大小 | 150-250 bp | 200-300 bp | 300-400 bp | 400-500 bp | 500-600 bp |
DNA文庫大小 | 250-350 bp | 350-450 bp | 450-550 bp | 550-650 bp | 650-750 bp |
第—輪體積比（Beads:DNA） | 0.80× | 0.70× | 0.60× | 0.55× | 0.50× |
第二輪體積比（Beads:DNA） | 0.20× | 0.20× | 0.20× | 0.15× | 0.15× |
【注】：表中“×”表示樣品DNA體積,。如文庫插入片段長度為250 bp，樣品DNA體積為100 μL,，則第—輪分選磁珠使用體積為0.70×100 μL=70 μL,；第二輪分選磁珠使用體積為0.20×100 μL=20 μL；表中所推薦比例是針對于Adapter Ligated Insert DNA（Post Ligation）,，如果用戶在接頭連接前進行分選,，請采用Hieff NGS® DNA Selection Beads（Cat#12601）說明書中推薦的比例。
4. 室溫孵育5 min,。
5. 將PCR管短暫離心并置于磁力架中,，待溶液澄清后（約5 min），小心轉(zhuǎn)移上清到干凈的離心管中,。
6. 參考表7向上清中加入第二輪分選磁珠,。
7. 渦旋混勻或移液器吹打10次混勻，室溫靜置5 min,。
8. 將PCR管短暫離心并置于磁力架中,，待溶液澄清后（約5 min），小心移除上清,。
9. 保持PCR管始終處于磁力架中,，加入200 μL新鮮配制的80%乙醇漂洗磁珠，室溫孵育30 sec,，小心移除上清,。
10. 重復(fù)步驟9。
11. 保持PCR管始終處于磁力架中,，開蓋干燥磁珠至剛剛出現(xiàn)龜裂（約5 min）,。
12. 將PCR管從磁力架中取出，加入適量21 μL ddH2O，渦旋振蕩或使用移液器輕輕吹打充分混勻,，室溫靜置5 min,。
13. 將PCR管短暫離心并置于磁力架中分離磁珠和液體。待溶液澄清后（約5 min）,，小心轉(zhuǎn)移20 μL上清至干凈的管中,。
3.4 文庫擴增（Library Amplification）
該步驟將對純化或長度分選后的接頭連接產(chǎn)物進行PCR擴增富集。
1. 將表10中試劑解凍后顛倒混勻,，置于冰上備用,。
2. 于無菌PCR管中配制表10所示反應(yīng)體系。
表10 PCR擴增反應(yīng)體系
名稱 | 體積（μL） |
2×Super Canace®Ⅱ High-Fidelity Mix | 25 |
Primer Mix | 5 |
Adapter Ligated DNA（3.3步驟產(chǎn)物） | 20 |
3. 使用移液器輕輕吹打或振蕩混勻,，并短暫離心將反應(yīng)液收集至管底,。
4. 將PCR管置于PCR儀中，設(shè)置表11所示反應(yīng)程序,，進行PCR擴增,。
表11 PCR擴增反應(yīng)程序
溫度 | 時間 | 循環(huán)數(shù) |
98°C | 1 min | 1 |
98°C | 10 sec | 參照注意事項中表2 |
60°C | 30 sec | |
72°C | 30 sec | |
72°C | 5 min | 1 |
4°C | Hold | - |
3.5 擴增產(chǎn)物磁珠純化或分選（Post Amplification Clean Up/Size Selection）
同3.3.1步驟中純化操作步驟。使用Hieff NGS® DNA Selection Beads（0.9×,，Beads:DNA=0.9:1）純化文庫擴增產(chǎn)物,。
如需分選，操作方法同3.3.2雙輪分選步驟,。
3.6 文庫質(zhì)量控制
通常情況下,，構(gòu)建好的文庫可通過濃度檢測和長度分布檢測來進行質(zhì)量評價，具體請參見注意事項六,。
3.7 參考實例
使用Hieff NGS® OnePot DNA Library Prep Kit for Illumina®對小牛胸腺gDNA樣本進行酶切建庫檢測,，片段化結(jié)果見圖3，建庫結(jié)果見圖3,。
圖3 OnePot DNA建庫試劑盒酶切800 ng小牛胸腺gDNA樣本（不同酶切時間片段化效果檢測）
圖4 使用本試劑盒進行human gDNA樣本建庫,，文庫進行電泳檢測
（Input DNA為500 ng，酶切20 min,，擴增5 cycles）
相關(guān)產(chǎn)品
建庫試劑盒 | 產(chǎn)品編號 | 規(guī)格 |
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Hieff NGS® Fast Tagment DNA Library Prep Kit for Illumina® | 12206ES24/96 | 24/96 T |
文庫構(gòu)建磁珠 | 產(chǎn)品編號 | 規(guī)格 |
Hieff NGS® cfDNA Clean Beads（100~200 bp） | 12599ES08/56 | 5/60 mL |
Hieff NGS® Smarter DNA Clean beads (50 bp以上） | 12600ES08/56 | 5/60 mL |
Hieff NGS® DNA Selection Beads（Superior AMPure XP alternative） | 12601ES08/56 | 5/60 mL |
Hieff NGS® RNA Cleaner | 12602ES08/56 | 5/60 mL |
Hieff NGS® mRNA Isolation Master Kit | 12603ES24/96 | 24/96 T |
建庫接頭 | 產(chǎn)品編號 | 規(guī)格 |
Hieff NGS® 96 Single Index Primer Kit for Illumina®, Set 1/2 | 12611/12612ES02 | 48×2 T |
Hieff NGS® 384 Dual Index Primer Kit for Illumina®, Set 1/2 | 12613/12614ES02 | 96×2 T |
Hieff NGS® Complete Adapter Kit for Illumina®, Set 1/2 | 12615/12616ES04/16 | 12×4/12×16 T |
Hieff NGS® Complete Adapter Kit for Illumina®, Set 3/4 | 12617/12618ES04/16 | 12×4/12×16 T |
Hieff NGS® Tagment Index Kit for Illumina®,(96 Index) | 12610ES96 | 96 T |
建庫模塊 | 產(chǎn)品編號 | 規(guī)格 |
Hieff NGS® Fast-Pace DNA Fragmentation Reagent | 12609ES24/96 | 24/96 T |
Hieff NGS® Fast-Pace End Repair/dA-Tailing Module | 12608ES24/96 | 24/96 T |
2×Ultima Amplification Mix | 12620ES24/96 | 24/96 T |
2×Super Canace®Ⅱ High-Fidelity Mix | 12621ES03/08 | 24/96 T |
Hieff NGS® Dual-Mode cDNA Synthesis Kit | 12250ES24/96 | 24/96 T |
文庫定量 | 產(chǎn)品編號 | 規(guī)格 |
Hieff NGS® Library Quantification Kit for Illumina®, qPCR Master Mix | 12302ES05 | 500 T |
Hieff NGS® Library Quantification Kit for Illumina®, DNA Standard (1-6) | 12307ES09 | 6×96 μL |
dsDNA HS Assay Kit for Qubit® | 12640ES60/76 | 100/500 T |
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