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炭疽桿菌(BA)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR 法)
【產(chǎn)品名稱】 將步驟 1 提取的 DNA,、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL,,分別加入相應的反
通用名稱:炭疽桿菌(BA)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR 法)
應管中,,蓋好管蓋,,混勻,短暫離心,。
Name :Bacillus Anthracis Detection Kit (Real-Time PCR Method) 4 擴增(核酸擴增區(qū))
【包裝規(guī)格】48T/盒
炭疽是由炭疽桿菌(Bacillus Anthracis, BA)感染引起的一種人獸共患病,。BA 在環(huán)境中形成芽孢,可長期,、穩(wěn)定地存在于自然界中,。由于 BA 的穩(wěn)定性及其致病性,易引發(fā)突發(fā)公共衛(wèi)生事件,。目前的 BA 檢測方法主要基于病原體的培養(yǎng),、染色鏡檢、血清學檢測等,,但這些方法均不適合早期的快速偵檢,。基于核酸檢測的熒光-PCR技術(shù),,因其靈敏度高,、操作簡單、特異性好,,可快速檢測炭疽病原,,及時控制炭疽疫
4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內(nèi);
4.2 設(shè)置好通道,、樣品信息,,反應體系設(shè)置為 25μL;
熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM,, 淬滅通道(Quencher Dye)
NONE,,ABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可,。
4.3 推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置:
[1] 本試劑盒適用于檢測皮膚水泡液,、咽拭子、可疑食物等樣本中的炭疽桿菌,,用于炭疽桿菌感染的輔助診斷,。
5 結(jié)果分析判定
【試劑組成】
整體傾斜時,,根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),,重新分析結(jié)果,。
名 稱 規(guī) 格
核酸提取液酶液 1.5mL×2 管
唾液 50μL×1 管
BA 反應液 1.0mL×1 管
BA 陽性質(zhì)控品 50μL×1 管
陰性質(zhì)控品 250μL×1 管
注:
7結(jié)果判斷
陽性:檢測通道 Ct 值≤35.0,丏曲線有明顯的指數(shù)增長曲線,。
可疑:檢測通道 Ct 值>35.0,,丏出現(xiàn)明顯擴增曲線的樣本建議重復試驗,重復試驗結(jié)果出現(xiàn) Ct 值≤35.0 和明顯擴增曲線者為陽性,,否則為陰性,。
陰性:樣本檢測結(jié)果無 Ct 值丏無明顯的擴增曲線。
1) 不同批號試劑不能混用,。 Ø 樣本檢測結(jié)果不樣本收集,、處理、運送以及保存質(zhì)量有關(guān),;
2) 試劑盒內(nèi)各試劑組份足夠包裝規(guī)格所標示的檢測次數(shù),。
-20℃±5℃,避光保存,、運輸,、反復凍融數(shù)不超過 5 次,有效期 12 個月,。
ABI ,、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler,、Bio-Rad,、eppendorf 等系列
Ø 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現(xiàn)假陽性結(jié)果,;
Ø 陽性對照,、擴增產(chǎn)物泄漏,會導致假陽性結(jié)果,;
Ø 病原體在流行過程中基因突變,、重組,會導致假陰性結(jié)果,;
Ø 不同的提取方法存在提取效率差異,,會導致假陰性結(jié)果;
Ø 試劑運輸,,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,,出現(xiàn)假陰性或定 量檢測不準確的結(jié)果;
熒光定量 PCR 檢測儀,。 Ø 本檢測結(jié)果僅供參考,,如須確診請結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測手段。
【標本采集】
皮膚炭疽,,取水泡液 1mL,;肺炭疽,,采集咽拭子標本,放入標本采集管中,;腸炭疽,,取糞便 1g
上述標本短期內(nèi)可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,,但不能超過 6 個月,,標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復凍融,。
9. 質(zhì)控標準
陰性質(zhì)控品:無明顯擴增曲線或無 Ct 值顯示,;
陽性質(zhì)控品:擴增曲線有明顯指數(shù)生長期,丏 Ct 值≤32,;
以上條件應同時滿足,,否則實驗視為無效。
Ø 所有操作嚴格按照說明書進行,;
Ø 試劑盒內(nèi)各種組分使用前應自然融化,,*混勻并短暫離心;
Ø 反應液應避光保存,;
1. . 樣品處理(樣本處理區(qū)) Ø 反應中盡量避免氣泡存在,,管蓋需蓋緊;
1.1 1 樣本前處理
固體樣本:手術(shù)剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨,,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨,,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,,取上清液 100μ
L 于 1.5mL 滅菌離心管中,;液體樣本:直接取 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。
1 111 提取
1) 對上述處理好的標本加入 50μL 核酸提取液,,100℃恒溫處理 10min,,13,000rpm 離心 5min,取上清液轉(zhuǎn)移至新的 1.5mL EP 管,,-20℃保存,;
2) DNA 的提取也可以采用深圳綠食源生物技術(shù)有限公司生產(chǎn)的 DNA 提取試劑盒(離心柱提取法),請嚴格按照試劑盒說明書進行操作,。
2. 試劑配制(試劑準備區(qū))
根據(jù)待檢測樣本總數(shù),,設(shè)所需要的 PCR 反應管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照;樣品每滿 7 份,,多配制 1 份),,每測試反應體系配制如下表:
Ø 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)與用工作服;
Ø 樣本處理,、試劑配制,、加樣需在不同區(qū)進行,以免交叉污染,;
Ø 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器,;
Ø 試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通 則》進行處理,。
試劑 BA 反應液 酶液
用量(樣本數(shù)為 N) 20μL 1μL
將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,21uL/管,。
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