診斷時zui重要的步驟是選擇合適的樣品,，這樣才能獲得有用的實驗室資料,。一般來講，從幼豬而非大豬中采集樣品,，因為在幼豬中的PRRSV的數(shù)量多,，持續(xù)時間長。感染后4—6周能從乳豬,、斷奶仔豬或架子豬的血清中分離血清,。病毒分離用的樣品在采集后迅速冷藏或凍貯,，因為PRRSV對病毒很敏感，在運輸過程中必須注意溫度不能升高,，否則PRRSV易被滅活而不能進行病毒分離,。此外，病毒對pH的穩(wěn)定性范圍很小,，因此必須保證無菌環(huán)境,，以避免細菌污染而導致pH改變。樣品必須用絕緣和防漏的容器包裝,，有足夠的冷凍劑,，迅速遞送到相關(guān)實驗室對PRRS的病毒學診斷比較困難，這主要由于分離病毒需要選用豬肺泡巨噬細胞,，這種細胞來自6～8周齡的豬,，并且是無特定病原體豬（SPF）這種豬不是所有實驗室都可以方便得到的。一般的傳代細胞系對該病毒的易感性差,，不能*替代肺泡巨噬細胞,。某些猴腎細胞系（MARC-145）能較好的替代巨噬細胞，但不支持所有的分離物,，尤其是對歐洲型毒株,。

鑒定PRRSV的實驗室技術(shù)還有免疫組化和免疫熒光方法，其中以肺和扁桃體組織用于檢測效果較好,，這兩種方法比用病毒分離方法更迅速且無需細胞培養(yǎng)設(shè)施,。免疫組化法可以對用福爾馬林固定的組織塊病毒鑒定，并能對病毒進行溯源性分析,，但這兩種方法的正確性受操作人員的技巧影響很大，再經(jīng)病毒分離或PCR鑒定應用原位雜交法能檢測和區(qū)別PRRS病毒北美洲基因型及歐洲株基因型,，但它主要用于研究,，并不適于實驗室診斷。

反轉(zhuǎn)錄—聚合酶聯(lián)反應（RT—PCR）以及套式PCR法檢測病毒RNA的敏感性很高,，當病毒分離困難時很有用,，如測定精液或病毒因為自溶而部分降解。在豬的急性感染中,，PCR與常規(guī)病毒分離同等敏感,，在感染的康復階段比病毒分離更為敏感。自動化的PCR試驗不易發(fā)生污染,，為診斷實驗室提供敏感而特異的試驗,，而且費用大為下降。現(xiàn)在已廣泛用于包括血清在內(nèi)的多種組織的檢測,；現(xiàn)已發(fā)展了多種PCR診斷技術(shù),，其中嵌套式PCR比普通PCR提供了更高的敏感性,，多重PCR可以用于區(qū)別北美型和歐洲型PRRS病毒分離株；現(xiàn)在更新的熒光定量RT—PCR技術(shù)也已經(jīng)用于組織或血清樣本中PRRSV的定性和定量檢測,。通過這些分子生物學的方法,，我們可以在難以進行病毒分離的情況下快速準確地檢測病原。zui近,，開發(fā)的PCR產(chǎn)物進行限制性片段長度多態(tài)性分析的方法,，可用于PRRS野毒株以及疫苗分離株的分子流行病學檢測。