基本原理
活細胞(密度較?。┖退兰毎芏容^大)密度不同,從而有助于將活的淋巴細胞和紅細胞分離,。
附加材料
高密度溶液:Ficoll-Paque(Ficoll和泛影酸鈉,;Pharmacia LKB)或Lympholyte-M(Cedarlane)
12ml或50ml聚丙烯離心管(比聚苯乙烯離心管好)
注:Ficoll-Paque和Lympholyte-M的密度與溫度有關(guān);該方法中所采用的以及其他商品化的高密度溶液適合在室溫中使用,。因此應(yīng)注意使細胞懸液,、離心和高密度溶液控制在室溫。否則會因活細胞沉入離心管底導(dǎo)致在密度界面上損失活細胞。
實驗方案
1,、用RPMI-5*培養(yǎng)基混懸細胞,,分裝到離心管中使其細胞數(shù)達到0.5×108~1×108個細胞/2ml(12ml離心管)或1×108~5×108個細胞/5ml(50ml離心管)。
2,、用移液器吸取3ml(使用12ml離心管時)或5ml(使用50ml離心管時)高密度溶液,,將槍頭伸到離心管底,緩慢將高密度溶液加入細胞懸液下方,。
3,、室溫,800g離心15min,。為了取得好的分離效果,,將離心機的“brake”開關(guān)關(guān)掉。
4,、使用5ml移液器,沿高密度層表面緩慢移動移液器槍頭,,吸入漂浮在高密度層上方的活細胞,,盡量少收集高密度溶液。將活細胞移入另一管中,。
5,、加入RPMI-5*培養(yǎng)基(少量細胞加入10ml,細胞量較多時加入40ml),,室溫,,200g離心10min。重復(fù)一次,。
6,、以適量培養(yǎng)基混懸細胞以便進行下一步操作。